( PDF ) Basidiomicetos em regiões do Mato Grosso do Sul, Brasil

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UNIVERSIDADE ANHANGUERA-UNIDERP

PROGRAMA DE MESTRADO EM MEIO AMBIENTE E DESENVOLVIMENTO REGIONAL

CAMPO GRANDE

MATO GROSSO DO SUL

2009

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JOSIANE RATIER DE QUEVEDO

BASIDIOMICETOS EM REGIÕES DO MATO GROSSO DO SUL,

BRASIL

Comitê de Orientação

Profa. Dra. Vera Lucia Ramos Bononi

Prof. Dr. Ademir Kleber Morbeck de Oliveira

Prof. Dr. Silvio Favero

CAMPO GRANDE

MATO GROSSO DO SUL

2009

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FOLHA DE APROVAÇÃO

Candidata: Josiane Ratier de Quevedo

Dissertação defendida e aprovada em 24 de julho de 2009 pela Banca

Examinadora:

__________________________________________________________

Profa. Doutora Vera Lúcia Ramos Bononi (Orientadora)

Doutora em Biologia

__________________________________________________________

Prof. Doutor Arnildo Pott (UFMS)

Doutor em Ecologia Vegetal

__________________________________________________________

Prof. Doutor Cleber José Rodrigues Alho (UNIDERP)

Doutor em Ecologia

SUMÁRIO

RESUMO............................................................................................................ iii

ABSTRACT........................................................................................................ iv

INTRODUÇÃO

GERAL................................................................................................................1

REFERÊNCIAS

BIBLIOGRÁFICAS..............................................................................................4

CAPÍTULO I – Aphyllophorales em um Fragmento Florestal Urbano, na cidade

de Campo Grande, Mato Grosso do Sul, Brasil...................................................6

Resumo...............................................................................................................7

Abstract..............................................................................................................7

1 Introdução.......................................................................................................8

2 Material e Métodos..........................................................................................9

3 Resultados e Discussão...............................................................................10

4 Considerações Finais.................................................................................. 19

5 Referências Bibliográficas...........................................................................19

CAPÍTULO II – Fungos macroscópicos do Pantanal do Rio Negro, Mato Grosso

do Sul, Brasil......................................................................................................22

Abstract............................................................................................................23

Resumo.............................................................................................................23

1 Introdução.....................................................................................................25

2 Material e Métodos........................................................................................26

3 Resultados e Discussão...............................................................................29

4 Literatura citada ...........................................................................................62

CONSIDERAÇÕES FINAIS..............................................................................72

iii

RESUMO

O Brasil é conhecido como detentor de uma das mais altas biodiversidades do

mundo. Os balanços sobre a biodiversidade brasileira feitos no Brasil,

avaliaram em cerca de 2.500 o número de espécies de fungos macroscópicos,

nenhuma delas registrada para a região do Pantanal ou Estado do Mato

Grosso do Sul. O reino Fungi é extremamente importante, influenciando todos

os processos biológicos, desde a origem do solo (intemperização das rochas),

formação e manutenção de sua estrutura até a decomposição de resíduos

orgânicos, ciclagem de nutrientes, biorremediação de poluentes e metais

pesados. Fungos de diversas procedências também são produtores

substâncias utilizadas como antibióticos, inibidores enzimáticos, inseticidas,

anti-tumorais imunossupressores, além de produzirem enzimas capazes de

degradarem poluentes.Os estudos e trabalhos realizados sobre fungos no

Brasil são insuficientes levando em consideração a importância do grupo e a

grande biodiversidade encontrada em áreas tropicais.

ABSTRCT

Brazil is known as owner of one of the highest biodiversity in the world. The

assessments made on the Brazilian biodiversity in Brazil, estimated at around

2,500 the number of species of macroscopic fungi, none of them registered for

the state or region of the Pantanal of Mato Grosso do Sul The kingdom Fungi is

extremely important, influencing all processes organic, from the origin of the soil

weathering of rocks), creation and maintenance of its structure by the

decomposition of organic waste, nutrient cycling, bioremediation of pollutants

and heavy metals. Fungi of various origins are also producing substances such

as antibiotics, enzyme inhibitors, insecticides, anti-tumor immunosuppressive,

and produce enzymes able to degrade poluentes.Os studies and work done on

fungi in Brazil are insufficient taking into account importance of group and great

biodiversity found in tropical areas.

INTRODUÇÃO GERAL

O reino Fungi é extremamente importante, influenciando todos os processos biológicos,

desde a origem do solo (intemperização das rochas), formação e manutenção de sua estrutura

até a decomposição de resíduos orgânicos, ciclagem de nutrientes, biorremediação de

poluentes e metais pesados (ATTIWILL; ADAMS, 1993).

Fungos de diversas procedências também são produtores substâncias utilizadas como

antibióticos, inibidores enzimáticos, inseticidas, anti-tumorais imunossupressores, além de

produzirem enzimas capazes de degradarem poluentes (HANG; WOODANMS, 1994).

Atualmente, diversas enzimas extraídas de fungos têm assumido importante papel na

indústria, através dos processos biotecnológicos. A conversão enzimática de materiais

lignocelulósicos vem recebendo considerável interesse, pois essas matérias representam uma

vasta fonte de material bruto, obtidos a baixos custos, podendo ser convertidos em açúcares

fermentáveis e usados como fonte renovável de produtos químicos, combustíveis e alimento

(XAVIER, 2003).

A existência de fungos capazes de degradar compostos xenobióticos é de grande

interesse para a biorremediação, sendo os fungos de decomposição branca (degradadores de

lignina) um dos grupos que tem obtido maior notoriedade em estudos relacionados a esta área,

em pesquisas relacionadas a biodegradação de poluentes, pois são capazes de transformar e

mineralizar contaminantes ambientais como hidrocarbonetos aromáticos policíclicos, corantes,

herbicidas e outros compostos tóxicos através da ação de suas enzimas extracelulares

(CHANDRA; RUSTGI, 1998).

Este Reino vive em estreito contado com os vegetais, existindo evidências dessa

associação desde o período Carbonífero, quando as plantas conquistaram a terra com ajuda

de fungos na forma de micorrizas. Esta relação é bastante complexa, podendo ser positiva

(micorrizas, fungos endofíticos, saprofitismo) ou negativa, com espécies causadoras de

doenças representando sérios problemas ao desenvolvimento, produção e frutificação de

vegetais, sendo fitopatógenos perigosos em situações de monocultura e de desequilíbrio

ecológico (BONONI et al., 2007).

Os sapróbios (Saprófitos) são espécies degradadoras de matéria orgânica e muito

importantes para o processo de reciclagem dos nutrientes (ciclos biogeoquímicos), pois

absorvem os nutrientes da matéria orgânica morta, utilizado para o seu crescimento e

reprodução, também liberando minerais para o ambiente e tendo um papel essencial para

evitar o acumulo de restos orgânicos no meio (CARLILE; WATKINSON, 1994 ). Diferentes

espécies de fungos possuem um sistema enzimático externo, não especifico, utilizado para o

apodrecimento de madeiras e que pesquisas na ultima década mostram ser capaz de degradar

poluentes clorados orgânicos persistente (MATHEUS; OKINO, 1998).

Dentre os grupos conhecidos de fungos verdadeiros, podem-se citar os zigomicetos,

pertecentes ao filo Zygomicota, considerados descendentes dos Chytridiomycota (fungos

geralmente de ambiente aquáticos ou de solo úmido). Caracterizam-se por apresentarem a

parede celular constituída por quitina e quitosano, além de apresentarem micélio com septos

apenas na delimitação dos órgãos de reprodução ou quando a colônia envelhece.

Caracteristicamente associam-se ao tubo digestivo de diversos tipos de pequenos animais

aquáticos, geralmente larvas de insetos e outros artrópodes, mantendo com seus hospedeiros

relação simbiótica ainda não bem definida se do tipo comensalismo, parasitismo ou

mutualismo. Atualmente são descritos cerca de 200 espécies deste grupo, distribuídas em

quatro ordens, Mucorales, Enthomophthorales, Zoopagales e Glomales (MATHEUS; OKINO,

1998).

Outro grupo conhecido é dos basidiomicetos, que incluem os fungos que produzem

esporos (basidiósporos) de origem sexuada em uma estrutura especializa denominada de

basídio, popularmente chamados de cogumelo ou orelhas-de-pau, além de outras espécies

sem nome popular, que são os fungos gelatinosos, os “gasteromicetos”, as ferrugens e carvões

e algumas formas leveduróides (BONONI; GRANDI, 1998).

A classe Basidiomycetes é constituída por nove ordens, Tremellales, Auriculariales,

Septobasidiales, Exobasidiales, Brachybadiales, Dacrymycetales, Tulasnellales,

Aplyllophorales e Agaricales. São fungos de micélio septado, que se reproduzem por esporos

exógenos (basidiósporos) formados sobre uma hifa especial denominada basidia. O micélio

dos basidiomicetos é tipicamente septado e apresenta uma estrutura típica, que se denomina

grampo de conexão (BRUNS et al., 1991).

São caracterizados por possuírem dois tipos básicos de basidiósporos, que são

liberados violentamente dos basídios, seja nas lamelas das Agaricales ou nos poros das

Aplyllophorales. Também existem os denominados estatimosporos, liberados passivamente

(BONONI; GRANDI, 1998).

Os mesmos autores colocam que a hierarquia taxonômica do grupo vem sofrendo

muitas modificações nos últimos tempos. Atualmente o que era tratado como classe

Basidiomycetes foi elevado ao nível de Filo (Basidiomycota).

Os basídiomicetos são os principais responsáveis pela decomposição da madeira,

composta por celulose e lignina, que dão resistência as paredes das células vegetais

(UNTERSEHER; TAL, 2006).

Outro filo que se destaca é o ascomycotina, que são fungos de micélio bem

desenvolvido, tipicamente septado, com células uninucleadas, reproduzindo-se sexualmente

por esporos endógenos (ascósporos), originados no interior de ascas e agamicamente por

esporos exógenos. O sistema vegetativo é de uma diversidade enorme, pois encontram-se

desde as espécies microscópicas até as visíveis a olho nu. A reprodução nesta classe realiza-

se por dois processos, o agâmico e o sexual. A primeira é encontrada com freqüência dando

origem às formas imperfeitas ou conidiais e apresentando-se com quase todos os tipos de

frutificação de esporos exógenos (ERIKSSON et al.,1984).

Apesar de sua importância, o conhecimento sobre este reino em Mato Grosso do Sul se

limita a dois trabalhos, um sobre fungos liquenizados (HONDA, 1997) e (BONONI et al. 2008).

Apesar do pouco conhecimento e trabalhos realizados sobre fungos, no Brasil podem-se

destacar os estudos com Agaricales da Amazônia realizados por SINGER e ARAUJO (1979),

AGUIAR (1984), SINGER (1984), SINGER E AGUIAR (1986) e BONONI (1992). Também na

região nordeste podem citados os trabalhos de BASEIA e MILANEZ (2002), BASEIA et al.

(2003a;b), BASEIA e CALONGE (2005), além de várias novas espécies descritas para a região

neotrópical, nos últimos anos, tais como trabalhos feitos por CALONGE e MATA (2004; 2005) e

CALONGE et al. (2005a; b).

Ainda assim, os estudos são insuficientes levando em consideração a grande

biodiversidade fúngica encontrada em áreas tropicais.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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Doutorado em Ciências Biológicas (Microbiologia Aplicada).

Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho, UNESP, Brasil. 2003.

CAPÍTULO I

Aphyllophorales em um Fragmento Florestal Urbano, na cidade de Campo Grande, Mato Grosso

do Sul, Brasil

RESUMO - (Aphyllophorales em um Fragmento Florestal Urbano, na cidade de Campo Grande, Mato

Grosso do Sul, Brasil) - O conhecimento da micodiversidade no Brasil ainda é precário e fragmentado,

mesmo levando-se em consideração a abundância e o papel vital que este grupo desempenha na natureza,

através da ciclagem de nutrientes. O Estado de Mato Grosso do Sul possui poucas informações a

respeito da diversidade de espécies de fungos nos seus diferentes biomas, apesar do acelerado processo de

substituição de suas matas e campos por sistemas antrópicos. As Florestas Estacionais Semideciduais, que

compõem parte da vegetação do Estado, também não possuem trabalhos que indiquem quais as espécies

que compõem este ecossistema. Levando-se em consideração a falta de informações da micota deste

bioma, o objetivo deste trabalho foi de ampliar o conhecimento de fungos existentes no Estado. Foram

realizadas coletas mensais de fungos macroscópicos no ano de 2007 em áreas no entorno do Parque

Estadual do Prosa, em Campo Grande-MS, sendo identificadas 20 espécies de Aphyllophorales,

distribuídas em nove famílias. Uma espécie foi citada pela primeira vez para o Brasil, dez, com primeira

citação para o Estado de Mato Grosso do Sul e as oito espécies restantes, anteriormente citadas para o

Pantanal do Rio Negro-MS. As famílias com melhor representação foram Polyporaceae, com oito

espécies e Ganodermataceae, com quatro espécies, todas degradadoras de madeira.

Palavras-Chave: Biodiversidade, Floresta Estacional Semidecidual, Fungos.

ABSTRACT - (Aphyllophorales in an Urban Forest Fragment, in the city of Campo Grande, Mato

Grosso do Sul, Brazil) - In Brazil, knowledge on Mycodiverrsity is still precarious and fragmented, even

considering the abundance and the important character that this cluster fulfills concerning Nature trough

nutrient cycle. Mato Grosso do Sul State has a little piece of information concerning diversity on fungus

species in his different biomes, despite of the rapid replacement process of his woods and meadows by

anthropical system. No work on the Seasional Semi-deciduous Forest that comprise a past of the

vegetation of the State is available to point out what species that this ecosystem is made of. Considering

the lack of information about this biome mycote, the aim of this work is to contribute on improving the

knowledge about fungi existing in some regions of the State. Monthly fact-gatherings were done in 2007

in areas on the Parque Estadual Prosa Skirts, in Campo Grande, and 20 species, distributed in nine

families, were identified. Two species were mentioned for the first time in Brazil, the other nine as a first

mention the Mato Grosso do Sul State and the last eight species were previously mentioned to the

Pantanal do Rio Negro-MS. The families with the best representation were Polyporaceae, with eight

species and Ganodermataceae with four.

Key-words: Biodiversity, Seasonal Semi-deciduous Forest, Fungi.

Introdução

A riqueza de espécies constitui um aspecto fundamental da biodiversidade, refletindo a presença

de organismos diferentes morfologicamente, fisiologicamente e ecologicamente. A diversidade

apresentada pelo Reino Fungi é surpreendente, sendo o mesmo constituído pelo segundo mais variado

grupo de organismos eucariontes em ambientes terrestres. O conhecimento da micodiversidade ainda é

precário e fragmentado (Müller & Bill 2004).

Os fungos possuem um papel fundamental na ciclagem de nutrientes e na manutenção dos

ecossistemas terrestres, principalmente no ciclo do carbono, devido serem excelentes degradantes de

lignina. Desenvolvem-se sobre madeira em decomposição podendo se destacar os causadores da podridão

branca, que utilizam fontes complexas de carbono sendo responsável não somente pela degradação da

lignina, mas também da celulose e hemiceluse (Okino, 1996).

Este reino também esta envolvido em diferentes atividades econômicas, pois fungos de diversas

procedências são produtores de antibióticos, inibidores enzimático, inseticidas, anti-tumorais

imunossupressora, além de produzirem enzimas capazes de degradarem poluentes (Bononi & Grandi

1998).

Devido à abundância de fungos e ao papel vital que eles desempenham na natureza e nas

alterações dos ecossistemas, os fungos devem ser incluídos nas discussões sobre a conservação da

biodiversidade (Müller & Bill 2004).

O Estado de Mato Grosso do Sul, como a maior parte das unidades da federação, não dispõe de

informações sobre a maior parte de sua micota e o município de Campo Grande, localizado na parte

central do Estado, também é carente de registros sobre as espécies que compõem seus ecossistemas. Uma

de suas áreas parcialmente preservadas é o Parque Estadual do Prosa, que tem dentre outros objetivos,

preservar amostras representativas dos ecossistemas Cerrado e Floresta Estacional Semidecidual, sendo

criado em 1981 como Reserva Ecológica do Parque dos Poderes, primeira área protegida no Estado

(Sema 2000).

As espécies da flora e fauna nele associados e sua bacia hidrográfica fazem parte do patrimônio

ambiental, cultural e paisagístico de Campo Grande, proporcionando sua utilização para fins de pesquisa

ciêntifica, educação ambiental, recreação e turismo de contato com a natureza, além da manutenção da

qualidade de vida de parte da cidade.

As unidades de conservação de domínio público localizadas no perímetro de grandes centros

urbanos e seu entorno, são importantes na formação da consciência ambiental da sociedade. As Florestas

Estacionais são áreas cujo conceito ecológico está ligado ao clima de duas estações, uma chuvosa e outra

seca, que condicionam uma estacionalidade foliar dos elementos arbóreos dominantes, os quais têm

adaptação fisiológica à deficiência hídrica ou à baixa temperatura, durante certo tempo. No caso das

Florestas Semideciduais, a porcentagem de árvores caducifólias no conjunto florestal, e não das espécies

que perdem folhas individualmente, deve-se situar em torno de 20 a 50% na época desfavorável (Brasil

1982).

Ainda são inexistentes informações sobre os fungos nas Florestas Estacionais Semideciduais, em

Mato Grosso do Sul. No Brasil, o conhecimento sobre este reino se concentra em regiões onde existem

Universidades e Institutos de Pesquisa com micologistas, como a Amazônia, Pernambuco, São Paulo,

Santa Catarina, Paraná e Rio Grande do Sul. Este é o primeiro levantamento de fungos macroscópicos em

Campo Grande e o segundo no Estado, pois Bononi et al. (2007) realizaram pesquisas no Pantanal do Rio

Negro, onde foram identificaram 56 espécies.

Levando-se em consideração a importância deste grupo, o objetivo deste trabalho é ampliar o

conhecimento de fungos do Brasil, especificamente em áreas de Florestas Estacionais Semideciduais

sujeitas a ação antrópica.

Material e Métodos

Área de coleta - Situa-se no entorno do Parque Estadual do Prosa (PEP), uma Unidade de Conservação

com área aproximada de 135ha e altimetria em torno de 600m, no planalto da Serra de Maracajú, dentro

do perímetro urbano de Campo Grande, Mato Grosso do Sul. O clima é estacional, com o total das

precipitações compreendido entre 1.300 mm e 1.700 mm anuais. O trimestre mais chuvoso corresponde

ao verão austral (novembro, dezembro e janeiro) e reduz-se ao período de junho a agosto, retornando a

partir de setembro (Sema 2000).

No PEP encontram-se as nascentes de dois dos três afluentes do córrego Segredo, os córregos

Desbarrancados e Joaquim Português. A cobertura vegetal original do parque, antes de sua implantação,

foi parcialmente descaracterizada, estando atualmente em avançado estado de regeneração. Apresenta

áreas de Cerrado stricto sensu, cerradão, formações ripárias e Floresta Estacional Semidecidual.

Embora a área tenha sido alterada, contém ainda elementos da vegetação primária, inclusive

espécies de grande valor econômico como aroeiras e jatobás. A fauna do Parque também sofreu

alterações, seja devido a modificações de sua vegetação, à caça e à apanha de animais ou à introdução de

espécies provenientes de apreensões realizadas pelo antigo Instituto de Preservação e Controle Ambiental

e, mais recentemente, pela Polícia Florestal (Sema 2000).

Período de coleta - as coletas foram realizadas mensalmente, preferencialmente após um período de

chuva, durante o ano de 2007.

Método de coleta - Os fungos encontrados foram fotografados, retirados do substrato e recolhidos

utilizando-se sacos de papel (Fidalgo & Bononi 1984), sendo então encaminhados para secagem em

estufa (temperatura de 40 a 50

C por 48 horas) no laboratório de botânica da Universidade

Anhanguera-Uniderp.

A identificação foi feita no Instituto de Botânica de São Paulo-SP, com ajuda de chaves de

identificação, observação de macro e microestruturas. A análise macroscópica inclui: forma, longevidade

e tipo do basidioma, formato e medidas do píleo, características da superfície abhimenial, como,

coloração, pilosidade e a presença ou não da concentração de zonas, além da análise da superfície

himenial, como coloração, formato, bordas e quantidade de poros por mm, cor e profundidade dos tubos.

Nas características microscópicas, foi considerada a metodologia de Teixeira (1995). Os cortes

foram realizados com o auxílio de uma lâmina de metal e deixados em torno de um a dois minutos para

hidratação com álcool a 70%. Em seguida, montados entre lâmina e lamínula em gota de solução aquosa

de KOH a 2%. O reagente de Melzer foi utilizado para o teste das reações amilóides e dextrinóides. As

microestruturas analisadas foram: hifas (tipos de

hifas e conseqüentemente, definição do sistema hifálico),

basidiósporos (forma, tamanho e coloração), tipos de basídios e ausência ou presença de elementos

estéreis

(cistídios, setas, dendrófises, etc.).

Foi realizada a comparação com material de herbário. Todo material foi

depositado no Herbário Científico “Maria Eneyda P. Kauffmann Fidalgo” (SP), do Instituto de Botânica.

A classificação seguida foi segundo Kirk et al. (2001) e pode ser consultada nas bases de dados CABI

(http://www.indexfungorum.org) e CBS (http://www.cbs.knaw.nl), onde também se encontram descrições

das espécies.

Resultados e Discussão

Foram identificadas 20 espécies de basidiomicetos, distribuídas em nove famílias, listadas dentro

de seus grupos taxonômicos e por ordem alfabética.

Chave para a identificação de basidiomicetos Aphyllophorales da Mata do Prosa

1a. Basidioma corticióide ressupinado, poros hexagonais inclinados, castanho..........Schizopora paradoxa

1b. Basidioma pileado, nunca inteiramente ressupinado, com ou sem poros, de qualquer coloração...........2

2a. Basidioma sem poros ou lamelas na superfície himenial….......................….........................…........….3

2b. Basidioma com poros ou lamelas na superfície himenial……......................….................................….4

3a. Basidioma formado por filamentos ramificados, (arboriforme) branco a creme

..............……………………………………………...............................…… Lachonocladium brasiliensis

3b. Basidioma clavado, subestipitado, branco a castanho claro.........................................Lopharia

papyrin

4a. Basidioma infundibuliforme, coriáceo com himenio em lamelas.................................Lentinus crinitus

4b. Basidioma flabeliforme, carnoso, coriáceo ou rígido com superfície himenial com poros regulares ou

irregularese dilacerados ………………………………………………………………................................5

5a. Basidioma com poros irregulares, dilacerados, tendendo a lamelas, castanho-chocolate-escuro

................................................................................................................................. Gloeophyllum striatum

5b. Basidioma com poros regulares, com aberturas circulares ou hexagonais..............................................6

6a. Contexto do basidioma ferrugíneo, preto em KOH a 5%, setas presentes no himênio, hifas sem

ansa……………………………………................................................................................Phellinus gilvus

6b. Contexto do basidiocarpo de qualquer coloração exceto ferrugíneo, preto ou não em KOH a 5%, setas

ausentes do himênio, hifas com e sem ansa…………...................................................................................7

7a. Basidioma geralmente vermelho alaranjado (pode perder a coloração quando muito velho), coriáceo

…………………………………………...................................................................Picnoporus sanguineus

7b. Basidioma nunca vermelho-alaranjado, podendo ter qualquer outra coloração e consistência...............8

8a. Basidioma com tons cor-de-rosa, consistência rígida…………………..................................................9

8b. Basidioma sem tons cor de rosa, consistência coriáceo ou rígida………….........................................10

9a. Basidioma castanho rosa……………………………........................................Fomitopsis cupreorosea

9b. Basidioma castanho com as margens esteril e nitidamente cor-de-rosa.............................Fomitopsis fei

10a. Esporo de parede grossa, elipsóide nitidamente truncado, contexto do basidioma castanho-chocolate,

contexto preto em HOH a 5%......................................................................................................................11

10b. Esporo de parede fina, não truncado, de qualquer coloração, nunca preto em KOH a 5%.................14

11a. Basidioma estipitado, às vezes com 2 estipes….........................................Amauroderma camerarium

11b. Basidioma séssil…………………………………………………….................................…..............12

12a. Superfície abhimenial não lacada, castanha-escura, superfície himenial castanha clara

.............…………………………………………….......................................................Ganoderma australe

12b. Superfície himenial lacada, avermelhada……………………………................................................13

13a. Superficie abhimenial lacada, totalmente vermelha............................................Ganoderma orbiforme

13b. Superficie abhimenial lacada, zonada, sendo vermelha escura no ponto de inserção ao substrato e

ficando com zonas mais claras a medida que se aproxima da margem...............Ganoderma multiplicatum

14a. Superfície abhimenial coberta por pelos pretos de 1-2mm de cumprimento, superfíce himenial

castanha-clara, poros hexagonais.…………………………....................................Hexagonia hydnoides

14b. Superfície abhimenial não coberta por pelos pretos, superfície himenial de qualquer coloração.......15

15a. Superfície abhimenial zonada em tons de castanho e preto, superfície himenial creme, estéril na

margem.....…..................................................................................................................Datronia caperata

15b. Superfície abhimenial não zonada, superfície himenial de qualquer coloração, estéril ou não na

margem………………………………………………................................................................................16

16a. Basidioma com superfície abhimenial castanho-escura, superfície himenial castanha clara, poros

hexagonais muito rasos ( menos de 1mm profundos)...................................................Hexagonia variegata

16b. Basidioma com superfície abhimenial e himenial de qualquer coloração, com poros circulares, com

mais de 1mm de profundidade……………….............................................................................................17

17a. Basidioma formado por vários píleos imbricados, com superfície abhimenial castanha-ferruginea,

ficando preta quando velha; superfície himenial castanho-clara, contexto castanho claro, hifa com ansa

.........…………………….....................................................................................…Nigroporus macroporus

17b. Basidioma com um só píleo, de qualquer coloração, hifas generativas com

ansa...............................18

18a. Superfície abhimenial castanho-clara, superfície himenial castanha escuro, contexto castanho claro,

coriáceo……………………………...............................................................................Gloeoporus dihrous

18b. Superfície himenial branca, com ou sem crusta preta, rígido………........................................19

19a. Basidioma branco desenvolvendo uma crusta preta com a idade, até 5mm de espessura

……………………………………………………...................................................Pereniporiella neofulva

19b. Basidioma branco, sem crusta preta, até 10mm de espessura.........................Tyromyces psedolacteus.

1. ESTEREACEAE

Lopharia papyrina (Mont.) Boidin, Bull. Mens. Soc. Linn. Lyon, 28:210, 1959.

Basiônimo: Stereum papyrinum Mont., Historia física, polirica y nayturál de la islea de Cuba 2:374, 1842

(1838-1842).

Descrições e ilustrações: Bononi (1979).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, sobre madeira

em decomposição, 14-IV-2007, J.R. Quevedo & A.K. M de Oliveira, 19 (SP).

Distribuição: Conhecida nos Estados Unidos, México, América Central, Colômbia e Brasil (Sant`Anna

da Chapada, MT) (Bononi 1979). Esta é primeira citação da espécie para o Estado de Mato Grosso do

Sul.

2. FOMITOPSIDACEAE

Fomitopsis cupreorosea (Berk.) J. Carranza & Gilb., Mycotaxon 25(2):476, 1986.

Basiônimo: Polystictus cupreoroseus (Berk.) Cooke, Grevillea 14(71):85, 1886.

Descrições e ilustrações: Fidalgo (1968).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, sobre madeira

em decomposição, 17-VII-2007, J.R. Quevedo & A.K. M de Oliveira, 12 (SP); idem sobre madeira em

decomposição, 15-II-2008, J.R. Quevedo & A.K. M de Oliveira, 32 (SP);

Distribuição: Neotropical (Fidalgo 1968).

Fomitopsis feei (Fr.) Kreisel, Ciências Biológicas, Cuba 16:83, 1971.

Basiônimo: Polyporus feei Fr., Linnaea 5:518, 1830.

Descrições e ilustrações: Ryvarden & Johansen (1980).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, sobre madeira

em decomposição, 01-XI-2007, A.K.M. Oliveira & J.R. Quevedo, 02 (SP); idem, madeira em

decomposição, 05-1X-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 10 (SP); idem, madeira em

decomposição, 05-1X-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 11 (SP).

Distribuição: África, América do Sul e Ásia (Ryvarden & Johansen 1980). Esta é primeira citação da

espécie para o Estado de Mato Grosso do Sul.

3. GANODERMATACEAE

Amauroderma camerarium (Berk.) J.S. Furtado, Revisão do gênero Amauroderma (Polyporaceae);

Estudos baseados nas microestruturas do basidiocarpo:140, 1968.

Basiônimo: Polyporus camerarius Berk., Hooker's J. Bot. Kew Gard. Misc. 8:143, 1856.

Descrições e ilustrações: Ryvarden (2004).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, em solo, 17-VII-

2007, J.R. Quevedo & A.K.M. de Oliveira, 18 (SP); idem, em solo, 01-XI-2007, A.K.M. de Oliveira &

J.R. Quevedo, 35 (SP).

Distribuição: Do Sul do Brasil até Belize (Furtado 1981; Ryvarden 2004). Esta é primeira citação da

espécie para o Estado de Mato Grosso do Sul.

Ganoderma australe (Fr.) Pat., Bull. Soc. Mycol. Fr. 5:65, 1890. Polyporus australis Fr., Elench.

Fung.1:108, 1828.

Basiônimo: Polyporus australis Fr., Elench. fung. (Greifswald) 1:108, 1828.

Descrições e ilustrações: Ryvarden (2004).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, em tronco de

árvore viva, 17-VII-2007, J.R. Quevedo & A.K.M. de Oliveira.

Distribuição: Tropical (Ryvarden 2004). Esta é primeira citação da espécie para o Estado de Mato

Grosso do Sul.

Ganoderma multiplicatum (Mont.) Pat., Bull. Soc. Mycol. Fr. 5(2/3):74, 1889.

Basiônimo: Polyporus multiplicatum Mont., Ann.Sci. Nat., Bot. Ser. 4, 1:128, 1854.

Descrições e ilustrações: Ryvarden (2004). Espécie com sistema hifalíco dimitíco, basidioma pileado,

Basidiósporo subgloboso, elipsóide truncado pequeno (7 a 8mm).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Parque do Prosa, Campo Grande, em tronco

de árvore viva, 17-VII-2007, J.R. Quevedo & A.K. M de Oliveira 33 (SP); idem, em tronco de árvore

viva, 01-11-2007, A.K.M de Oliveira & J.R. Quevedo.

Distribuição: Tropical, descrita na Venezuela (Ryvarden 2004). Esta é primeira citação da espécie para o

Brasil.

Ganoderma orbiforme (Fr.) Ryvarden [as ‘orbiformum’], Mycologia 92(1):187, 2000.

Basiônimo: Polyporus orbiformis Fr., Epicr. Syst. Mycol.:463, 1838.

Descrições e ilustrações: Ryvarden (2004).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Parque do Prosa, Campo Grande, em tronco de

árvore viva, 01-XI-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 20 (SP).

Distribuição: Tropical, África, Brasil, Venezuela e Porto Rico (Ryvarden 2004). Esta é primeira citação

da espécie para o Estado de Mato Grosso do Sul.

4. GLOEOPHYLLACEAE

Gloeophyllum striatum (Sw.) Murrill, Bull. Torrey Bot. Club 32(7):370, 1905.

Basiônimo: Agaricus striatus Sw., Nov. Gen. Spec. Plant.:148, 1788.

Descrições e ilustrações: Gugliotta & Bononi (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, sobre madeira

em decomposição, 14-III-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 18 (SP); idem, sobre madeira em

decomposição, 14-IV-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 07 (SP).

Distribuição: Pantropical (Gugliotta & Bononi 1999). Encontrada anteriormente no Pantanal do Rio

Negro, MS (Bononi et al. 2007).

5. HYMENOCHAETACEAE

Phellinus gilvus (Schwein.) Pat., Essay Tax. Hyménomyc.:82, 1900.

Basiônimo: Boletus gilvus Schwein., Schr. Naturf. Ges. Leipzig 1:96, 1822.

Descrições e ilustrações: Soares & Gugliotta (1998) e Ryvarden (2004).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

: Mata do Prosa, Campo Grande, sobre madeira

em decomposição, 01-XI-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 4a (SP); idem, sobre madeira em

decomposição, 14-IV-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 21 (SP).

Distribuição: cosmopolita (Fonsêca 1999; Ryvarden 2004). Encontrada anteriormente no Pantanal do Rio

Negro, MS (Bononi et al. 2007).

Esta espécie tem sido utilizada em reatores biológicos para o tratamento de diferentes águas

residuárias. Essa aplicação se constitui em uma tecnologia alternativa e inovadora de crescente expansão.

Balan & Monteiro (2001) estudaram a remoção do corante índigo azul pela espécie de Phellinus

gilvus, onde foi observada a remoção de 100% de cor do meio.

6. LACHNOCLADIACEAE

Lachnocladium brasiliense (Lév.) Pat. [as ‘brasiliensis’], Bull. Torrey Bot. Club 29:572, 1902.

Basiônimo: Eriocladus brasiliensis Lév., Suppl. Lich., Paris 5:108, 1846.

Descrições e ilustrações: Burt (1919).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, sobre madeira

em decomposição, 05-X-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 22 (SP).

Distribuição: ocorre nas Américas Central e do Sul; no Brasil, citada para os Estados da Bahia

(localidade-tipo, Burt 1919), São Paulo e Rio Grande do Sul (Bononi 1979). No Estado de Mato Groso

do Sul já havia sido anteriormente citada no Pantanal do Rio Negro (Bononi et al. 2007).

7. MERULIACEAE

Gloeoporus dichrous (Fr.) Bres. Hedwigia 53:74, 1913.

Basiônimo: Polyporus dichrorus Fr., Observ. Mycol. 1:125, 1815.

Descrições e ilustrações: Ryvarden & Johansen (1980).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

: Mata do Prosa, Campo Grande, sobre madeira

em decomposição, 14-III-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo.

Distribuição: Cosmopolita (Ryvarden & Johansen 1980). Esta é primeira citação da espécie para o Estado

de Mato Grosso do Sul.

8. POLYPORACEAE

Datronia caperata (Berk.) Ryvarden, Mycotaxon 23:172, 1985.

Basiônimo: Polyporus caperatus Berk., Grevillea 9(51):98, 1881.

Descrições e ilustrações: Gugliotta & Bononi (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, em tronco de

árvore viva, 05-V-2007, J.R. Quevedo & A.K.M. de Oliveira, 13 (SP).

Distribuição: pantropical (Gugliotta & Bononi 1999). Esta é primeira citação da espécie para o Estado de

Mato Grosso do Sul.

Hexagonia hydnoides (Sw.) M. Fidalgo, Mem. N. Y. bot. Gdn. 17:64, 1968.

Basiônimo: Boletus hydnoides Sw., Fl. Ind. Occid. 3:1942, 1806.

Descrições e ilustrações: Fidalgo (1968) e Gugliotta & Bononi (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, em tronco de

árvore, 05-V-2007, J.R. Quevedo & A.K.M. de Oliveira, 01 (SP).

Distribuição: pantropical (Gugliotta & Bononi 1999). Espécie anteriormente citada no Pantanal do Rio

Negro, MS (Bononi et al. 2007).

Hexagonia variegata Berk., Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 2, 9:196, 1852.

Descrições e ilustrações: Fidalgo (1968b), Gugliotta & Bononi (1999), como Hexagonia papyracea

Berk., atualmente colocado em sinonímia.

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, sobre madeira

em decomposição, 18-VIII-2007, J.R. Quevedo & A.K.M. de Oliveira, 19 (SP); idem, madeira em

decomposição, 05-V-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 16 (SP).

Distribuição: Pantropical (Gugliotta & Bononi 1999). Espécie citada anteriormente no Pantanal do Rio

Negro, MS (Bononi et al. 2007).

Lentinus crinitus (L.) Fr., Nov. Symb. Myc.:34, 1825.

Basiônimo: Agaricus crinitus L., Sp. pl., Edn. 2, 2:1644, 1763.

Descrições e ilustrações: Pegler (1983) e Fonsêca (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Parque do Prosa, Campo Grande, sobre tronco

em decomposição, 17-X-2007, J.R. Quevedo & A.K.M. de Oliveira, 4c (SP); idem, madeira em

decomposição, 01-XI-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo, 2b (SP).

Distribuição: Pantropical (Fonsêca 1999). Espécie citada anteriormente no Pantanal do Rio Negro, MS

(Bononi et al. 2007).

A capacidade dos fungos de podridão branca em degradar lignina torna-os o grupo mais

interessante dentre os fungos para utilização em biorremediação, pois o sistema que degrada

extensivamente a lignina também é responsável, pelo menos em parte, pela degradação de alguns

compostos poluentes orgânicos como clorofenóis e hidrocarbonetos poliaromáticos. Atualmente sabe-se

que a capacidade biodegradativa de fungos de podridão branca deve-se à presença do sistema enzimático

ligninolítico inespecífico e extracelular (Matheus & Okino 1998).

Entre os basidiomicetos aplicados em processos de biodegradação de diferentes xenobióticos

destaca-se o Lentinus crinitus por degradar hexaclorobenzeno e pentaclorofenol (Matheus et al. 2000).

Nigroporus macroporus Ryvarden & Iturr., Mycologia 95(6):1070, 2003.

Descrições e ilustrações: Ryvarden & Iturriaga (2003).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, sobre tronco

em decomposição, 17-VII-2007, J.R. Quevedo & A.K.M. de Oliveira, idem, madeira em decomposição,

05-05-2007, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo.

Distribuição: Espécie descrita para a Venezuela (Ryvarden & Iturriaga 2003). Esta é a segunda anotação

de ocorrência da espécie no Brasil; já foi citada anteriormente para Pantanal do Rio Negro, MS (Bononi

et al. 2007).

Perenniporiella neofulva (Lloyd) Decock & Ryvarden, Mycol. Res. 107(1):94, 2003.

Basiônimo: Polyporus neofulvus Lloyd, Mycol. Writ. 4(60):13, 1915.

Descrições e ilustrações: Decock & Ryvarden (2003).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, sobre tronco em

decomposição, 17-VII-2007, J.R. Quevedo & A.K.M. de Oliveira.

Distribuição: Tropical. Esta é primeira citação da espécie para o Estado de Mato Grosso do Sul.

Pycnoporus sanguineus (L.) Murrill, Bull. Torrey Bot. Club 31(8): 421, 1904.

Basiônimo: Boletus sanguineus L., Sp. pl., Edn 2:1646, 1763.

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987) e Gugliotta & Bononi (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Parque do Prosa, Campo Grande, em tronco de

árvore viva, 14-III-2007, A.K.M. Oliveira & J.R. Quevedo, 03 (SP); idem em tronco de árvore viva, 14-

03-2007, A.K.M. Oliveira & J.R. Quevedo, 05 (SP).

Distribuição: pantropical (Ryvarden & Johansen 1980). Espécie citada anteriormente no Pantanal do Rio

Negro, MS (Bononi et al. 2007).

Alguns cogumelos (corpo de frutificação de certos fungos) como Pycnoporus sanguineus

apresentam propriedades medicinais ou nutracêuticas que já eram utilizados desde os tempos mais

remotos com finalidades medicinais para combater hemorragias, cólicas, feridas, asma e outros

problemas. Algumas tribos indígenas brasileiras usavam essa espécie para a cicatrização de feridas

(Bononi & Grandi 1998).

Tyromyces pseudolacteus Murrill, Bull. Torrey Bot. Club 67: 65 (1940)

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, em tronco de

árvore viva, 14-III-2007, A.K.M. Oliveira & J.R. Quevedo, 05 (SP).

Distribuição: Florida, Estados Unidos (Ryvarden & Johansen 1980). Esta é primeira citação da espécie

para o Estado de Mato Grosso do Sul.

9. SCHIZOPORACEAE

Schizopora paradoxa

(Schrad.) Donk, Persoonia 5(1): 76 (1967)

Basiônimo: Hydnum paradoxum Schrad. 1794

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Mata do Prosa, Campo Grande, em tronco de

árvore viva, 14-III-2007, A.K.M. Oliveira & J.R. Quevedo, (SP).

Distribuição: Cosmopolita (Gilbertson & Ryvarden 1987).

Considerações finais - A pesquisa revelou uma nova citação para o Brasil e nove espécies com primeira

citação para o Estado de Mato Grosso do Sul. Oito espécies encontradas neste trabalho também foram

encontradas no Pantanal do Rio Negro, em uma região com a presença de espécies vegetais do bioma

Cerrado, além de áreas com formação ripária, indicando a distribuição ampla destas espécies no Estado.

As famílias melhor representadas foram Polyporaceae, com oito espécies e Ganodermataceae, com quatro

espécies.

Agradecimentos

A CAPES pela concessão de bolsa de mestrado.

Referências Bibliográficas

Balan, D. S. L & Monteiro, R. T. R. Journal of Biotechnology, 2001, v. 89, p. 141.

Bononi, V. L. R.; Oliveira, A. K. M.; Quevedo, J. R. & Gugliota, A. M. Asco e Basidiomicetos

Macroscópicos do Pantanal do Rio Negro, MS. In: Luis Mauro Barbosa & Nelson Augusto dos Santos

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Bononi, V. L. R. 1979. Basidiomicetos do Parque Estadual da Ilha do Cardoso: II. Hymenochaetaceae.

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Bononi, V. L. R. & Grandi, R. A. P. (Coords.). 1998. Zigomicetos, Basidiomicetos e Deuteromicetos:

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Fonsêca, M. P. 1999. Aphyllophorales lignocelulolíticos da Reserva Biológica do Alto da Serra de

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Teixeira A R. 1995. Método para estudos das hifas do basidiocarpo de fungos poliporáceos. São

Paulo: Instituto de Botânica.

CAPITULO II

Fungos macroscópicos do Pantanal do Rio Negro, Mato Grosso do Sul, Brasil

ABSTRACT - (Macroscopic fungi at the Rio Negro’s lowlands, Mato Grosso do Sul, Brazil) The

wetlands’ biodiversity is virtually unknown, particularly to fungi. As a consequence of the

devastation caused by the advances made by the cattle-raising industry, a significant part of the

native vegetation has been eliminated and only fragments of savannah woods, vast grazing areas

and furrows formed by the accumulation of logs cut have been left. At Rio Negro’s lowands, five

fungi collection excursions were carried out in 2006, in the driest period. Fifty six species of

Basidiomycetes and one of macroscopic Ascomycetes were identified. All species are being

mentioned for the first time for the State of Mato Grosso do Sul and Collybia bakeri Dennis,

Entoloma cerussatum Pegler, Epithelopsis fulva (G. Cunn.) Jülich, Hypochniciellum subillaqueatum

(Litsch.) Hjortstam, Hypochnicium vellereum (Ellis & Cragin) Parmasto, Lentinus concavus (Berk.)

Corner, Mycena parabolica (Fr.) Quél., Mycoaciella bispora (Stalpers) J. Erikss. & Ryvarden,

Nigroporus macroporus Ryvarden & Iturr., Nothopanus hygrophanus (Mont.) Singer, Pholiota

polychroa (Berk.) A.H. Sm. & H.J. Brodie, Pleurotus agaves Dennis, Trametes subectypus

(Murrill) Gilbn. & Ryvarden and Tricholomopsis tropica Dennis for the first time to Brazil.

Key words: Ascomycetes, Basidiomycetes, biodiversity, Paraguay Basin

RESUMO - (Fungos macroscópicos do Pantanal do Rio Negro, Mato Grosso do Sul, Brasil) A

biodiversidade do Pantanal é praticamente desconhecida, principalmente em relação aos fungos. Em

conseqüência da devastação pelo avanço da pecuária, grande parte da vegetação natural em áreas de

fácil acesso foi suprimida, restando fragmentos de cerrado, extensas pastagens e leiras formadas

pelo acúmulo da madeira derrubada. Em alguns locais, como na região do Pantanal do Rio Negro,

parte da vegetação nativa foi relativamente preservada e nela, durante o ano de 2006, foram

realizadas cinco excursões de coleta de fungos, nos períodos mais secos. Cinqüenta e seis espécies

de Basidiomycetes e uma de Ascomycetes macroscópicos foram identificadas. Todas as espécies

estão sendo citadas pela primeira vez para o Estado de Mato Grosso do Sul e região do Pantanal, e

Collybia bakeri Dennis, Entoloma cerussatum Pegler, Epithelopsis fulva (G. Cunn.) Jülich,

Hypochniciellum subillaqueatum (Litsch.) Hjortstam, Hypochnicium vellereum (Ellis & Cragin)

Parmasto, Lentinus concavus (Berk.) Corner, Mycena parabolica (Fr.) Quél., Mycoaciella bispora

(Stalpers) J. Erikss. & Ryvarden, Nigroporus macroporus Ryvarden & Iturr., Nothopanus

hygrophanus (Mont.) Singer, Pholiota polychroa (Berk.) A.H. Sm. & H.J. Brodie, Pleurotus agaves

Dennis, Trametes subectypus (Murrill) Gilbn. & Ryvarden e Tricholomopsis tropica Dennis pela

primeira vez para o Brasil.

Palavras-chave: Ascomycetes, Bacia do Alto Paraguai, Basidiomycetes, biodiversidade

Introdução

O Brasil é conhecido como detentor de uma das mais altas biodiversidades do mundo.

Entretanto, informações existentes sobre a diversidade biológica são restritas a alguns tipos de

organismos, como plantas superiores e vertebrados, e se encontram dispersas em instituições,

museus e coleções científicas do País e exterior.

O primeiro documento a centrar informações sobre a biodiversidade global, incluindo a

brasileira, foi elaborado por ocasião da Conferência Rio-92 (Groombridge 1992), seguido dos

trabalhos de Mittermeier et al. (1998) que relacionaram espécies de plantas superiores, vertebrados

e alguns invertebrados.

Os balanços sobre a biodiversidade brasileira feitos no Brasil (Bicudo & Menezes 1996,

Canhos 1997, Joly & Bicudo 1998) avaliaram em cerca de 2.500 o número de espécies de fungos

macroscópicos, nenhuma delas registrada para a região do Pantanal ou Estado do Mato Grosso do

Sul.

O Pantanal, localizado na Bacia do Alto Paraguai, é uma região de importância estratégica na

administração dos recursos hídricos do Brasil, Bolívia e do Paraguai. Representa uma das maiores

extensões de áreas alagadas do planeta, sendo elo de ligação entre o cerrado brasileiro e o chaco da

Bolívia e do Paraguai, entre os paralelos 16-22

S e os meridianos 55-58

W. Considerada uma das

maiores planícies de inundação da América Latina, ocupa cerca de 150.000 km

, e é formada pela

junção dos rios da Bacia (rio Paraguai e seus afluentes), constituindo uma série de sub-bacias,

constituídas por outros rios e córregos numa complexa rede hidrográfica. Esta região é

periodicamente alagada durante os meses de outubro a março devido às chuvas intensas que

normalmente ocorrem nos planaltos que cercam a região pantaneira, gerando um caráter plurianual

de ciclos de enchentes e “secas” que na realidade são períodos de pequeno alagamento (Adamoli

1982).

A posição quase central da região pantaneira na América do Sul permite o encontro de diferentes províncias fitogeográficas, que são: ao

norte, a Amazônia; a leste, os cerrados; ao sul, as Florestas Meridionais e a oeste, o Chaco Boliviano e Paraguaio, propiciando grande variedade

de fitofisionomias, uma das razões que levou a criação do termo “pantanais” (Adamoli 1982).

De acordo com Pott & Pott (2000), o Pantanal e a Bacia do Alto Paraguai são dominados, por

espécies vegetais com uma ampla dispersão geográfica (encontradas em diferentes ecossistemas). O

Bioma Cerrado ocupa cerca de 70% da região, seguido pelo Bioma da Floresta Amazônica,

encontrada principalmente no Pantanal do Paraguai, representando 21% da vegetação da área

(Adamoli 1982, Silva et al. 2000).

Devido a grande biodiversidade de espécies e ambientes, o Pantanal foi declarado

Patrimônio Nacional pela Constituição Brasileira em 2000, reconhecido como Reserva da

Biosfera Mundial e considerado um dos “hotspots” de biodiversidade e de recursos hídricos do

planeta em razão de sua importância e do grau de ameaças ambientais que vem sofrendo (

Mittermeier et al. 1998).

No Brasil o conhecimento dos fungos se concentra em regiões onde existem Universidades e

Institutos de Pesquisa com micologistas, como a Amazônia, Pernambuco, São Paulo, Santa

Catarina, Paraná e Rio Grande do Sul. Este é o primeiro levantamento de macromicetos de Mato

Grosso do sul (exceto por monografia de conclusão do curso de Biologia de Josiane Ratier de

Quevedo da Universidade para o Desenvolvimento do Estado e da Região do Pantanal-UNIDERP,

co-autora deste trabalho). Para Mato Grosso, 6 espécies haviam sido citadas por Fidalgo (1968a). O

objetivo deste trabalho é ampliar o conhecimento de fungos do Brasil e da região do Pantanal.

Material e métodos

Área de coleta - situada na planície de inundação do rio Negro, na fazenda Santa Emília, localizada

no quadrante geográfico 19°29’12,2” a 19°30’49,8”S e 55°35’28,5” a 55°42’37,9”W ( Figura 1),

com 2.618 ha, onde se localiza o Instituto de Pesquisa do Pantanal (IPPAN) da UNIDERP e a

Pousada Araraúna, a cerca de 250 km de distância de Campo Grande, com percursos via cidade de

Rio Negro ou Aquidauana. O local apresenta uma variedade de ambientes que, de acordo com

Adamoli (1982) e Pott & Pott (2000), podem ser classificados como:

"baía" - lagoa de água permanente ou temporária, de tamanho variado, com a presença de espécies

aquáticas como camalote (Eichhornia spp.), chapéu-de-couro (Echinodorus spp.), florzeiro

(Ludwigia spp.), orelha-de-onça (Salvinia spp.);

“capão” ou “caapão” - porção de mata, geralmente em elevações de 0,3-3 m acima da altura do

campo, com formato elíptico ou circular (diâmetro variável de 5-100 m), formando ilhas arbóreas,

normalmente não inundáveis, podendo apresentar diferentes tipos de vegetação, como cerrado,

cerradão ou mata e espécies vegetais diversas, tais como acuri (Scheelea phalerata Mart.), carandá

(Copernicia alba Morong ), jatobá (Hymenaea stigonocarpa Mart.), lixeira (Curatella americana

L.), paratudo (Tabebuia áurea ( Manso) Benth. & Hook.), pau-terra (Qualea parviflora Mart.),

piúva (Tabebuia ochracea (Cham.)Standl.);

“cordilheira”- pequena elevação na planície (cerca de 1 a 3 m de altura), podendo ser resultado de

antigos diques fluviais ou cordões arenosos ou argilosos, composta de vegetação de cerrado,

cerradão ou mata, geralmente não inundável. Algumas espécies vegetais arbóreas encontradas são:

aroeira (Myracrodruon urundeuva Allem.), angico-branco (Albizia niopioides (Spruce) Burkart.),

angico-vermelho (Anaderanthera colubrina (Vell.) Brenan.), cumbaru (Dipteryx alata Vogel.),

faveiro (Callistene fasciculata Mart.), cambará (Vochysia divergens Pohl.), gonçalo-alves

(Astronium fraxinifolium Schott.), lixeira (Curatella americana L.) e tarumã (Vitex cymosa Bert.);

"corixo" - curso d’água estacional, com leito definido e mata ciliar descontínua, com a presença de

diversas espécies de plantas aquáticas, como baceiro (Oxycaryum cubense (Poepp.& Kunth) Palla),

camalote (Eichhornia azurea (Swartz) Kunth ), erva-de-bicho (Polygonum spp. ), lagartixa

(Nymphaea amazonum Mart. & Zucc.), lodo (Utricularia spp.);

“corixão” - pequeno rio intermitente, com canal definido e mata ciliar desenvolvida, que mantém

água em trechos quando pára de correr, podendo também ser o leito abandonado (braço) do próprio

rio que lhe deu origem, apresentando diversas espécies de plantas aquáticas;

“savana gramíneo-lenhosa” - que recebe outras denominações como campo, campo limpo, campo

sujo ou campo alagado, sendo constituída normalmente de gramíneas e ervas. Pode ser campo

inundado ou seco, cujas proporções alternam-se em função da precipitação local e/ou aporte de

água pelos rios, sendo esta forma de vegetação mais associada ao fator drenagem do que à

fertilidade do solo. Entre as espécies de gramíneas encontradas têm-se capim barba-de-bode ou

fura-bucho (Paspalum carinatum Humb. & Bonpl. ex Feiige, P. lineare Trinius e Aristida spp.),

capim-arroz (Oriza spp.), capim-de-cerrado (Andropogon spp.), grama-de-cerrado (Mesosetum

spp.), mimosinho (Reimarochloa spp.), mimoso-peludo (Paratheria prostrata Griseb.), além de

espécies de Paspalum, Digitaria e Panicum.

A região já sofreu grandes desmatamentos e hoje se constitui por fragmentos de vegetação

de cerrado e pastagens, sendo freqüente a presença de leiras de restos de árvores, formando pilhas

de madeira que delimitam pastos. Nos restos vegetais, nas leiras e nos gramados, é freqüente a

observação de cogumelos em áreas não alagadas.

Clima e solos: o clima é considerado tropical, com classificação Aw (clima de savana segundo

Koppen), com médias entre 23-25

C e máximas e mínimas absolutas extremamente altas: de

setembro a novembro, as máximas ultrapassam 40

C; em maio, junho e julho, quando ocorrem a

entradas de frentes frias, as médias mínimas ficam abaixo de 20

C. O inverno é seco (de maio até

setembro, com os meses mais secos em julho e agosto) e verão chuvoso, sendo 80% das chuvas

entre novembro a março, variando entre 1.000 a 1.400 mm por ano. A maior parte da região é

coberta por solos hidromórficos (92%), refletindo a drenagem insuficiente e a tendência para

inundações periódicas, com composição arenosa (66%).

Coleta e identificação: as excursões de coleta tiveram a duração de 2 a 3 dias, mensalmente

durante o ano de 2006, procurando cobrir toda a área do IPPAN. Sempre que possível, foi utilizado

GPS para georeferenciar os pontos de coleta. Os fungos foram coletados e secos conforme

recomendado em Fidalgo & Bononi (1984) e a identificação foi feita no Instituto de Botânica de

São Paulo, SP, com ajuda de chaves de identificação, observação de microestruturas e comparação

com material de herbário. Todo material foi depositado no Herbário Científico “Maria Eneyda P.

Kauffmann Fidalgo” (SP), do Instituto de Botânica. A classificação segundo Kirk et al. (2001) pode

ser consultada nas bases de dados CABI (http://www.indexfungorum.org) e CBS

(http://www.cbs.knaw.nl) onde também se encontram descrições da espécies.

Resultados e Discussão

Foram identificadas 56 espécies de Basidiomycetes (Basidiomycota) e uma de Ascomycetes

(Ascomycota). Todas as espécies estão sendo citadas pela primeira vez para o Estado de Mato

Grosso do Sul e Pantanal.

As espécies estão listadas dentro dos respectivos grupos taxonômicos e por ordem

alfabética.

Chave para a identificação de espécies de fungos macroscópicos do Pantanal

1. Fungo esférico ou semi-esférico, preto ou marrom muito escuro, com ascos e ascosporos ....

................................................................................................................Daldinia concentrica

1. Fungo de outras formas que não esférica ou semi-esférica, de cores variadas, mas não totalmente

preto; presença de basídios e basidiósporos

2. Basidioma clavarióide, muito ramificado, branco ................. Lachnocladium brasiliense

2. Basidioma não clavarióide, não ramificado, de qualquer coloração

3. Superfície himenial falsamente lamelar, com falsas lamelas que se enrolam aos pares

formando cânulas radiais, coloração acinzentada ................. Schizophyllum commune

3. Superfície himenial com outras características

4. Superfície himenial lisa a hidnóide

5. Basidioma ressupinado

6. Basidioma amarelado a ocráceo, superfície himenial hidnóide .......................

........................................................................................ Mycoaciella bispora

6. Basidioma branco a creme, superfície não hidnóide

7. Medas grandes, conspícuas ............................................ Epithelopsis fulva

7. Medas ausentes

8. Numerosos cistídios presentes, cilíndricos a fusiformes ........................

.............................................................. Hypochnicium sphaerosporum

8. Cistídios ausentes

9. Basidioma bem aderido ao substrato, basídios frequentemente irregulares

com apenas um esporo, basidiósporo liso, com pequeno apículo,

fracamente amilóide, 3,5-4,5 × 2,5 µm Hypochniciellum subillaqueatum

9. Basidioma frouxamente preso ao substrato, basídios com mais de um

esporo, basidiósporo irregularmente granulado, globoso, não amilóide, 7-

8 µm diâm. .................................................Hypochnicium vellereum

5. Basidioma pileado a efuso-reflexo

10. Basidioma em forma de roseta, com diversos píleos fundidos, superfície

abhimenial concentricamente zonada em diferentes tons de castanho e cinza

..........................................................................................................................

................................................................................. Thelephora griseozonata

10. Basidioma séssil a efuso-reflexo, superfície abhimenial tomentosa,

concentricamente zonada, ocrácea ...........................................Stereum ostrea

4. Superfície poróide ou lamelar

11. Basidioma estipitado, com píleo de margens enrolada para baixo, não permitindo a

visualização de lamelas, superfície do píleo pilosa .. Montagnea haussknechtii

11. Basidioma estipitado ou não,com lamelas ou poros visíveis na superfície inferior do

píleo, superfície do píleo pilosa ou não

12. Superfície himenial lamelar

13. Basidioma coriáceo, resistente

14. Basidiom séssil ........................................ Gloeophyllum striatum

14. Basidiom centralmente estipitado

15. Basidioma branco quando fresco, superfície abhimenial glabra

................................................................................................

................................................................. Lentinus concavus

15. Basidioma castanho, superfície abhimenial com escamas ou pelos

16. Superfície abhimenial pilosa, geralmente radialmente estriada

................................................................ Lentinus crinitus

16. Superfície abhimenial esquamuloso, não radialmente estriada,

mas podendo se tornar rugosa com a maturidade .............

............................................................... Lentinus swartzii

13. Basidioma carnoso, frágil

17. Estipe ausente a excêntrico

18. Estipe excêntrico, robusto, com manchas marrom-avermelhadas na

base ............................................. Nothopanus hygrophanus

18. Estipe ausente ou excêntrico curto, sem manchas coloridas na base

................................................................... Pleurotus agaves

17. Estipe central bem desenvolvido

19. Esporada rósea, basidiósporos angulares.................................

.............................................................Entoloma cerussatum

19. Esporada nunca rósea, basidiósporos não angulares (mas podem

ser rombóides)

20. Esporada ocre ou ferrugínea

21. Píleo amarelo-ovo, basidiósporo truncado, com poro de

germinação conspícuo ............... Bolbitius vitellinus

21. Píleo de coloração diferente, basidiósporos nunca

truncados, com ou sem poro de germinação

22. Basidiósporos com poro de germinação

23. Basidioma lignícola, píleo castanho-alaranjado

...................................... Pholiota polychroa

23. Basidioma terrestre, píleo de coloração creme

com centro mais escuro, castanho ...............

.................................. Hypholoma trinitense

22. Basidiósporos sem poro de germinação

24. Basidiósporos com paredes ornamentadas,

verrucosas ..................... Gymnopilus earlei

24. Basidiósporos com parede lisa ...................

..................... Phaeomarasmius limulatellus

20. Esporada de outra coloração, nunca ocre ou ferrugínea

25. Lamelas escuras adnatas ou decurrentes, basidiósporos

castanho-escuros

26. Superfície pilear epitelial, píleo sépia, basidiósporos

castanho-fusco ................ Psathyrella murrillii

26. Superfície pilear indiferenciada, píleo de coloração

diferente, basidiósporos castanho-esverdeados

escuros

27. Píleo até 8 cm diâm., estipe até 14 cm compr.,

queilocistídios ramificados ........................

............................. Psilocybe zapotecorum

27. Píleo geralmente menor que 1 cm diâm., estipe

até 1,5 cm compr., queilocistídios não

ramificados .......... Psilocybe venezuelana

25. Basidiósporos hialinos ......................................... 28

28. Basidioma branco a bege com escamas escuras,

superfície abhimenial do píleo geralmente viscosa,

basidiósporos grandes, globosos a subglobosos, em

torno de 22 µm diâm. ..Oudemansiella canarii

28. Basidioma de qualquer coloração, superfície

abhimenial do píleo não viscosa, basidiósporos

elípticos ou globosos, sempre menores que 22 µm

29. Píleo amarelo-claro com escamas ou pêlos

30. Píleo campanulado, com escamas amarelo-

acastanhadas, anel bem desenvolvido .

................. Leucocoprinus birnbaumii

30. Píleo aplanado, centralmente depresso, com

pêlos na superfície.. Tricholomopsis tropica

29. Píleo liso sem escamas ou pêlos, de qualquer

coloração

31. Basidiomas agrupados, pequenos, píleo

campanulado até 2,5 cm diâm., estipe

castanho-claro, mais escuro na base, até 3

mm diâm.

32. Basidiósporos 8 × 4 µm.................

......................... Mycena inclinata

32. Basidiósporos 8-10 × 6-7 µm........

..................... Mycena parabolica

31. Basidiomas agrupados ou solitários, píleo

maior que 2,5 cm diâm., estipe castanho-

claro, maior que 3 mm diam.

33. Estipe maior que 5 mm diâm.,

basidiósporos 6-8 × 3-3,5 µm .....

...................... Collybia netropica

33. Estipe até 4 mm diâm., basidiósporos 3-

4,5 × 2-2,5 µm ... Collybia bakeri

12. Superfície himenial poróide

34. Basidioma estipitado

35. Basidioma lateralmente estipitado, superfície abhimenial lacada,

basidiósporos globosos com parede dupla e ornamentada ...........

................................................................ Amauroderma renidens

35. Basidioma lateralmente a centralmente estipitado, superfície branca a

creme, não lacada, basidiósporos com parede simples e lisa ........

.................................................................... Polyporus tenuiculus

34. Basidioma ressupinado a séssil

36. Basidioma ressupinado

37. Superfície himenial branca a creme, poros regulares, tornando-se

quase hidnóides em substratos inclinados, hifa generativa com

ansa, reação xantocróica negativa ..... Trechispora regularis

37. Superfície himenial castanho-ferrugínea, poros regulares, hifa

generativa com septos simples, Contexto preto em KOH (reação

xantocróica positiva ) ........................ Phellinus melleoporus

36. Basidioma efuso-reflexo a séssil, às vezes pseudoestipitado

38. Basidiósporos castanho a amarelados, de parede dupla, com a

parede externa lisa e a parede interna ornamentada, contexto

castanho- chocolate, basidioma sempre lenhoso (muito duro)

39. Superfície abhimenial lacada

40. Superfície himenial inicialmente branca, castanha na

maturidade, 3-4 poros/mm, basidiósporos 12-15 × 8-10

µm ....................................... Ganoderma oerstedtii

40. Superfície himenial creme, castanha quando tocada, 4-5

poros/mm, basidiósporos 9-12 × 5,5-8 µm ..............

................................................ Ganoderma lucidum

39. Superfície abhimenial opaca, não lacada

41. Superfíe himenial amarelada, escurecendo (quase preta)

quando tocada, 4-5 poros/mm, basidiósporos 9-12 × 7-9

µm, cútis sem elementos clavados......................

................................................. Ganoderma brownii

41. Superfície himenial creme a castanho-amarelada,

escurecendo (marrom) quando tocada, 5-7 poros/mm,

basidiósporos 10-12 × 7-8 µm, crusta com elementos

clavados ................................ Ganoderma lobatum

38. Basidiósporos hialinos a acastanhados, de parede simples,

basidioma macio, flexível a coriáceo

42. Hifa generativa com septo simples

43. Basidioma fino, até 4 mm esp., superfície abhimenial

creme, superfície himenial creme-rosada a castanho-

rosada, não xantocróico, basidiósporos alantóides ..

....................................... Gloeoporus telephoroides

43. Basidioma até 5 cm esp., castanho-ferrugíneo,

xantocróico, basidiósporos ovóides a elipsóides

44. Basidioma fibroso a coriáceo, de consistência macia,

sistema hifálico monomítico ............................

...................................... Inonotus patouillardii

44. Basidioma coriáceo, sistema hifálico dimítico

45. Setas presentes, ventricosas Phellinus gilvus

45. Setas ausentes ................ Phylloporia ribis

42. Hifa generativa com ansa

46. Poros grandes, 1-3/mm

47. Cistídios incrustrados presentes

48. Basidioma com consistência de cortiça, macio,

branco quando fresco, ocráceo quando seco,

superfície abhimenial lanosa .....................

............................. Echinoporia aculeifera

48. Basidioma coriáceo, flexível, castanho-escuro,

superfície abhimenial com pêlos escuros e

ramificados ........... Trichaptum perrottetii

47. Cistídios incrustrados ausentes

49. Superfície abhimenial glabra, sistema hifálico

dimítico .............. Nigroporus macroporus

49. Superfície abhimenial vilosa, podendo tornar-se

glabra na maturidade, sistema hifálico trimítico

50. Superfície abhimenial vilosa, glabra na

maturidade, concentricamente zonada,

zonas purpúreas e castanhas, claras e

escuras, basidiósporos cilíndricos, 9-14 ×

4,5-5,5 µm ....... Hexagonia variegata

50. Superfície abhimenial vilosa,

concentricamente zonada, bege a castanho-

clara, basidiósporos elipsóides, menores

que 9 µm compr.

51. Basidioma fino, até 2 mm espesso,

tubos muito rasos com no máximo 1

mm compr., superfície abhimenial bege

a acinzentada na maturidade, superfície

himenial creme-amarelada a bege,

basidiósporos 4,8-7,2 × 2,4-3,6 µm

...........................Trametes villosa

51. Basidioma 2-7 mm espesso, tubos até 4

mm de compr., superfície abhimenial

ocrácea a castanha, superfície himenial

bege a castanha, basidiósporos 5-8,5 ×

2,5-3,5 µm......... Coriolopsis polyzona

46. Poros pequenos, menos que 3/mm

52. Basidioma macio e frágil, corticoso, branco a creme,

sistema hifálico monomítico, hifas gelatinizadas em

KOH, basidiósporos alantóides ...........................

....................................... Tyromyces fumideceps

52. Basidioma coriáceo a lenhoso, resistente, creme,

castanho a alaranjado, sistema hifálico dimítico a

trimítico, hifas não gelatinizadas em KOH,

basidiósporos não alantóides

53. Basidioma vermelho-alaranjado ...................

................................Pycnoporus sanguineus

53. Basidioma de coloração diferente, não vermelho-

alaranjado

54. Basidioma lenhoso, superfície abhimenial

com crusta enegrecida, basidiósporos de

parede espessa, piriformes a levemente

truncados, cistídios presentes, ventricosos

............................. Perenniporia martii

54. Basidioma coriáceo, superfície abhimenial

sem crusta enegrecida, basidiósporos de

parede fina, elipsóides a cilíndricos, cistídios

ausentes

55. Superfície abhimenial fimbriada, com

pêlos ramificados, castanho-escuros

aproximadamente 0,5 cm compr. ..

.................... Hexagonia hydnoides

55. Superfície abhimenial não fimbriada

56. Basidioma até 2,5 cm esp. na base,

superfície abhimenial bege a

acinzentada, tornado-se ocrácea à

partir da base, basidiósporos 6-7,2 ×

2,4 µm ............ Trametes cubensis

56. Basidioma fino, até 0,5 cm esp. na

base, superfície abhimenial

esbranquiçada, basidiósporos 3,5-5

× 1-2 µm ........ Trametes subectypus

Ascomycetes

XYLARIACEAE

Daldinia concentrica (Bolton) Ces. & DeNot., Comm. Soc. crittog. Ital. 1197. 1863.

Descrições e ilustrações: Viégas (1944), Rogers et al. (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, 25-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381532).

Espécie cosmopolita (Perez-Silva 1973), com muitas fotos e descrições na internet, conhecida

popularmente na América do Norte e Europa como “bolo do Rei Arthur”. No Brasil a espécie foi

referida para os Estados do Pará, Pernambuco, São Paulo e Rio Grande do Sul (Viégas 1944,

Bezerra & Maia 2006).

Basidiomycetes

AGARICACEAE

Leucocoprinus birnbaumii (Corda) Singer, Sydowia 15 (1-6): 67. 1962. Agaricus birnbaumii

Corda, Icon. Fung. 3: 48. 1839.

Descrições e ilustrações : Guzmán-Dávalos & Guzmán (1982), Gimenes (2007).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°31’0,4”S e 55°38’0,5”W, em solo, 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381332).

Espécie cosmopolita, citada nas Américas para Venezuela, Bermudas, Martinica, Trinidad e

Tobago (Pegler 1983a). No Brasil citado para o Estado de São Paulo, nos Parques Estaduais das

Fontes do Ipiranga (Grandi et al. 1984, Gimenes 2007) e da Ilha do Cardoso (Capelari, 1989) e no

Rio Grande do Sul (Rick 1907, 1961, Pereira & Putzke 1990). Espécie venenosa, comum em jardins

e vasos.

Montagnea haussknechtii Rab., Fl. Scan.: 339. 1836.

Descrição e ilustraçõe : Baseia & Milanez (2002).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, corixo,

19°30’23”S e 55°36’53,3”W, 25-VI-2006, T.C. Urigas s.n. (SP381338).

Espécie de ampla distribuição em vários continentes. No Brasil, citada para o Cerrado da

Estação Ecológica de Jataí no Estado de São Paulo (Baseia & Milanez 2002). Era classificada até

recentemente entre os Gasteromycetes e pela biologia molecular foi considerado entre os

basidiomicetos (Kirk et al. 2001).

ATHELIACEAE

Hypochniciellum subillaqueatum (Litsch.) Hjortstam, Mycotaxon 13: 126. 1981. Corticium

subillaqueatum Litsch., Annls. mycol. 39: 128. 1941. Leucogyrophana subillaqueata (Litsch.)

Jülich., Persoonia 8: 56. 1974.

Descrição e ilustração: Eriksson & Ryvarden (1976, como Leucogyrophana subillaqueta).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

tronco em decomposição, 26-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. 29 (SP).

Espécie citada para Suécia e Finlândia (Eriksson & Ryvarden 1976). Constitui primeira citação

para o Brasil.

BOLBITIACEAE

Bolbitius vitellinus (Pers. ex Fr.) Fr., Epicr. Syst. mycol., p. 254. 1838. Agaricus vitellinus Pers.,

Synopsis Methodica Fungorum 402. 1801.

Descriçãoe ilustrações: Pegler (1983a).

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°31’4,1”S e 55°37’59”W e 19°30’0,7”S e 55°36’32,1”W, sobre esterco, 24-VI-2006, V.L.R.

Bononi et al. 21 (SP); V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381544).

A espécie é cosmopolita (Pegler 1997) e geralmente ocorre sobre húmus, no solo, sendo

freqüente em vários continentes. No Brasil, foi citada para o Estado de São Paulo (Pegler 1997) e

Rio Grande do Sul (Pereira & Putzke 1990). Na Venezuela, citada sobre esterco de asno (Dennis

1970).

CORTINARIACEAE

Gymnopilus earlei Murrill, Mycologia 5: 22. 1913.

Descrição e ilustrações: Capelari (1989).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°31’0,4”S e 55°38’0,5”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi s.n. (SP381897).

Espécie descrita para Jamaica e encontrada no Brasil, na Ilha do Cardoso, no Estado de São

Paulo (Capelari 1989). Meijer (2006) cita Gymnopilus cf. earlei para o Estado do Paraná.

Phaeomarasmius limulatellus Singer, Sydowia 7: 254. 1953.

Descrição e ilustrações: Singer & Digilio (1952).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’33,9”S e 55°37’45”W, em gramado, 25-III-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n.

(SP381898).

Espécie com referência para Chile, Argentina e Brasil, no Rio Grande do Sul (Singer & Digilio

1952, Pereira & Putzke 1990).

ENTOLOMATACEAE

Entoloma cerussatum Pegler, Kew Bull., Addit ser. 9: 329. 1983.

Descrição e ilustrações: Pegler (1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’11,4”S e 55°36’32,8”W, em gramado, isolado ou em pequenos grupos, 24-VI-2006, V.L.R.

Bononi et al. s.n. (SP381535).

Espécie com citação para Martinica e Guadalupe, ocorrendo solitário ou em pequenos grupos

(Pegler 1983a). Constitui primeira citação para o Brasil.

EPITHELIACEAE

Epithelopsis fulva (G. Cunn.) Jülich, Persoonia 8(4): 457. 1976. Epithele fulva G. Cunn., Trans. of

the Royal Soc of New Zealand 83: 631. 1956.

Descrições e ilustrações: Cunningham (1963), Jülich (1976).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, 19°30’57,4”S e 55°37’49,4”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi s.n. (SP

381913).

Espécie descrita para Nova Zelândia por Cunningham (1963). Constitui primeira citação para o

Brasil.

GANODERMATACEAE

Amauroderma renidens (Bres.) Torrend, Broteria, ser. bot. 18: 136. 1920. Ganoderma renidens

Bres., Hedwigia 35: 380. 1896.

Descrições e ilustrações: Furtado (1981), Ryvarden (2004).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 19,49°S

e 55,62°W, sobre tronco caído muito decomposto, 25-VI-2006, V.L.R. Bononi 31 (SP).

A espécie só era conhecida para o Estado de Santa Catarina, localidade-tipo (Furtado 1981,

Ryvarden 2004).

Ganoderma brownii (Murrill) Gilbn., Mycologia 53: 405. 1962. Elfvingia brownii Murrill, Western

Polypores 5: 29. 1915.

Descrição e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1986).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, 25-III-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381326).

Espécie citada para Califórnia-Estados Unidos da América (Gilbertson & Ryvarden 1986) e

sudeste da América do Sul, uncluindo Brasil, sem especificação de localidade (Gottlieb et al. 2000).

Ganoderma lobatum (Schwein.) G.F. Atk., Annls mycol. 6: 190. 1908. Polyporus lobatus

Schwein., Trans. Am. Phill. Soc., New Series, 4: 157. 1832.

Descrição e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1986).

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’12,5”S e 55°36’40,2”W, sobre colmo de palmeiras, 25/VI/2006, V.L.R. Bononi et al. s.n.

(SP381529); 25/VI/2006, V.L.R. Bononiet al. s.n (SP381540).

• A espécie ocorre com freqüência nos Estados Unidos da América, sobre madeira de

angiospermas, causando podridão branca (Gilbertson & Ryvarden 1986); citada para México e

América do Sul (Montoya et al. 2003). Tem sido usada com sucesso para a degradação de

pentaclorofenol (Gottlieb & Wright 1999). Ocorre em região de Mata Atlântica no Brasil e vem

sendo utilizado para o tratamento e detoxificação de efluentes líquidos (Machado et al. 2005).

Ganoderma lucidum (Curtis) P. Karst., Revue mycol. 3(9): 17. 1991. Boletus lucidus Curtis, Fl.

Londin. 72. 1781.

Descrições e ilustrações: Gottlieb & Wright (1999), Nuñez & Ryvarden (2000).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

tronco em decomposição, 25-III-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381336).

A espécie é cosmopolita, sendo bem conhecida na China onde é utilizada contra tumores

(Bernicchia 1990, Gilbertson & Ryvarden 1986, Guzmán 2003). Gottlieb & Wright (1999) citam a

espécie para a América do Sul. No Brasil, foi citada para Pernambuco, Mato Grosso e Santa

Catarina (Fidalgo 1968a, Gibertoni & Cavalcanti 2003, Loguercio-Leite et al. 2005, Góes Neto &

Baseia 2006).

Ganoderma oerstedii (Fr.) Murrill, Bull. Torrey bot. Club 29: 606. 1907. Polyporus oerstedii Fr.,

Nova Acta Soc. Sci. Upsal. Ser. 3: 1. 1851.

Descrição e ilustrações: Ryvarden (2004).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

colmo da palmeira bacuri ou acuri (Attalea phalerata), II-2006, G.B. Soares et al. s.n. (SP381329);

sobre madeira em decomposição, 25-III-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381914).

• Segundo Ryvarden (2004) Ganoderma oerstedii, cuja localidade-tipo é Costa Rica, deve

estar amplamente distribuído nas regiões neotropicais. No Brasil, é citada para Santa Catarina e Rio

Grande do Sul (Rick 1960, como Ganoderma lobatum var. oerstedii, Loguercio-Leite et al. 2005).

GLOEOPHYLLACEAE

Gloeophyllum striatum (Sw.) Murrill, Bull. Torrey bot. Club 32: 370. 1905. Agaricus striatum Sw.,

Nova Genera Species Plantarum, p. 148. 1788.

Descrição e ilustrações: Gugliotta & Bononi (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381911).

Espécie de distribuição pantropical, ocorrendo principalmente em madeira de angiospermas,

ocasionalmente em gimnospermas (Gilbertson & Ryvarden 1986); amplamente distribuída no Brasil

(Gugliotta & Bononi 1999). Foi citado para Mato Grosso (Fidalgo 1968a).

HYMENOCHAETACEAE

Inonotus patouillardii (Rick) Imazeki, Bulletin of the Tokyo Sci. Mus. 6:105. 1943. Polystictus

patouillardi Rick, Broteria, ser. bot. 6: 89. 1907.

Descrição e ilustrações: Ryvarden (2004).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, 18-II-2006, G.B. Soares et al. s.n. (SP381510).

• A espécie é cosmopolita (Ryvarden 2004), e nos Estados Unidos da América, causa

podridão branca em Quercus (Gilbertson & Ryvarden 1986). Descrita como freqüente no Rio

Grande do Sul por Rick (1928, 1961) sobre troncos queimados.

Phellinus gilvus (Schwein.) Pat., Essay Taxonomie Hyménomycetes, p.82.1900. Boletus gilvus

Schwein., Schr. naturf. Ges. Leipzig 1: 96. 1822.

Descrições e ilustrações: Soares & Gugliotta (1998) e Ryvarden (2004).

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’36,5”S e 55°37’44,7”W, sobre madeira em decomposição 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al.

s.n. (SP381530); 19°30’12,2”S e 55°36’35,2”W, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381531).

A espécie é cosmopolita (Fonsêca 1999; Ryvarden 2004). Ocorre com freqüencia no Brasil,

citado para os Estados do Amazonas, Pará, Rondônia, Mato Grosso, Goiás (Fidalgo 1968a, Sousa

1980, Sotão et al. 2002), Pernambuco, Alagoas e Paraíba (Gibertoni et al. 2004; Góes Neto &

Baseia 2006) São Paulo (Jesus 1993, Soares & Gugliotta 1998, Fonsêca 1999), Rio Grande do Sul

(Silveira & Guerrero 1991).

Phellinus melleoporus (Murrill) Ryvarden, Mycotaxon 23: 177. 1985. Fomitoporella melleopora

Murrill, N. Amer. Fl. 9: 13. 1907.

Descrição e ilustrações: Ryvarden (2004).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

pimenteira, em mata ciliar do rio Correntoso, 19°30’43,6”S e 55°37’47,8”W, 24-III-2006, V.L.R.

Bononi s.n. (SP381912).

A espécie ocorre nas Américas, inclusive América do Sul (Gilbertson & Ryvarden 1987,

Ryvarden 2004). Citado para o Brasil para a Paraíba e Bahia (Góes-Neto et al. 2000, Gibertoni et

al. 2004, Góes-Neto & Baseia 2006).

Phylloporia ribis (Schumach.) Ryvarden, Grundr. Krauterk. 2: 371. 1978. Boletus ribis Schumach.,

Enum. pl. 2: 386. 1803.

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987), Nuñez & Ryvarden (2000).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 19,49°S

e 55,62°W, sobre tronco de angico caído, 25-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. 32 (SP).

A espécie é cosmopolita (Bernicchia 1990). No Brasil foi citada para os Estados do Amazonas,

Pará, Rondônia, Goiás (Sousa 1980, como Phellinus ribis (Schum. ex Fr.) Quél.) e de São Paulo

(Fidalgo & Fidalgo 1957, Fidalgo et al. 1965, ambos como Phellinus ribis) e, especificamente neste

Estado, para a Ilha do Cardoso (Bononi 1979, como Phellinus ribis).

HYPHODERMATACEAE

Hypochnicium sphaerosporum (Höhn. & Litsch.) J. Erikss., Symb. bot. upsal. 16: 101. 1958.

Peniophora sphaerospora Höhn. & Litsch., Sber. Akad. Wiss. Wien, Math.-naturw. Kl. 115:

1600. 1906.

Descrições e ilustrações: Cunningham (1963), Eriksson & Ryvarden (1976).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, 18-VIII-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381915).

A espécie apresenta ampla distribuição, sendo citada para o Norte da Europa (Eriksson &

Ryvarden 1976), América do Norte, África do Sul e Nova Zelândia (Cunningham 1963, como

Corticium punctulatum Cooke). No Brasil foi citada para São Paulo (Jesus 1993).

Hypochnicium vellereum (Ellis & Cragin) Parmasto, Conspectus Systematis Corticiacearum, p.

116. 1968. Corticium vellereum Ellis & Cragin, Bulletin of the Washburn Coll. Lab. Nat. Hist. 1:

66. 1885.

Descrição e ilustrações: Eriksson & Ryvarden (1976).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 19,49°S

e 55,62°W, sobre tronco muito podre, 25-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381538).

A espécie ocorre na Dinamarca, Suécia (Eriksson & Ryvarden 1976) e Itália (Bernicchia 2000),

estando na lista de espécies ameaçadas da Dinamarca. Esta é a primeira citação para o Brasil.

LACHNOCLADIACEAE

Lachnocladium brasiliense (Lév.) Pat., Bull. Torrey bot. Club 29: 572. 1902. Eriocladus

brasiliensis Lév., Suppl. Lich., Paris 5: 108. 1846.

Descrições e ilustrações: Burt (1919), Corner (1970).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

restos vegetais muito decompostos, 25-II-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n.

(SP381896).

A espécie ocorre nas Américas Central e do Sul; no Brasil, citada para os Estados da Bahia

(localidade-tipo, Burt 1919), Rio Grande do Sul e São Paulo (Bononi 1980).

Stalpers (1996) considera que esse gênero precisa revisão. Gibertoni et al. (2003) cita

Lachocladium weinfurtianum P. Henn. para o nordeste do Brasil, espécie não reconhecida como

sinônimo no Index Fungorum.

MARASMIACEAE

Oudemansiella canarii (Jungh.) Höhn., Akad. Wiss. Wien Math.-Naturw. Kl. 118: 276. 1909.

Agaricus canarii Jungh., Batav. Geroot. Kunst. Wetens. Verh. 17: 82. 1838.

Descrição e ilustrações: Capelari & Gugliotta (2005).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 19°30’S

e 55°37’W, sobre tronco em decomposição, 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381322).

Espécie de distribuição Pantropical (Pegler 1997), citada para Venezuela (Dennis 1970),

Argentina (Singer & Digilio 1952) e Brasil, nos Estados do Amazonas, Rondônia, Pernambuco, Rio

de Janeiro, São Paulo e Rio Grande do Sul (Putzke & Pereira 1988, Capelari 1989, Capelari &

Gugliotta 2005).

MERULIACEAE

Gloeoporus thelephoroides (Hook.) G. Cunn., Bull. N. Z. Dept. Sci. Industr. Res. 164: 111. 1965.

Boletus thelephoroides Hook., Syn. pl. 1: 10. 1822.

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1986), Corner (1989).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°32’10’7”S e 56°36’33,6”W, sobre tronco em decomposição, 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al.

s.n. (SP381546); 18-VIII-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381894).

A espécie apresenta distribuição pantropical (Gilbertson & Ryvarden 1986); no Brasil, é citada

para Mato Grosso e Amazonas (Fidalgo 1968a, Corner 1989).

Mycoaciella bispora (Stalpers) J. Erikss. & Ryvarden, Corticiaceae of North Europe, vol. 5, p. 901.

1978. Resinicium bisporum Stalpers, Persoonia 9: 145. 1976. Phlebia bispora (Stalpers)

Nakasone, Mycotaxon 84: 481. 2002.

Descrições e ilustrações: Eriksson et al. (1978), Nakasone (2002).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’34,8”S e 55°37’45,9”W, sobre tronco em decomposição 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al.

s.n. (SP381541).

A espécie ocorre nos Estados Unidos da América (Nakasone 2002) e Europa (Eriksson et al.

1978, Nakasone 2002). Esta é a primeira citação de ocorrência no Brasil.

PLEUROTACEAE

Pleurotus agaves Dennis, Kew Bull., Addit. Ser. 3: 466. 1970.

Descrição e ilustraçãoes: Dennis (1970).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 30-IX-

2006, A.K.M. de Oliveira s.n. (SP381899).

Espécie conhecida para a Venezuela (Dennis 1970). Esta é a primeira citação para o Brasil.

POLYPORACEAE

Coriolopsis polyzona (Pers.) Ryvarden, Norw. Jl. Bot. 19: 230. 1972. Polyporus polyzonus Pers.,

Gaudicheau. Voyage. Autour du. Monde, p. 170. 1827.

Descrições e ilustrações: Ryvarden & Johansen (1980), Fonsêca (1999), Guzmán (2003).

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 18-

VIII-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381655).

• A espécie apresenta distribuição pantropical; citada no Brasil para os Estados de

Pernambuco (Cavalcanti 1979, como Coriolus occidentalis (Sw.:Fr.) Kreisel), Bahia, Rio de

Janeiro, São Paulo, Paraná e Santa Catarina (Fonsêca 1999, Gerber & Loguercio-Leite 2000).

Hexagonia hydnoides (Sw.) M. Fidalgo, Mem. N. Y. bot. Gdn. 17: 64, 1968. Boletus hydnoides

Sw., Fl. Ind. Occid. 3: 1942. 1806.

Descrições e ilustrações: Fidalgo (1968b), Gugliotta & Bononi (1999).

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

II/2006, G.B. Soares, J.R. Quevedo & L.A. Barbosa s.n. (SP381323; SP 381324); 24-III-2006,

V.L.R. Bononi s.n. (SP381325); 24-III-2006,19°30’34,9”S e 55°37’45,5”W, V.L.R. Bononi et al. s.n.

(SP381916); 24-III-2006, 19°30’9,8”S e 55°36’42,7”W, sobre madeira em decomposição, 25-VI-

2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381527); 19°30’11,4” S e 55°36’9,8”W (SP381528).

Espécie de distribuição pantropical e freqüente em áreas semi-áridas e savanas. Está

amplamente distribuída no Brasil, citada para os Estados do Amazonas, Roraima, Rondônia,

Maranhão, em manguezais, Pará, Alagoas, Paraíba, Pernambuco, Sergipe, Bahia, Maranhão, Goiás,

Mato Grosso, Minas Gerais, Rio de Janeiro, Espírito Santo, São Paulo, Paraná, Santa Catarina e Rio

Grande do Sul (Fidalgo 1968b, Capelari & Maziero 1988, Vinha 1988, Loguercio-Leite & Wright

1991, Jesus 1996, Gugliotta & Bononi 1999, Ryvarden & Meijer 2002, Sotão et al. 2002, Sotão et

al. 2003, Xavier-Santos 2003, Gibertoni et al. 2004, Góes-Neto & Baseia 2006, Meijer 2006).

Hexagonia variegata Berk., Ann. Mag. nat. Hist., Ser. 2, 9: 196. 1852.

Descrições e ilustrações: Fidalgo (1968b), Gugliotta & Bononi (1999), como Hexagonia papyracea

Berk., atualmente colocado em sininímia.

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, II-2006, G.B. Soares, J.R. Quevedo & L.A. Barbosa s.n. (SP381320);

madeira em decomposição, 25-III-2006, A.K. M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381545);

19°30’43,6”S e 55°37’47,8”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381917); 18-VIII-2006,

A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381918).

A espécie apresenta distribuição pantropical e está amplamente distribuída no Brasil, citada

como Hexagonia papyracea, para Amazonas, Alagoas, Paraíba, Pernambuco, Sergipe, Bahia,

Goiás, Minas Gerais, Rio de Janeiro, São Paulo, Paraná, Santa Catarina e Rio Grande do Sul

(Fidalgo 1968b, Gugliotta & Bononi 1999, Ryvarden & Meijer 2002, Xavier-Santos 2003,

Gibertoni et al. 2004, Góes-Neto & Baseia 2006, Meijer 2006).

Lentinus concavus (Berk.) Corner, Beih. Nova Hedwigia 69: 30. 1981. Panus concavus Berk.,

Ann. Mag. nat. Hist., Ser. 2, 9: 194. 1852.

Descrição e ilustrações: Pegler (1983b).

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 26-VI-

2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381327)

Espécie de ocorrência na América tropical, já citada para Cuba, Peru, Republica Dominicana,

Trinidad e Venezuela (Pegler 1983b). Esta é a primeira citação específica para o Brasil.

Lentinus crinitus (L.) Fr., Nov. Symb Myc. 34. 1825. Agaricus crinitus L., Sp. pl., Edn. 2, 2: 1644.

1763.

Descrições e ilustrações: Pegler (1983b), Fonsêca (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’46,8”S e 55°37’47,6”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi s.n. (SP 381920); 18-VIII-2006, A.K.M.

de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381919).

A espécie apresenta distribuição pantropical, encontrada do México até a Argentina. Possui

ampla distribuição no Brasil (Fidalgo 1968a, Capelari & Maziero 1988, Pegler 1997, Fonsêca 1999,

Sotão et al. 2002, Gibertoni et al. 2004, Góes-Neto & Baseia 2006).

Lentinus swartzii Berk., J. Bot., London 2: 632. 1843.

Descrição e ilustrações: Pegler (1983b).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 30-IX-

2006, A.K.M. de Oliveira s.n. (SP381921).

A espécie ocorre na América Central e América do Sul (Dennis 1970, como L. nicoatianus

Berk., Pegler 1983b, 1997). No Brasil foi citada para os Estados do Amazonas, Bahia, Mato Grosso,

Minas Gerais, Rio de Janeiro e São Paulo (Pegler 1983b, 1997).

Nigroporus macroporus Ryvarden & Iturr., Mycologia 95: 1070. 2003.

Descrição e ilustrações: Ryvarden & Iturriaga (2003).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

tronco em decomposição, 25-III-2006, A.K.M. Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381520).

Espécie citada para a Venezuela (Ryvarden & Iturriaga 2003). Esta é a segunda anotação de

ocorrência da espécie e a primeira para o Brasil.

Perenniporia martii (Berk.) Ryvarden, Norw. Jl. bot. 19: 143. 1972. Polyporus martius Berk.,

Hooker’s J. Bot. 8: 198. 1856.

Descrições e ilustrações: Teixeira (1948), Ryvarden & Johansen (1980).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

tronco em decomposição, 23-III-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381521).

A espécie apresenta distribuição pantropical (Ryvarden & Johansen 1980) e no Brasil foi citada

para Bahia, São Paulo, Paraná, Santa Catarina e Rio Grande do Sul (Teixeira 1948, como

Fomitopsis honodermus (Mont.) Singer, Gonçalves & Loguercio-Leite 2001).

Polyporus tenuiculus (P. Beauv.) Fr., Syst. mycol. 1: 344. 1821. Favolus tenuiculus P. Beauv., Fl.

Oware 1: 74. 1806.

Descrições e ilustrações: Nuñez & Ryvarden (1995), Silveira & Wright (2005).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira, causando podridão branca 19°31’4,9”S e 55°38’0,8”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi s.n.

(SP381922).

A espécie, que apresenta distribuição pantropical (Fonsêca 1999), é comum no Brasil, citada

para os Estados do Amazonas, Roraima, Pará, Rondônia, Bahia, Alagoas, Paraíba, Pernambuco,

Sergipe, Mato Grosso, Rio de Janeiro, São Paulo, Paraná, Santa Catarina, Rio Grande do Sul

(Singer 1961, como Polyporus dermoporus Pers., Fidalgo 1974, Corner 1984, como Polyporus

brasiliensis (Fr.) Corner, Capelari & Maziero 1988, como F. brasiliensis, Sotão et al. 1997, 2002,

Fonsêca 1999, Góes-Neto 1999, Gugliotta & Bononi 1999, Gonçalves & Loguercio-Leite 2001,

Ryvarden & Meijer 2002, Gibertoni & Cavalcanti 2003, Góes-Neto et al. 2003, Gibertoni et al.

2004, Silveira & Wright 2005, Góes-Neto & Baseia 2006, Silva & Gibertoni 2006, Xavier-Santos

2003).

Pycnoporus sanguineus (L.) Murrill, Bull. Torrey bot. Club 31: 421. 1904. Boletus sanguineus L.,

Sp. pl., Edn 2: 1646. 1763.

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987), Gugliotta & Bononi (1999).

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’35,8”S e 55°37’45,1”W, 24/VI/2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP 381923).18-VIII-2006,

A.K.M. Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381924).

A espécie apresenta distribuição pantropical (Ryvarden & Johansen 1980) e está amplamente

distribuída no Brasil, citada para o Pará, Alagoas, Paraíba, Pernambuco, Bahia e São Paulo

(Gugliotta & Bononi 1999, Sotão et al. 2002, Xavier-Santos 2003, Gibertoni et al. 2004, Góes-Neto

& Baseia 2006). Tem sido utilizada na produção de enzimas como a alfa-amilase e na degradação

de corantes utilizados na indústria têxtil (Bononi & Grandi 1998).

Trametes cubensis (Mont.) Sacc., Syll. fung. 9: 198. 1891. Polyporus cubensis Mont., Annls. Sci.

Nat., Bot. sér. 2, 8: 364. 1837.

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987), Gugliotta & Bononi (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’36”S e 55°37’46,5”W, 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381925); 19,49°S e

55,62°W, sobre madeira em decomposição, 25-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381537).

Espécie com distribuição neotropical (Gilbertson & Ryvarden 1987). No Brasil, foi citada para

os Estados do Amazonas, Pernambuco, Bahia, São Paulo, Paraná sobre Pinus sp., Santa Catarina e

Rio Grande do Sul (Loguercio-Leite & Wright 1991, Gugliotta & Bononi 1999, Ryvarden & Meijer

2002, Gibertoni et al. 2004, Góes-Neto & Baseia 2006).

Trametes subectypus (Murrill) Gilbn. & Ryvarden, N. Amer. Polyp. 2: 758. 1987. Coriolus

subectypus Murrill, N. Amer. Fl. 9: 22. 1907.

Descrição e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’12,3”S e 55°36’8,1”W, sobre tronco em decomposição, 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n.

(SP381542).

Esta espécie ocorre nos Estados Unidos da América causando podridão branca em

angiospermas (Gilbertson & Ryvarden 1987). Esta é a primeira citação para o Brasil.

Trametes villosa (Sw.) Kreisel, Monografia Ciencias, Univ. Habana, Ser. 4, 16: 84. 1971. Boletus

villosus Sw., Fl. Ind. Occid. 3: 1923. 1806. Polyporus villosus Fr., Syst. Mycol. 1: 344. 1821.

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987) e Gugliotta & Bononi (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 19,49°S

e 55,62°W, sobre madeira em decomposição, 25-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381547).

Espécie de distribuição neotropical e comum no Brasil. Citada para os Estados de Roraima

Amapá, Bahia, São Paulo, Paraná, Santa Catarina e Rio Grande do Sul (Sotão et al. 1991, Jesus

1996, Fonsêca 1999, Gibertoni et al. 2004, Góes-Neto & Baseia 2006, Meijer 2006).

Trichaptum perrottetii (Lév.) Ryvarden, Norw. Jl. Bot. 19: 237. 1972. Trametes perrottetii Lév.,

Annls. Sci. Nat., Bot. sér.3, 2: 195. 1844.

Descrição e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987).

Material examinado: BRASIL. M

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ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, 25-III-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381321).

A espécie já foi citada para as Américas, dos Estados Unidos da América (Florida) até a

Argentina, incluindo o Brasil, Pernambuco (Gilbertson & Ryvarden 1987, Gibertoni et al. 2004).

Tyromyces fumidiceps G.F. Atk., Annls. mycol. 6: 61. 1908.

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1987), Fonsêca (1999).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

tronco em decomposição, 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381334).

A espécie é rara na Europa, citada para os Estados Unidos da América, Canadá e, no Brasil,

para o Estado de São Paulo, na Reserva Biológica de Paranapiacaba (Fonsêca 1999, como

Tyromyces pseudolacteus Murrill, hoje colocado em sinonímia).

PSATHYRELLACEAE

Psathyrella murrillii A.H. Sm., Mem. N. Y. bot. Gdn. 24: 287. 1972.

Descrições e ilustrações: Smith (1972), Pegler (1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, no solo,

19°30’34,8”S e 55°37’45,9”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381900).

A espécie ocorre na América tropical (Pegler 1997), sendo comum em Martinica e Cuba

(Pegler 1983a). No Brasil, citada para o Estado de São Paulo (Pegler 1997).

SCHIZOPHYLLACEAE

Schizophyllum commune Fr., Observ. mycol. 1: 103. 1815.

Descrição e ilustrações: Silva & Gibertoni (2006).

Materiais examinados: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’12”S e 55°36’40”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381902); 19°30’33,9”S e

55°37’45”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381901).

A espécie é cosmopolita e comum no Brasil sobre cercas e pontes de madeira (Guerrero &

Homrich 1983, Sotão et al. 1997, 2003, Fonsêca 1999, Gibertoni & Cavalcanti 2003, Xavier-Santos

2003, Meijer 2006, Góes-Neto & Baseia 2006, Silva & Gibertoni 2006).

SCHIZOPORACEAE

Echinoporia aculeifera (Berk. & M.A.Curtis) Ryvarden, Mycotaxon 20: 330. 1984. Trametes

aculeifera Berk. & M.A. Curtis, J. Linn. Soc., Bot.10: 319. 1868.

Descrições e ilustrações: Ryvarden (1984), Silveira & Guerrero (1991).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’10,1”S e 55°36’41,5”W, sobre madeira em decomposição, 26-VI-2006, V.L.R. Bononi et al.

s.n. (SP381536).

Espécie de distribuição neotropical, ocorre da Flórida ao Brasil (Gilbertson & Ryvarden 1986).

No Brasil, citada para os Estados da Bahia (Góes-Neto 1999), São Paulo (Fonsêca 1999) e Rio

Grande do Sul (Silveira & Guerrero 1991).

SISTOTREMATACEAE

Trechispora regularis (Murrill) Liberta, Can. J. Bot. 51: 1878. 1973. Poria regularis Murrill,

Mycologia 12: 87. 1920.

Descrições e ilustrações: Gilbertson & Ryvarden (1986), Silveira & Guerrero (1991).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, 19°49’S

e 55° 62’W, sobre tronco queimado, 25-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381539).

A espécie ocorre em zonas temperadas e tropicais, citada para África, Estados Unidos da

América, Jamaica, Costa Rica, Antilhas, Guiana Francesa, Brasil, no Rio Grande do Sul, Argentina,

e Paraguai (Silveira & Guerrero 1991).

STEREACEAE

Stereum ostrea (Blume & T. Nees) Fr., Epicr. Syst. mycol., p. 547. 1838. Thelephora ostrea Blume

& T. Nees, Nova Acta Phys.-Med. Acad. Caes .Leop.-Carol. Nat. Cur. 13: 13. 1826.

• Descrições e ilustrações: Burt (1920), Teixeira (1945), Fonsêca (1999, como Stereum

australe Lloyd, considerada sinônimo).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira em decomposição, II-2006, G.B. Soares, J.R. Quevedo & L.A. Barbosa s.n. (SP381543).

Espécie de distribuição pantropical e citada para Trinidad e Tobago, Guiana, Colômbia e

Venezuela (Dennis 1970). Ocorre no Brasil, sendo citado para os Estados de Alagoas, Rio Grande

do Norte, Paraíba, Sergipe, Pernambuco, Bahia, Rio de Janeiro, São Paulo e Paraná (Teixeira 1945,

Jesus 1993, Fonsêca 1999, Gibertoni & Cavalcanti 2003, Gibertoni et al. 2006, Góes Neto & Baseia

2006, Meijer 2006). Registros recentes na internet apontam sua presença na Nova Zelândia e China

onde ela é utilizada na alimentação.(http://www.nzfungi.landcareserch.co.nz, acesso em 12.12.2006

e http://www.engine.cqvip.com, acesso em 12.12.2006). Não foram encontradas publicações

confirmando a informação.

STROPHARIACEAE

Hypholoma trinitense (Dennis) Pegler, Kew Bull., Addit. Ser. 9: 509. 1983. Pholiota trinitensis

Dennis, Kew Bull., Addit. Ser. 3: 467. 1970.

Descrição e ilustração: Pegler (1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’34,8”S e 55°37’43,9”W, em solo muito arenoso, nas margens do Rio Correntoso, 24-VI-

2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381903).

Espécie de ocorrência na América tropical, citada para Martinica, Trinidad e no Brasil, para o

Estado de São Paulo (Pegler 1997). Segundo Pegler (1983a), Nematoloma amazonicum Singer,

descrito para o Brasil, é sinônimo de Hypholoma trinitense.

Pholiota polychroa (Berk.) A.H. Sm. & H.J. Brodie, Bot. Gaz. 96: 533. 1935. Agaricus polychrous

Berk., J. Bot., London 6: 313. 1847.

Descrição e ilustrações: Pegler (1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°31’0,4”S e 55°38’0,5”W, sobre madeira em decomposição, nas margens do rio Correntoso, 24-

VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n. (SP381904).

Pegler (1983a) relatou a ocorrência da espécie em Ohio, nos Estados Unidos da América e

para Martinica, na América Central.Esta é a primeira citação para o Brasil.

Psilocybe venezuelana Dennis, Kew Bull. 15: 137. 1961.

Descrições e ilustrações: Guzmán (1983), Pegler (1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

serapilheira, 30-IX-2006, A.K.M. de Oliveira s.n. (SP381905).

A espécie ocorre na América tropical (Pegler 1997), sendo citada para Martinica, Guadalupe,

Venezuela (Dennis 1970) e no Brasil, para o Estado de São Paulo (Pegler 1997).

Psylocybe zapotecorum Heim emend. Guzmán var. ramulosum Guzmán & Bononi, Mycotaxon

19: 346. 1984.

Descrição e ilustrações: Guzmán et al. (1984).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, às

margens de lagoa, 30-IX-2006, A.K.M. de Oliveira s.n. (SP381906).

Esta variedade foi descrita para o Estado de São Paulo (Guzmán et al. 1984), sendo o Pantanal

a segunda localidade.

THELEPHORACEAE

Thelephora griseozonata Cooke, Grevillea 19: 104. 1891.

Descrições e ilustrações: Cunningham (1963), Corner (1968).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, em solo

arenoso, 18-VIII-2006, A.K.M. de Oliveira & J.R. Quevedo s.n. (SP381926).

Espécie de ocorrência na América do Norte e Nova Zelândia (Cunningham 1963, Corner

1968). No Brasil, foi encontrada no Parque Estadual da Ilha do Cardoso no Estado de São Paulo

(Bononi 1979).

TRICHOLOMATACEAE

Collybia bakeri Dennis, Kew Bull., Addit. Ser. 3: 465. 1970.

Descrição e ilustrações: Pegler (1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, em solo,

vários basidiomas agrupados, nas margens do Rio Correntoso, 19°31’0,4”S e 55°38’0,5”W, 24-VI-

2006, V.L.R. Bononi s.n. (SP381907).

Espécie com referência para Martinica e Trinidad (Dennis 1970). Esta é a primeira citação da

espécie para o Brasil.

Collybia neotropica Singer, Sydowia 15: 54. 1961.

Descrição e ilustração: Pegler (1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

madeira de leira, 19°31,4’6”S e 55°38’0,9”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi s.n. (SP381908).

A espécie ocorre na América tropical e América do Sul (Pegler 1997), citado para Martinica e

Trinidad (Pegler 1983a) sobre folhas de coqueiros. No Brasil, relatada para o Estado de São Paulo

(Pegler 1997).

Mycena inclinata (Fr.) Quél., Champignons Jura Vosges, p.105. 1872. Agaricus inclinatus Fr.,

Epicr. Syst. mycol., p. 107. 1838.

Descrição: Rick (1961), Smith (1947).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°31’4,6”S e 55°38’0,9”W, 24-III-2006, V.L.R. Bononi s.n. (SP381909).

Espécie com referência para Europa e Estados Unidos da América (Smith 1947, Robich 2006).

No Brasil, citado para o Estado do Rio Grande do Sul e Paraná (Rick 1961, Maas Geesteranus &

Meyer 1995).

Mycena parabolica (Fr.) Quél., Champignons Jura Vosges, p. 242. 1872. Agaricus parabolicus Fr.,

Epicr. Syst. mycol., p. 107. 1838.

Descrição: Dennis (1951).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, sobre

serapilheira, II-2006, G.B. Soares, J.R. Quevedo & L.A. Barbosa s.n. (SP381330).

• A espécie é cosmopolita, citada para Venezuela (Dennis 1970) e ocorrendo em terras

úmidas, na região dos lagos americanos de Seattle, no Estado de Washington, Estados Unidos da

América, em ambiente alagado como o pantanal (Bessette et al. 1996).

Nothopanus hygrophanus (Mont.) Singer, Kew Bull. 23: 247. 1949. Panus hygrophanus Mont.,

Annls. Sci. Nat., Bot. sér. 4, 1: 122. 1854.

Descrições e ilustrações: Pegler (1969, 1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro, nas

margens do Rio Correntoso, sobre madeira em decomposição, 19°30’43,6”S e 55°37’47,8”W, 24-

III-2006, V.L.R. Bononi s.n. (SP381910).

A espécie tem distribuição pantropical; citada para África e vários países da América Central

(Pegler 1969, 1983a). Esta é a primeira citação para o Brasil.

Tricholomopsis tropica Dennis, Trans. Br. mycol. Soc. 34: 475. 1951.

Descrições e ilustrações: Dennis (1951), Pegler (1983a).

Material examinado: BRASIL. M

ATO

ROSSO DO

Rio Negro, Pantanal do Rio Negro,

19°30’7,9”S e 55°36’41,9”W, sobre tronco em decomposição, 24-VI-2006, V.L.R. Bononi et al. s.n.

(SP381534).

Espécie de ocorrência em regiões tropicais e subtropicais (Pegler 1983a). Esta é a primeira

citação da espécie para o Brasil.

Como a área do pantanal é pouco estudada os autores esperavam encontrar grande número de

espécies novas, o que não ocorreu. A maioria das espécies já era conhecida de outras localidades do

Brasil, ou de Países vizinhos, em ambientes de cerrado, mata tropical úmida ou mesmo áreas

alagadas como o chaco paraguaio. Essa observação confirma propostas de estudos florísticos que

consideram o pantanal um ambiente de transiçãocom representantes de outros ecossistemas que o

circundam.

Agradecimentos

Os autores agradecem a Fundação Manoel de Barros pelo auxílio para a realização do

trabalho e ao Dr. Leif Ryvarden, University of Oslo, pelas identificações de Perenniporia martii e

Nigroporus macroporus.

Literatura citada

Adamoli, J. 1982. O pantanal e suas relações fitogeográficas com os cerrados. Discussão sobre o

conceito de “Complexo do Pantanal”. In: Universidade Federal do Piauí (ed.). Anais do XXXII

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CONSIDERAÇÕES FINAIS

O conhecimento sobre os fungos do Estado de Mato Grosso do Sul ainda é

precário. Os trabalhos realizados demonstraram ser de grande relevância, pois foram

identificadas 65 espécies de Basidiomicetos (Basidiomicota) e uma de Ascomiceto

(Ascomicota). Todas as espécies estão sendo citadas pela primeira vez para o Estado

de Mato Grosso do Sul e para a região do Pantanal, indicando a grande falta de

conhecimento deste reino.

Além das espécies citadas, há 20 espécies anteriormente coletadas no Parque

Estadual do Prosa que estão sendo estudadas com a colaboração do Dr. Jair Putzke

do Rio Grande do Sul, especialista em Agaricales.

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