( PDF ) Adaptação do teste A-D para sua aplicação em águas e sedimentos com alta poluição orgânica

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UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO SUL

INSTITUTO DE BIOCIÊNCIAS

CURSO DE PÓS-GRADUAÇÃO EM ECOLOGIA

ADAPTAÇÃO DO TESTE A-D PARA SUA APLICAÇÃO EM ÁGUAS E

SEDIMENTOS COM ALTA POLUIÇÃO ORGÂNICA

Dissertação de Mestrado

Alexsandra Cristina Fontanella

Porto Alegre, 2007.

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Adaptação do Teste A-D para sua aplicação em águas e sedimentos com alta

poluição orgânica

Alexsandra Cristina Fontanella

Dissertação de Mestrado apresentada ao

Curso de Pós-Graduação em Ecologia,

do Instituto de Biociências da

Universidade Federal do Rio Grande do

Sul, como parte dos requisitos para

obtenção do título de Mestre em

Ecologia, áreas de concentração em

Ecotoxicologia e Limnologia.

Orientadora: Profa. Dra. Maria Teresa

Raya Rodriguez

Co-orientador: Prof. Dr. Alois Eduard

Schäfer

Comissão Examinadora:

Porto Alegre, 2007.

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iii

AGRADECIMENTOS

A Deus, acima de tudo, pela luz, força, coragem e perseverança presentes em todos

os momentos.

À minha orientadora, Profa. Dra. Maria Teresa Raya Rodriguez, pelo constante

apoio e orientação ao longo deste estudo.

Ao meu co-orientador, Prof. Dr. Alois Eduard Schäfer, pelas críticas construtivas e

por ceder o Laboratório de Ecotoxicologia e Limnologia da Universidade de Caxias

do Sul, para o desenvolvimento do trabalho.

À minha família, pelo auxílio durante toda a caminhada, até no trabalho de campo.

A todos que, de uma forma ou de outra, me ajudaram a realizar este trabalho.

“A perda das raízes e da identidade é muito ligada à perda de uma relação com o

meio ambiente.”

Jean Pierre Leroy

RESUMO

A área pesquisada representa uma das regiões mais desenvolvidas do Rio

Grande do Sul, caracterizada pelo crescimento exponencial das atividades

industriais e da agricultura e conseqüentemente, maior intensidade de urbanização.

Resultante desta situação, o despejo de esgotos cloacais e efluentes industriais e da

agricultura sobre os corpos d’água, sem um tratamento adequado e um saneamento

precário, ocasiona a contaminação do meio e compromete os processos ecológicos

nos ecossistemas aquáticos. Assim, os ensaios de toxicidade são ferramentas

extremamente úteis na avaliação de potenciais tóxicos, permitindo observar o efeito

tóxico total dos efluentes e detectando as possíveis interações entre seus

componentes. Este trabalho objetivou adaptar o Teste de Assimilação e Dissimilação

(Teste A-D) para sua aplicação em águas e sedimentos altamente poluídos por

efluentes cloacais e industriais, como método de orientação para identificação das

áreas de risco ecológico e como base para um programa de outros testes mais

complexos. Adiciona-se o interesse dos órgãos ambientais municipais diante da

inexistência de informação sobre o impacto de metais e nutrientes na região e da

possibilidade de melhoria da qualidade de água. Para a padronização do método,

havia a necessidade de eliminar as influências dos nutrientes e da alta DBO,

responsáveis por uma alta taxa de produção e consumo de oxigênio pelas culturas

de Clorofíceas e bactérias aeróbias adaptadas ao consumo de extrato de carne

granulado, superando assim, uma provável inibição. Com esta finalidade, as

amostras de água superficial foram testadas sem pré-tratamento ou in natura e com

os pré-tratamentos: esterelização, decantação e aeração, homogeneização e

aeração e filtração e aeração. Com o sedimento superficial, foram desenvolvidos

ensaios com a solução elutriato. As amostragens de água e sedimento superficial

compreenderam 5 locais no período inverno/05 e verão/06 e as análises físicas e

químicas foram comparadas aos valores das normas ambientais nacionais e

internacionais vigentes. Os elevados níveis de níquel, cobre, fosfato e condutividade

estão associados com a alteração da qualidade da água da BH do Arroio Tega. O

grau de contaminação dos sedimentos por metais é compatível com locais

fortemente poluídos para cobre, cromo, níquel e zinco. As condições de manutenção

do Teste A-D foram aperfeiçoadas em relação à norma original. Com o sedimento,

os Testes A apresentaram inibição da fotossíntese e os Testes D, aceleração da

respiração, mostrando sensibilidades opostas, não havendo uma complementação

dos processos autotrófico e heterotrófico. Com a água, o pré-tratamento esterelizado

apresenta as maiores porcentagens de inibição do PPO e PCO. Os resultados

apresentam possibilidade de aplicação do Teste A-D na avaliação da toxicidade e

monitoramento de efluentes e águas superficiais. Este método mostrou ser um

procedimento operacional simples e rápido, aplicável simultaneamente a um grande

número de amostras e de baixo custo.

ABSTRACT

The researched area represents one of the most developed areas of Rio

Grande do Sul, it is characterized by the exponential growth of the industrial and

agriculture activities, thus leading to larger urbanization intensity. As a result of this

situation, the spilling of sink sewers, industrial and agriculture sewage in the bodies

of water, without an appropriate treatment and a precarious sanitation, causes the

contamination of the environment and overturns ecological processes in aquatic

ecosystems. To such an extent, toxicity analysis are extremely useful tools in the

evaluation of toxicant potentials, allowing to observe the total toxicant effect of the

sewage and detecting the possible interactions among their components. This study

had the purpose to adapt the Test of Assimilation and Dissimilation (A-D Test) for its

application in waters and sediments highly polluted by sink sewage as an orientation

method for identification of the areas of ecological risk and as a base for a program

of other more complex tests. It’s remarkable the sum up interest of the municipal

environmental agencies, due to the inexistence of information on the impact of

metals and nutrients in the area and the possibility to improve the quality of water.

For the standardization of the method, there was the necessity to eliminate the

influences of the nutrients and the high BOD (Biochemical Oxygen Demand),

responsible for an upper production and consumption rates of oxygen for the cultures

of Cloroficeas (freshwater green algae) and aerobic bacterium adapted to the

consumption of granulated meat extract, surpassing, in this way, a probable

inhibition. Regarding this purpose, the samples of superficial water were tested

without pretreatment or in natura and with the pretreatments: sterilization,

decantation and aeration, homogenization and aeration and filtration and aeration. To

the superficial sediment, analysis were developed with the elutriate testing solution.

The samplings of water and superficial sediment comprised five places in the period

winter/2005 and summer/2006 and the physical and chemical analyses were

compared to the values of the national and international environmental norms

effective nowadays. The high levels of nickel, copper, phosphate and conductivity

are associated with changes in water quality of Tega's HB (Hydrographic Basin). The

scale of contamination of the sediments for metals it’s compatible with places heavily

polluted for copper, chrome, nickel and zinc. The conditions of maintenance of the A-

D Test were improved in relation to the original norm. To sediment, the Assimilation

tests presented inhibition of the photosynthesis and the Dissimilation tests,

acceleration of the breathing, showing opposite sensibilities, so there wasn’t a

complementation of the autotrophic and heterotrophic processes. To water, sterilized

pretreatment presents the largest percentages of inhibition of POP and COP. The

results show the possibility of application of the Test A-D in the evaluation of the

toxicity and effluents and superficial waters monitoring. This method showed to be a

simple and fast operational procedure, applicable simultaneously to a great number

of samples and at a very low cost.

SUMÁRIO

1. INTRODUÇÃO ..................................................................................................... 1

2. JUSTIFICATIVA ................................................................................................... 2

3. OBJETIVOS ......................................................................................................... 7

3.1 Objetivo Geral ................................................................................................. 7

3.2 Objetivos Específicos ...................................................................................... 7

4. ÁREA DE ESTUDO .............................................................................................. 8

4.1 Localização ..................................................................................................... 8

4.2 Caracterização da Área .................................................................................. 8

4.3 Locais de Amostragem ................................................................................... 9

5. MATERIAL E MÉTODOS ................................................................................... 16

5.1 Coleta das Amostras ..................................................................................... 16

5.1.1 Coleta e Análise da Água .................................................................... 16

5.1.2 Coleta e Análise do Sedimento ............................................................ 17

5.2 Testes Ecotoxicológicos – Testes de Assimilação e Dissimilação (Teste A-D)

5.2.1 Teste de Assimilação (Teste A) ........................................................... 18

5.2.1.1 Manutenção das Culturas de Algas .......................................... 18

5.2.1.2 Procedimento do Teste A .......................................................... 20

5.2.1.3 Cálculo dos Resultados ............................................................. 21

5.2.2 Teste de Dissimilação (Teste D) ........................................................... 22

5.2.2.1 Manutenção da Culturas de Bactérias ...................................... 22

5.2.2.2 Procedimento do Teste D .......................................................... 23

5.2.2.3 Cálculo dos Resultados ............................................................. 23

5.3 Pré-tratamentos com as amostras de água superficial .................................. 24

5.4 Análises Estatísticas ...................................................................................... 24

6. RESULTADOS E DISCUSSÃO ........................................................................... 26

6.1 Avaliação dos Parâmetros Químicos e Físicos da Água ............................... 26

6.1.1 Metais ................................................................................................... 28

6.1.2 Nutrientes ............................................................................................. 32

6.1.3 DBO

..................................................................................................... 35

6.1.4 Oxigênio Dissolvido .............................................................................. 37

6.1.5 Potencial Hidrogeniônico ...................................................................... 38

6.1.6 Temperatura ......................................................................................... 38

6.1.7 Condutividade ....................................................................................... 39

6.2. Avaliação dos Parâmetros Químicos e Físicos do Sedimento ..................... 40

6.2.1 Metais Totais ........................................................................................ 41

6.2.2 Matéria Orgânica .................................................................................. 46

6.2.3 Granulometria ....................................................................................... 47

6.3. Avaliação dos Ensaios Ecotoxicológicos ...................................................... 48

6.3.1 Teste A-D: Manutenção das Culturas ................................................... 49

6.3.2 Teste de Assimilação com Amostras de Água Superficial .................... 54

6.3.3 Teste de Assimilação com Amostras de Sedimento Superficial ........... 60

6.3.4 Teste de Dissimilação com Amostras de Água Superficial ................... 62

vii

6.3.5 Teste de Dissimilação com Amostras de Sedimento Superficial .......... 68

6.3.6 Outros Testes .........................................................................................70

6.4. Avaliação Estatística ...................................................................................... 74

6.4.1 Dados da Água Superficial .................................................................... 74

6.4.2 Dados do Sedimento Superficial ........................................................... 75

6.4.3 Dados dos Testes Ecotoxicológicos ...................................................... 75

7. CONSIDERAÇÕES FINAIS .................................................................................. 81

8. RECOMENDAÇÕES ............................................................................................. 83

9. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ..................................................................... 84

10. APÊNDICE .......................................................................................................... 94

viii

ÍNDICE DE TABELAS

Tabela 1 - Parâmetros analisados e metodologia utilizada nas amostras de

água.......................................................................................................... 17

Tabela 2 - Composição e concentração química utilizada na preparação das

soluções nutritivas A e B.......................................................................... 20

Tabela 3 - Concentração dos parâmetros físicos e químicos nas amostras de água

dos locais de coleta da Bacia Hidrográfica do Rio Tega, no 2º

semestre/05............................................................................................... 27

Tabela 4 - Concentração dos parâmetros físicos e químicos nas amostras de água

dos locais de coleta da Bacia Hidrográfica do Rio Tega, no 1º semestre/06

.................................................................................................................. 27

Tabela 5 - Comparação dos valores de metais totais (mg/Kg) obtidos no sedimento

do Arroio Tega com os dados (concentração média) da literatura

.................................................................................................................. 43

Tabela 6 - Classificação granulométrica, por freqüência simples e textural de

Shepard, do sedimento dos locais de coleta da BH do Arroio Tega, no

período de inverno/05............................................................................... 47

Tabela 7 - DBO

com a água superficial do Arroio Previde, local 4, usando o

consumo de O

mg/L como medida, campanha amostral

inverno/05..................................................................................................72

Tabela 8 - Matriz de correlação (Coeficiente de Spearman) entre os parâmetros

físicos e químicos, referente às coletas de amostras de água superficial

no período de inverno/05 e verão/06....................................................... 74

Tabela 9 - Matriz de correlação (Coeficiente de Spearman) entre os parâmetros

físicos e químicos, referente às coletas de amostras de sedimento

superficial, no período de inverno/05....................................................... 75

Tabela 10 – Análise de variância com os dados originais dos Testes A com a água

superficial................................................................................................. 76

Tabela 11 – Teste de comparações múltiplas Dunnett T3 com as concentrações dos

Testes A com água superficial................................................................. 77

Tabela 12 – Análise de variância com os dados transformados através do método

mínimos quadrados ponderados.............................................................. 77

Tabela 13 – Teste de comparações múltiplas de Tukey entre as concentrações dos

Testes A com sedimento superficial......................................................... 78

Tabela 14 - Análise de variância com os dados originais dos Testes D com a água

superficial................................................................................................. 79

Tabela 15 – Análise não paramétrica, por rank e rank médio, entre todos os dados

químicos e biológicos dos Testes A-D, com a água e o sedimento

superficial................................................................................................. 80

ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1 - Localização da área de estudo. Os pontos marcados representam os

locais de coleta na Bacia Hidrográfica do Arroio Tega, Caxias do

Sul/RS...................................................................................................... 10

Figura 2 - Identificação dos locais de coleta, na Bacia Hidrográfica do Arroio Tega,

Caxias do Sul/RS..................................................................................... 10

Figura 3 - Local de Amostragem nº 1, próximo à jusante do Arroio Tega, em estrada

de acesso ao Bairro Mariani-Reolon, de fronte ao antigo Moinho

Germani.................................................................................................... 11

Figura 4 - Local de Amostragem nº 2, área de forte influência industrial, no curso

médio do Arroio Tega, em estrada denominada de Perimetral Norte, ao

lado da Escola Estadual Evaristo De Antoni, no Bairro São

José................... 12

Figura 5 - Local de Amostragem nº 3, arroio tributário da Represa São Paulo do

Complexo Dal Bó, comprometido por esgotos domésticos...................... 13

Figura 6 - Local de Amostragem nº 4, próximo à estrada denominada Perimetral

Norte, anterior ao Residencial Interlagos, corpo receptor de efluentes de

origem industrial e cloacal........................................................................ 14

Figura 7 - Local de Amostragem nº 5, dentro da área da Represa São Miguel do

Complexo Dal Bó, com modificações antrópicas na área e no seu

entorno..................................................................................................... 15

Figura 8 - Manutenção das culturas mistas de Clorofíceas. Culturas permanentes à

esquerda. Pré-culturas, usadas para a realização dos testes, à

direita........................................................................................................ 19

Figura 9 - Aquário de 35 L utilizado para a manutenção da cultura mista de bactérias

aeróbias heterotróficas adaptadas ao consumo de extrato de carne

granulado.................................................................................................. 22

Figura 10 - Concentração de Níquel total na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência.............................. 29

Figura 11 - Concentração de Cromo total na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência.............................. 30

Figura 12 - Concentração de Zinco total na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência.............................. 31

Figura 13 - Concentração de Cu dissolvido na água superficial dos locais de coleta

da área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência.............................. 32

Figura 14 - Concentração de N-NO

na água superficial dos locais de coleta da área

de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência.............................. 33

Figura 15 - Concentração de N-NH

na água superficial dos locais de coleta da área

de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal de cor

preta representa o limite baseado na respectiva referência para um pH ≤

7,5. A linha horizontal de cor cinza representa o limite baseado na

respectiva referência para 7,5 < pH ≤ 8,0................................................ 34

Figura 16 - Concentração de P total na água superficial dos locais de coleta da área

de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência, para ambiente lótico

e tributários de ambientes intermediários ................................................ 35

Figura 17 - Concentração da DBO

na água superficial dos locais de coleta da área

de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência.............................. 36

Figura 18 - Concentração do OD na água superficial dos locais de coleta da área de

estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal representa

o limite baseado na respectiva referência................................................ 37

Figura 19 - Resultados do pH na água superficial dos locais de coleta da área de

estudo, no período de inverno/05 e verão/06. O limite está baseado na

respectiva referência................................................................................ 38

Figura 20 - Resultados da temperatura na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06............................. 39

Figura 21 - Resultados da condutividade na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06............................. 40

Figura 22 - Concentração de matéria orgânica no sedimento dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05. O limite de detecção do método

é de 0,01%............................................................................................... 47

Figura 23 - Curva de crescimento de uma cultura mista de Clorofíceas, indicando

uma fase estacionária, seguida de um crescimento exponencial pelo 3º e

4º dia, e a fase da morte a partir do 12º dia. Obtidas de 29/08 a

12/09/05.................................................................................................... 50

Figura 24 - Comportamento do pH durante o crescimento de uma cultura mista de

Clorofíceas, mostrando uma tendência à estabilização após o crescimento

exponencial. Obtidas de 29/08 a 12/09/05.............................................. 51

xii

Figura 25 - Manutenção do CBO médio mensal das bactérias do aquário 1 (A) e do

aquário 2 (B) de Dissimilação, durante o ano de 2005............................ 52

Figura 26 - Manutenção do CBO médio mensal das bactérias do aquário 1 (A) e do

aquário 2 (B) de Dissimilação, no primeiro trimestre de 2006.................. 53

Figura 27 - Curva de manutenção do CBO das bactérias do aquário de Dissimilação,

no período de 01/03 a 28/03/2005........................................................... 54

Figura 28 - Testes de Assimilação com a água superficial do local 1, amostragem de

inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença percentual (%)

da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 55

Figura 29 - Testes de Assimilação com a água superficial do local 2, amostragem de

inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença percentual (%)

da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 56

Figura 30 - Teste de Assimilação com a água superficial do local 3, amostragem de

inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção de

mg/L em relação ao controle de cada ensaio...................................... 57

Figura 31 - Testes de Assimilação com a água superficial do local 4, amostragem de

inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença percentual (%)

da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 58

Figura 32 - Testes de Assimilação com a água superficial do local 5, amostragem de

inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença percentual (%)

da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 59

Figura 33 - Testes de Assimilação com o sedimento superficial do local 1,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à

diferença percentual (%) da produção de O

mg/L em relação ao controle

de cada ensaio......................................................................................... 60

Figura 34 - Teste de Assimilação com o sedimento superficial do local 2, amostragem

de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio................................. 61

Figura 35 - Teste de Assimilação com o sedimento superficial do local 3, amostragem

de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio................................. 61

Figura 36 - Teste de Assimilação com o sedimento superficial do local 5, amostragem

de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio................................. 62

Figura 37 - Testes de Dissimilação com a água superficial do local 1, amostragem de

inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença percentual (%)

do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 63

xiii

Figura 38 - Testes de Dissimilação com a água superficial do local 2, amostragem de

inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença percentual (%)

do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 64

Figura 39 - Teste de Dissimilação com a água superficial do local 3, amostragem de

inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) do consumo de

mg/L em relação ao controle de cada ensaio...................................... 65

Figura 40 - Testes de Dissimilação com a água superficial do local 4, amostragem de

inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença percentual (%)

do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 66

Figura 41 - Testes de Dissimilação com a água superficial do local 5, amostragem de

inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença percentual (%)

do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 67

Figura 42 - Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 1,

amostragem de verão/06. Dados referentes à diferença percentual (%) do

consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio................. 68

Figura 43 - Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 2,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%)

do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 69

Figura 44 - Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 3,

amostragem de inverno/05 (A). Dados referentes à diferença percentual

(%) do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio...... 69

Figura 45 - Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 5,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%)

do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio............ 70

Figura 46 - Testes A com água superficial do Arroio Previde, local 4, sem a solução

nutritiva forte (SNF) e com a solução nutritiva forte (SNF), campanha

amostral inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da

produção de O

mg/L em relação ao controle.......................................... 71

Figura 47 - Testes D, com extrato de carne granulado e água de Dissimilação dos

aquários 1 e 2, buscando alcançar um PCO ideal no controle. Sendo A,

testes com concentração em g/ 1000 mL e B, testes com concentração

em g/ 500 mL ........................................................................................... 73

1. INTRODUÇÃO

A contaminação ambiental por agentes químicos tem ocorrido de forma

intencional ou acidental no desenvolvimento dos processos industrial, urbano e

agrícola, principalmente a partir de fontes não naturais decorrentes da atividade

antrópica, gerando impactos e promovendo lentas e muitas vezes irreversíveis

modificações.

Essas modificações podem ser causadas por um agente químico ou uma

mistura destes, podendo ocasionar efeitos tóxicos sinérgicos ou antagônicos.

Portanto, uma avaliação ambiental não deve ser baseada somente em análises

físico-químicas, mas deve estar combinada com testes biológicos (bioensaios).

Bioensaios ou testes ecotoxicológicos estão se difundindo e ganhando cada

vez mais importância no Brasil ao constituir uma análise indispensável no controle

da poluição hídrica, pois se fundamentam na utilização de organismos vivos que são

diretamente afetados pelos desequilíbrios que ocorrem nos ecossistemas aquáticos.

Os resultados dos testes ecotoxicológicos com organismos provenientes do

ambiente em estudo, dificilmente podem ser reproduzidos pela impossibilidade de se

repetir um ensaio sob as mesmas condições ambientais e, obviamente, com os

mesmos organismos. Por esse motivo, foi criada uma abordagem indicativa com os

testes de orientação (screening tests). Eles têm como objetivo a detecção da

toxicidade nos sistemas estudados, assim como, a orientação da necessidade de

testes mais complexos.

O município de Caxias do Sul localizado na Serra Gaúcha é considerado o

segundo maior pólo metal-mecânico do país também caracterizado por intensa

produção agrícola, sendo o maior produtor de hortifrutigranjeiros do Estado. A

crescente industrialização da região e o conseqüente aumento populacional, muitas

vezes sem cumprimento das normas ambientais e saneamento precário, têm

comprometido a qualidade das águas superficiais.

Na carência de informações sobre os efeitos ecotoxicológicos nos corpos

hídricos da região (avaliação de risco à população humana e aos ecossistemas

circundantes), o presente trabalho objetivou adaptar o Teste de Assimilação e

Dissimilação (Teste A-D) para sua aplicação em águas e sedimentos contaminados

por efluentes cloacais e industriais, simulando efeitos nos processos autotróficos e

heterotróficos fundamentais para o funcionamento de um ecossistema límnico.

Acrescentado a isto, o interesse do SAMAE (Serviço Autônomo de Água e Esgoto) e

da Secretaria Municipal de Meio Ambiente em avaliar a área em estudo, diante da

inexistência de informação sobre o impacto de metais e nutrientes na região e da

possibilidade de melhoria da qualidade de água, diminuindo o risco ambiental.

Desta maneira, se buscou a possibilidade de utilização do Teste A-D como

método de orientação para identificação das áreas de risco ecológico em águas

superficiais e como base para um programa de outros testes agudos e crônicos mais

complexos, conforme normas nacionais e internacionais.

2. JUSTIFICATIVA

A água doce é um recurso estratégico para a manutenção da vida. As

unidades básicas geográficas para a gestão dos recursos hídricos são as bacias

hidrográficas. Os homens fizeram alterações nas condições físicas, químicas e

biológicas de muitos rios, afetando severamente a potabilidade da água e reduzindo

drasticamente as quantidades e variedades de peixes, por exemplo, conduzindo a

extinção local de muitas espécies. O uso da terra para a agricultura e a urbanização

interferem fortemente nas trocas naturais entre os pequenos divisores de água

interconectados, cada um caracterizado por trocas de água e materiais, modificando

a hidrologia e morfologia dos rios. Somente nas últimas décadas isto se tornou

evidente quando ecossistemas fluviais foram afetados pela grande escala de

emissões globais, por exemplo, a chuva ácida que pode alterar a ciclagem mineral

(ADMIRAAL et al., 2000).

Nos últimos anos, tem crescido a preocupação sobre os efeitos tóxicos de

substâncias químicas no ambiente aquático. Muitas cidades, incluindo as

americanas, estão enfrentando sérios problemas ecológicos e toxicológicos

resultantes da descarga de efluentes complexos e substâncias químicas tóxicas em

lançamentos das águas servidas (HSIEH et al., 2004).

Para diagnosticar os problemas relacionados com a poluição de determinados

ambientes, torna-se necessário a adoção de métodos químicos, físicos e biológicos,

com técnicas aperfeiçoadas, como uma estratégia de monitoramento da sua

qualidade (SCHÄFER, 1985).

Uma avaliação ambiental não deve ser realizada apenas com análises

químicas isoladas, pois, normalmente, elas não estabelecem qual a partição química

de determinado poluente, verdadeiramente biodisponível, é capaz de interagir com

organismos vivos (FENT, 2003).

O despejo deliberado e lançamento acidental de compostos químicos

prejudiciais no ambiente tem o potencial para romper a estrutura e funcionamento

dos ecossistemas naturais (VYRYAN et al., 1999). Os efeitos tóxicos de substâncias

desconhecidas e muitas vezes indeterminadas nas misturas complexas ou com

efeitos sinérgicos possíveis entre compostos para efluentes podem ser detectados

somente por teste de toxicidade (SPONZA, 2003).

Os ecossistemas aquáticos são formados por compartimentos abióticos

básicos: a atmosfera, a coluna d’água e o sedimento. Estes ambientes recebem uma

série de influências que devem ser monitoradas, através de avaliações

ecotoxicológicas, a fim de avaliar a sua toxicidade.

A preocupação em monitorar os efeitos da ação antrópica, levou a criação da

ecotoxicologia, ciência preocupada em estudar os efeitos de agentes químicos

tóxicos, em nível de indivíduo, e suas conseqüências na estrutura e funcionamento

das populações, comunidades e ecossistemas (SOARES, 1991). Segundo

WITTERS (1998) a ecotoxicologia pode ser definida como o estudo do destino e

efeitos dos agentes tóxicos em ecossistemas. Uma abordagem interdisciplinar,

considerando processos moleculares, biológicos e químicos, assim como

mecanismos de toxicidade e processos ecológicos, é requerida, portanto, em

pesquisa ecotoxicológica. A ecotoxicologia estuda os efeitos causados por produtos

de origem antropogênica ou natural nos organismos em vários níveis de organização

(VIDOTTI & ROLLEMBERG, 2004).

Análises químicas fornecem somente parte do conhecimento necessário para

avaliar e calcular o potencial tóxico para ecossistemas e humanos. Isto é porque a

bioavaliação de compostos não é considerada e cada um dos compostos tem sítios

celulares diferentes ligados a atividades biológicas (PISKORSKA-PLISCZZYNSKA et

al., 1986; BRUNSTRÖM et al., 1991).

Os efeitos potenciais de compostos tóxicos no ambiente são determinados

não somente pela sua toxicidade intrínseca e concentração, mas também pelas suas

formas físico-químicas (GUÉGUEN et al., 2004).

FENT (2003) sugere, então, que as análises químicas devem ser combinadas

com testes biológicos ou bioensaios. Adicionado a esses conceitos, também é

importante considerar que a fração biodisponível do produto químico é crítica para a

captação e à concentração nos organismos expostos. Dentro desse contexto,

verifica-se que os efeitos ecotoxicológicos são dependentes da concentração do

produto químico disponível. Essas concentrações atingem sítios alvos específicos

nos organismos afetados e produzem efeitos moleculares que se manifestam

através de vários sinais tóxicos.

Bioensaios representam um papel crucial na compreensão do funcionamento

do ecossistema (WITTERS, 1998). Um bioensaio é um teste usado na determinação

de efeito nocivo de um ou mais agente físico, químico ou biológico nos organismos.

Existe uma infinidade de tipos de bioensaios que têm sido utilizados na avaliação do

impacto de agentes químicos sobre organismos aquáticos, bem como sobre a

qualidade de um determinado corpo da água. Portanto, bioensaio é um bom

complemento para análises químicas e uma ferramenta útil para prever os efeitos

ecológicos ao ambiente (WANG et al., 2003). Além de fornecer informações sobre os

níveis iniciais de dano e auxiliar no desenvolvimento de medidas de precaução e

estratégias para manejo ambiental (BLAISE et al., 1988; SLABBERT, 1996).

No decorrer da evolução dos testes ecotoxicológicos, que se estenderam por

várias décadas, validaram-se alguns bioensaios que hoje são parte integrante de

qualquer laboratório ecotoxicológico. Deles fazem parte, para citar alguns exemplos,

os testes com as bactérias Pseudomonas putida e Photobacterium phosphoreum

(Vibrio fisheri), as algas Chlorella sorokiniana, Scenedesmus subspicatus ou

Selenastrum capricornutum (Pseudokirchneriella subcapitata), os microcrustáceos

Daphnia magna e Ceriodaphnia dubia, bem como os peixes Danio rerio (paulistinha)

e Pimephales promelas (BOTSFORD, 2002; KNIE,1998).

Os procedimentos de testes toxicológicos e ecotoxicológicos foram

padronizados internacionalmente pela: OECD (Organization for Economic

Cooperation and Development) e USEPA (Environmental Protection Agency USA). A

OECD fornece guias de toxicidade aquática, desde 1982:

201 - algas verdes (Scenedesmus subspicatus), 1984;

202 - invertebrados aquáticos (Daphnia magna), 1982;

203 - peixes (Leuciscus idus), 1982.

Em outubro de 2002, com a atualização permanente dos guias, testes com

animais aquáticos foram publicados pela British Toxicology Society Working Party on

Toxicity (1984).

No Brasil, os bioensaios são realizados de acordo com o Manual de Teste

para Avaliação Ecotoxicológica de Agentes Químicos do IBAMA, ABNT (Associação

Brasileira de Normas Técnicas) e guias internacionais (USEPA/ OECD). Sendo que

a Portaria Normativa do IBAMA, nº 84, de 15 de outubro de 1996 estabelece critérios

a serem utilizados junto ao IBAMA, para efeitos de registro e avaliação do potencial

de periculosidade ambiental (PPA) de agrotóxicos, seus componentes e afins.

Exemplos de testes de toxicidade de acordo com a ABNT:

• Método de Ensaio com Algas (Chlorophyceae). Toxicidade Crônica. ABNT

(2005);

• Método de Ensaio com Daphnia spp (Crustacea, Cladocera). Toxicidade

Aguda. ABNT (2004);

• Ensaio de Toxicidade Aguda com Peixes. Parte III – Sistema de Fluxo

Contínuo. ABNT (1993);

• Método de Ensaio com Ceriodaphnia spp (Crustacea, Cladocera).

Toxicidade Crônica. ABNT (2005);

• Método de Ensaio com Peixes. Toxicidade Aguda. ABNT (2004);

• Método de Ensaio com Misidáceos (Crustacea). ABNT (2005);

• Método de Ensaio com Ouriço - do - mar (Echinoderma, Echinoidea).

Toxicidade Crônica de Curta Duração. ABNT (2006);

• Determinação do efeito inibitório de amostras de água sobre a emissão de

luz de Vibrio fischeri (Ensaio de bactéria luminescente). Parte I – Método utilizando

bactérias recém-cultivadas. ABNT (2006);

• Determinação do efeito inibitório de amostras de água sobre a emissão de

luz de Vibrio fischeri (Ensaio de bactéria luminescente). Parte II – Método utilizando

bactérias desidratadas. ABNT (2006);

• Determinação do efeito inibitório de amostras de água sobre a emissão de

luz de Vibrio fischeri (Ensaio de bactéria luminescente). Parte III – Método utilizando

bactérias liofilizadas. ABNT (2006);

• Toxicidade em sedimento – Método de Ensaio com Hyalella spp

(Amphipoda). ABNT (2007).

Dentre os organismos mais usados em testes para avaliação da toxicidade

aquática estão as algas e as bactérias.

Exemplos de utilização de algas e bactérias segundo OECD e DIN

(Alemanha):

• Inibição do crescimento de Ankistrodesmus bibraíanus, Scenedesmus

subspicatus, Clorolla vulgaris (OECD, 1984: 201; DIN 1989: W1, 38412 – L9);

• Inibição do crescimento de Scenedesmus subspiacatus (DIN, 1989: W2,

38412 – L9);

• Redução da fluorescência da clorofila de Scenedesmus (DIN 1989: W3,

38412 – L33);

• Redução da clorofila - a em águas superficiais (DIN,1989:W4, 38412–L16).

• Inibição da respiração do lodo ativado (OECD, 1982:209);

• Inibição do crescimento de Pseudomonas putida(DIN,1991:W19,38412-L8);

• Inibição da decomposição da substância a ser testada pelo lodo ativado

(em laboratório) (DIN, 1991: W20, 38412 – L24);

• Capacidade de decomposição do lodo ativado (DIN,1991:W21, 38412-L25);

• Medidas bicalóricas de inibição do consumo de oxigênio e produção de

calor: Saccharomyces cervisiae, Psedomonas putida, Enterobacter (tribo 54),

Serratia marcescens, Staphylococcus aureus, Alcaligenes faecalis, Escherichia coli

(026:B6), teste não padronizado ainda.

Independentemente da importância da medição de substâncias e das suas

concentrações nos efluentes ou nas águas, a avaliação do seu potencial de risco

para o homem e o meio ambiente é incomparavelmente mais importante. Assim, os

métodos da análise ecotoxicológica têm por finalidade saber se e em que medida as

substâncias são nocivas, como e onde se manifestam os seus efeitos (KNIE, 1998).

É comum a prática do uso de testes de curto prazo (agudo) para uma

avaliação inicial em situações aonde sua rapidez e relativo baixo custo permitem

examinar um grande número de amostras para indicação preliminar de toxicidade ou

avaliação da redução de toxicidade para efluentes ou variações temporais em água

ou esgoto. Os testes de orientação de longo prazo (crônicos) visam confirmação dos

propósitos de orientação e quando o regulamento requer o seu uso (GUNATILLEKA

& POOLE, 2000).

A classificação dos testes de toxicidade em agudo e crônico está, portanto,

relacionada com o ciclo de vida do organismo-teste e com o tempo de exposição dos

organismos à amostra durante o teste. Em um teste agudo o efeito está geralmente

associado à morte ou imobilidade do organismo. Para avaliar este tipo de efeito, em

geral, utiliza-se a concentração letal ou concentração efetiva que causou a morte ou

imobilidade a 50% dos organismos, representada respectivamente, por CL (I) 50 ou

CE (I) 50. No teste crônico, os efeitos estão mais associados à inibição do

crescimento e alterações no comportamento, sendo de modo geral, subletais e

observados em situações em que as concentrações do agente tóxico permitem a

sobrevida do organismo. Os resultados no teste crônico podem ser expressos como

CENO (maior concentração da amostra que não causa efeito deletérico) e CEO

(menor concentração que causa efeito deletérico) (RAND & PETROCELLI, 1985).

Os testes de orientação constituem a primeira fase da avaliação do potencial

ecotoxicológico de locais contaminados, na qual fontes e contaminantes de potencial

interesse são identificados (FENT, 2003).

A base metodológica do teste de orientação aplicado neste estudo, o “Teste

de Assimilação e Dissimilação”, foi desenvolvida nos anos de 1950 a 1960 na

Alemanha e foi chamado “Potencial de Produção e de Consumo de Oxigênio”. O

objetivo destas primeiras tentativas da quantificação de efeitos nocivos provocados

por efluentes tóxicos em rios foi uma complementação da avaliação da qualidade da

água baseada na presença ou ausência de bioindicadores da fauna de

macroinvertebrados, indicando o efeito da carga de efluentes orgânicos no balanço

de oxigênio e nas comunidades autóctones em águas de diferente nível de poluição.

As experiências positivas ao longo de duas décadas levaram ao desenvolvimento e

a uma proposta de uma norma de avaliação ecotoxicológica de águas superficiais

baseada na inibição dos processos de Assimilação e Dissimilação. O autor da norma

(KREBS, 1983, 1985) concluiu os resultados com a criação de uma norma nacional,

chamada “Teste de Assimilação e Dissimilação como critério de uma avaliação

ecotoxicológica da qualidade da água”. (CHIOCHETTA, 2004).

O princípio do teste de orientação A-D (Assimilação e Dissimilação) é a

avaliação da inibição da produção de oxigênio (fotossíntese) por uma suspensão de

algas verdes (clorofíceas) e do consumo de oxigênio (respiração) por uma cultura de

bactérias aeróbias heterotróficas adaptadas ao consumo de extrato de carne

granulado, após um período de 24h.

O objetivo é a simulação, ao máximo possível, dos processos de Assimilação

e Dissimilação em uma água superficial. Já que os ecossistemas límnicos estão

baseados nestes dois processos fundamentais. Trata-se da soma das atividades de

transformação de substâncias inorgânicas em biomassa, a Assimilação, e a soma

dos processos de sua utilização e decomposição, a Dissimilação. O primeiro

processo libera oxigênio, o segundo ocorre, dependendo de sua disponibilidade, sob

consumo de oxigênio. Nos estudos dos corpos hídricos são utilizados métodos de

quantificação destes processos baseados na produção de oxigênio pelo fitoplâncton,

a Produção Primária, e no consumo de oxigênio por bactérias aeróbias

heterotróficas, a Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO) (CHIOCHETTA, 2004).

Desse modo, a importância do presente trabalho consistiu em disponibilizar

um teste de orientação eficiente, fornecendo um procedimento apropriado para

monitoramento ecotoxicológico de águas superficiais e efluentes, de forma rápida e

a um baixo custo.

3. OBJETIVOS

3.1 Objetivo Geral

Adaptar o Teste A-D para aplicação em águas e sedimentos altamente

poluídos, exemplificado em um estudo ecotoxicológico do Arroio Tega no município

de Caxias do Sul/RS.

3.2 Objetivos Específicos

- Determinar parâmetros físico-químicos nas amostras de águas coletadas

(temperatura, OD, pH, condutividade, DBO

, P-PO

, NO

, NH

) e no sedimento

(granulometria e matéria orgânica);

- Verificar os níveis dos metais Ni, Cr, Cu e Zn presentes nas águas e no

sedimento coletados;

- Adaptar as condições de manutenção do teste A-D para as culturas mistas

de Clorofíceas e de bactérias heterotróficas aeróbias, adaptadas ao consumo de

extrato de carne granulado;

- Verificar a aplicabilidade do teste A-D;

- Adaptar o teste A-D aos vários tipos de pré-tratamento (não aeração,

aeração e homogeneização, aeração e decantação, aeração e filtração,

esterilização) das amostras;

- Formular proposta metodológica de adaptação do teste A-D para amostras

de água e sedimento com matéria orgânica e metais.

4. ÁREA DE ESTUDO

4.1 Localização

A área estudada, Figura 1, situa-se na região sul do Brasil, no Estado do Rio

Grande do Sul, município de Caxias do Sul, faz parte da Bacia Hidrográfica do Arroio

Tega, que é um dos formadores da Bacia Hidrográfica do Taquari-Antas, inserida na

Região Hidrográfica do Guaíba, constituindo uma das três regiões hidrográficas do

Estado.

4.2 Caracterização da Área

A Bacia Hidrográfica do Taquari-Antas situa-se na região nordeste do estado

do Rio Grande do Sul, abrangendo uma área de 26.428 km

, equivalente a 9% do

território estadual, e 120 municípios, inseridos total ou parcialmente. Limita-se ao

norte com a bacia do rio Pelotas, a oeste e ao sul com a bacia do rio Jacuí e a leste

com as bacias dos rios Caí e Sinos. Trata-se do principal afluente do rio Jacuí, maior

formador do Guaíba.

Devido à sua magnitude, esta bacia possui características físicas e antrópicas

diferenciadas: áreas de alto índice de industrialização, áreas com predomínio de

produção primária, zonas intensamente urbanizadas e freqüente ocorrência de

enchentes, entre outras. Uma das regiões mais desenvolvidas do Estado, o

Aglomerado Urbano do Nordeste, encontra-se nesta bacia hidrográfica.

Os municípios integrantes desta bacia concentram 20% do PIB estadual,

caracterizando-se por possuírem a base econômica voltada para um setor industrial

em crescimento. Representando cerca de 16% da população estadual, os

municípios integrantes da bacia do Taquari-Antas caracterizam-se por um elevado

grau de urbanização, por uma densidade demográfica de 40 hab/km

e por uma taxa

de crescimento populacional próxima à média do Estado

(www.fepam.rs.gov.br/qualidade/taquariantas.asp, 20/10/2005).

Conforme mapas do arquivo topográfico do SAMAE, o Arroio Tega era

denominado oficialmente de Arroio Marques do Herval. De 1900 até meados da

década de 60, alguns o chamavam Arroio Biondo, provavelmente porque passava

pelas terras da família Biondo. O Arquivo Histórico Municipal não dispõe de dados

sobre o período de utilização do Tega, mas em alguns registros consta que as águas

cristalinas foram aproveitáveis até meados da década de 60, e eram carregadas de

balde, pois não existia canalização (JORNAL PIONEIRO, 27/10/2005).

O Arroio Tega, após atravessar toda a cidade, no sentido leste/oeste,

deságua no Rio das Antas, juntando-se ao Rio Jacuí e posteriormente ao Guaíba.

Apresenta uma extensão de 33 km, sendo 12 km na área urbana.

Às margens do Arroio Tega nasceram importantes indústrias, que

impulsionaram a economia do município: vinícolas, lanifícios, moinhos, serrarias,

ferrarias e uma usina hidrelétrica. Porém sem uma política ambiental definida, o

crescimento da cidade aliado à falta de consciência da população, devastaram a

mata nativa e poluíram o Arroio Tega com grande quantidade de despejos

domésticos, agrícolas e industriais, principalmente o ramo da metalurgia (JORNAL

PIONEIRO, 27/10/2005).

A poluição do Arroio Tega já havia sido confirmada em 15/10/1989, através de

um documento escrito pela Patrulha Ecológica da época, baseado nas análises

físico-químicas e biológicas feitas nos laboratórios da UCS e SAMAE. A análise

indicou a presença de 2400 nmpcf/100mL, sendo aceitável, segundo os padrões

legais da Resolução nº 286 do CONAMA (1986), até 1000 nmpcf/100mL, para

recreação de contato primário. O laudo também constatou a existência de metais

pesados como cobre, alumínio, sulfatos, chumbo, cromo, zinco, prata entre outros,

tornando a utilização imprópria para qualquer finalidade de consumo. No leito do

Arroio Tega também são encontrados plásticos, pneus, latas e outros tipos de

resíduos orgânicos que são despejados pela população que se instalou às margens

do arroio (REIS, 2002).

Os níveis de poluição e contaminação, principalmente, mudam conforme o

clima e o dia da semana. Observa-se uma carga maior durante o final de semana

quando há pouca probabilidade de uma fiscalização pelos órgãos ambientais.

FONTANELLA (2004) e CHIOCHETTA (2004) realizaram testes de toxicidade com

amostras coletadas no final de semana, comprovando sua maior toxicidade.

Há um projeto de tratamento denominado Sistema de Esgotamento Sanitário

da Bacia do Arroio Tega que prevê a implantação de uma rede coletora de esgotos

ao longo do Arroio e a construção de uma estação de tratamento que incluirá

digestores UASB, filtros biológicos e decantadores secundários. O projeto tentará

atender inicialmente 80 mil pessoas, podendo chegar a 250 mil, tendo um

investimento total de 15 milhões, incluindo a captação e a rede coletora implantada

no Arroio. A prioridade inicial será de retirar o esgoto das águas e direcioná-los para

a rede coletora. Numa outra etapa, o projeto inclui recuperar totalmente o Arroio. A

meta é que em 5 anos o Arroio Tega esteja como nos anos 20, quando as pessoas,

além de beber suas águas, também faziam do Arroio um atrativo para a cidade, mas

todo esse trabalho dependerá da conscientização das pessoas quanto à importância

do Tega (JORNAL PIONEIRO, 27/10/2005).

4.3 Locais de Amostragem

Caxias do Sul está situada sobre um divisor de águas, de um lado a Bacia

Hidrográfica do Rio Taquari-Antas e do outro a Bacia Hidrográfica do Rio Caí. O

Arroio Tega percorre a cidade recebendo efluentes de todos os tipos: cloacal,

industrial e agrícola, os quais irão desaguar na BH do Rio das Antas. De acordo

com os registros do Arquivo Histórico Municipal, o Arroio Tega foi muito importante

para o desenvolvimento da região, movimentando moinhos para a geração de

energia, servindo como fonte de água e alimento (peixes) para consumo humano e

de animais, além de áreas de lazer onde as famílias faziam piqueniques aos finais

de semana.

As coletas foram feitas em 5 locais, os quais foram selecionados de

acordo com a proximidade da jusante, curso médio e montante do arroio, tipologia

e potencial de impactação dos efluentes (predominantemente doméstico e

industrial) e acesso para coleta de amostras (trechos não canalizados), tendo

sempre o cuidado de se manter na área de abrangência da BH do Arroio Tega.

Os locais selecionados para a amostragem estão indicados nas Figuras 1 e

Figura 1 - Localização da área de estudo. Os pontos marcados representam

os locais de coleta na Bacia Hidrográfica do Arroio Tega, Caxias do Sul/RS.

Figura 2 – Identificação dos locais de coleta, na Bacia Hidrográfica do Arroio

Tega, Caxias do Sul/RS.

Local 1: UTM 479552 – 6774466. Situado próximo da jusante do Arroio Tega

e não está canalizado. Não há mata ciliar, apenas vegetação rasteira, do tipo

capoeira. O assoreamento do canal é visível. Recebe a influência tanto de efluentes

industriais como domésticos, possui maior correnteza devido ao relevo acidentado,

presença de cascatas e muita vezes, há formação de espumas (Figura 3).

Figura 3 - Local de Amostragem nº 1, próximo à jusante da ponte, do Arroio

Tega, em estrada de acesso ao Bairro Mariani-Reolon, de fronte ao antigo Moinho

Germani.

Local 2: UTM 0481822 – 6775426. Localizado na zona industrial, porém

também recebe esgoto cloacal dos bairros residenciais próximos e das próprias

indústrias. Está canalizado na maior parte do trecho que atravessa a zona industrial,

apresentando assoreamento. Não há mata ciliar, pois ele segue seu curso dentro de

galerias de concreto (Figura 4).

Figura 4 - Local de Amostragem nº 2, área de forte influência industrial, no

curso médio do Arroio Tega, em estrada denominada de Perimetral Norte, ao lado

da Escola Estadual Evaristo De Antoni, no Bairro São José.

Local 3: UTM 485359 – 6776643. Situa-se num arroio que deságua dentro da

Represa São Paulo do Complexo Dal Bó, que desemboca posteriormente no Arroio

Dal Bó tributário do Arroio Tega, recebendo ao longo do seu percurso carga de

esgoto doméstico. De acordo com essa característica, ele não pode ser utilizado

como ponto controle conforme sugestões recebidas. Por se pensar que poderia ser

um ponto controle que se coletou a primeira vez (2º semestre de 2005). Não há

canalização, existe uma mata ciliar descontínua e deficiente (Figura 5).

Figura 5 – Local de Amostragem nº 3, arroio tributário da Represa São Paulo

do Complexo Dal Bó, comprometido por esgotos domésticos.

Local 4: UTM 04840329 – 6775210. Encontra-se no Arroio Previde, tributário

do Arroio Tega. Recebe esgoto cloacal e forte contribuição de efluentes industriais

como: mecânicas, posto de combustível, retíficas entre outros. Apresenta trechos

canalizados e não canalizados, estes com cobertura vegetal do tipo capoeira (Figura

6).

Figura 6 – Local de Amostragem nº 4, próximo à estrada denominada

Perimetral Norte, anterior ao Residencial Interlagos, corpo receptor de efluentes de

origem industrial e cloacal.

Local 5 : UTM 483738 – 6776921. Localiza-se num afluente da Represa São

Miguel do Complexo Dal Bó, que desemboca posteriormente no Arroio Dal Bó

tributário do Arroio Tega, considerado como local controle pelas medições a campo

(oxigênio, condutividade, pH) e pelo conjunto de fatores observados: cobertura

vegetal (mata ciliar), banhado (nascente) e campo, não sendo constatado

recebimento de esgoto cloacal ou industrial no entorno da área. Entretanto,

observam-se alterações antrópicas no ambiente como plantio de pinus e eucaliptus,

além da presença de banhistas e pescadores no local. Provavelmente, antigamente

havia habitação na área, pois se verificou os restos de construção (Figura 7).

Figura 7 – Local de Amostragem nº 5, dentro da área da Represa São Miguel

do Complexo Dal Bó, com modificações antrópicas na área e no seu entorno.

5. MATERIAL E MÉTODOS

O local para a pesquisa, Arroio Tega, foi escolhido devido à importância que

representa para o município de Caxias do Sul, não só pelos relatos históricos ou

porque como corpo receptor recebe os mais diversos tipos de efluentes líquidos e

resíduos sólidos ao longo do percurso, mas também pela sua funcionabilidade,

podendo futuramente, vir a fornecer água para abastecimento público se

recuperado, bem como, promover o desenvolvimento do turismo e a criação de

áreas de lazer.

A escolha dos parâmetros físicos e químicos a serem analisados foi feita

buscando a complementação das observações e análises dos ensaios

ecotoxicológicos no Teste A-D.

O presente estudo teve um período de amostragem de junho/2005 a

março/2006, envolvendo as estações inverno e verão.

5.1 Coleta das Amostras

A amostragem compreendeu a coleta simultânea de água e sedimento

superficial, em 5 locais do Arroio Tega e no arroio selecionado como local controle,

de modo a possibilitar uma estimativa da contribuição natural, no que tange aos

aspectos químicos e físicos, da composição desses compartimentos. Para a

coleta, observava-se antes a condição climática, com um mínimo de três dias sem

precipitação, de forma a evitar a diluição e a dissolução das amostras.

5.1.1 Coleta e Análise de Água

A coleta de água foi realizada entre a superfície e a aproximadamente 10 cm

de profundidade, dependendo o local de amostragem. Para a obtenção e o

armazenamento das amostras de água foram utilizados frascos plásticos de 5L

previamente lavados com água deionizada e água do local. Estes, foram

preenchidos com o auxílio de um becker, esterilizado e também enxaguado com a

água do local. Terminada a coleta, as amostras foram identificadas e encaminhadas

aos laboratórios, mantidas sob refrigeração, em torno de 4º C.

Nas amostras de água foram determinados os parâmetros: pH, condutividade

elétrica (µS/cm), temperatura (ºC) e OD (mg/L e % de saturação), fosfato solúvel

(mg/L), nitrato (mg/L), amônia (mg/L) e demanda bioquímica de oxigênio - DBO

(mg/L). Os quatro primeiros parâmetros foram medidos em campo através dos

aparelhos portáteis: pH-metro, termômetro, condutivímetro e oxímetro. Os demais

foram analisados segundo APHA (2005) por Espectrofotometria de Absorção

Atômica utilizando o espectrofotômetro HACH 4000 no Laboratório de Limnologia e

Toxicologia da Universidade de Caxias do Sul - UCS,.

Também se determinaram os metais pesados Ni, Cr, Zn (totais) e Cu

(dissolvido) pelo método EAS (Espectrofotometria de Absorção Atômica - Chama Ar

Acetileno) no Laboratório da Central Analítica da UCS, utilizando o

espectrofotômetro SpectrAA 250 Plus Varian.

Os parâmetros físicos e químicos analisados e os procedimentos analíticos

estão descritos a seguir na Tabela 1.

Tabela 1 – Parâmetros analisados e metodologia utilizada nas amostras de

água.

5.1.2 Coleta e Análise de Sedimento

O sedimento foi coletado com Draga de Eckmann nos locais 1 e 2, de maior

profundidade e, com peneira de 0,63 mm, usada em coleta de macroinvertebrados

bentônicos, nos locais rasos 3 e 5. Retirou-se uma fração superficial (± 10 cm), que

segundo FORSTNER & WITTMANN (1981) é a camada recente ou biologicamente

ativa e que está diretamente em contato com a coluna d’água. A amostragem

sempre ocorreu nas margens e no centro do arroio com posterior homogeneização

das amostras. O local 4 não foi amostrado pela impossibilidade de coleta e análise,

já que os cascalhos e matacões são o seu sedimento característico. Após a coleta,

as amostras foram rapidamente armazenadas em sacolas plásticas, identificadas e

colocadas em bandejas, para evitar seu deslocamento durante o transporte.

Segundo a literatura, em qualquer circunstância é recomendado evitar o

transcurso de tempo prolongado entre a coleta e a análise de amostras ambientais,

especialmente de sedimentos destinados a análises de toxicidade (BURTON, 1992).

As amostras de sedimentos foram levadas imediatamente, em no máximo 30 min, ao

Laboratório de Limnologia e Toxicologia da UCS, pesadas, dispostas em beckers de

500 e 250 mL e colocadas em estufa a 60ºC até secagem completa. Após a

secagem, o sedimento foi novamente homogeneizado, sendo identificado e

separado em saco plástico: uma parcela foi encaminhada à análise de granulometria

no Laboratório do Centro de Estudos Costeiros da Universidade Federal do Rio

Grande do Sul – UFRGS, outra para a análise de metais pesados e matéria orgânica

nos Laboratórios do Centro de Ecologia da UFRGS e, a maior parte para os testes

biológicos (Teste A-D) no Laboratório de Limnologia e Toxicologia da UCS.

A análise granulométrica consistiu na separação das principais classes

Parâmetro

Analisado

Metodologia Utilizada Limite de

detecção

N-NO

Espectrometria Uv-Vis

0,01 mg/L

N-NH

Titulométrico com destilação prévia e Nesslerização

0,01 mg/L

P-PO

Colorimétrico do ácido ascórbico

0,01 mg/L

Ni total

Espectrometria de Absorção Atômica Chama Ar Acetileno

0,02 mg/L

Cr total

Espectrometria de Absorção Atômica Chama Ar Acetileno

0,02 mg/L

Zn total

Espectrometria de Absorção Atômica Chama Ar Acetileno

0,01 mg/L

Cu dissolvido

Espectrometria de Absorção Atômica Chama Ar Acetileno

0,01 mg/L

DBO

Método de Winkler

0,1 mg/L

Potenciométrico

0,1 mg/L

Potenciométrico

Temperatura

Termometria

Condutividade

Condutivimetria

1 µs/cm

Altitude

Sistema de Posicionamento Global – GPS

texturais dos sedimentos (cascalho, areia, silte e argila) pelo Programa PANICOM/

SAG, determinando a classificação textural de SHEPARD.

A extração dos metais totais Ni, Cr, Zn e Cu foi feita por digestão ácida com

ácido nítrico e fluorídrico 1:1 em sistema fechado e quantificação por EAA

(Espectrofotometria de Absorção Atômica), Chama Ar – Acetileno. Optou-se por

medir os metais totais obtendo-se, desta forma, as taxas máximas dos metais

presentes, uma vez que a taxa de metais extraíveis está contida na taxa de metais

totais do sedimento estudado.

A determinação da matéria orgânica fez-se por Gravimetria, calcinação à

550ºC (ALLEN, 1989).

5.2 Testes Ecotoxicológicos -Testes de Assimilação e Dissimilação (Teste A-D)

Com o propósito de verificar a possibilidade de aplicabilidade do Teste de

Assimilação e Dissimilação, objetivando a padronização e uma informação preliminar

a cerca das características toxicológicas da água e do sedimento, efetuaram-se os

testes de toxicidade com culturas mistas de clorofíceas e culturas de bactérias

aeróbias heterotróficas adaptadas ao consumo de extrato de carne granulado,

O Teste A-D com as amostras de água utilizou vários tipos de tratamento

(sem tratamento ou amostra bruta, aeração e homogeneização, aeração e

decantação, aeração e filtração, esterilização – autoclavagem a 120ºC por 15 min).

Já com as amostras de sedimento, após a completa secagem e realização do

quarteamento para homogeneização, seguiu-se o procedimento de preparação do

elutriato descrito pela EPA (1991): solução constituída de uma parte de sedimento

para quatro partes de água deionizada, agitada manualmente (bastão) por 30 min,

deixa-se descansar por 1h, retira-se o sobrenadante e após centrifugada (5.000

rpm/15min) é adicionada às culturas de algas e bactérias para iniciar o Teste A - D.

O Teste de Assimilação e Dissimilação avalia a inibição da atividade

fotossintética e da respiração após exposição de 24h das culturas mistas de

clorofíceas e bactérias aeróbias às diluições de amostras de água superficial,

efluente ou elutriato.

5.2.1 Teste de Assimilação (Teste A)

Este estudo utilizou uma suspensão multialgal de Clorofíceas obtidas no

Laboratório de Toxicologia da Fundação Estadual de Proteção Ambiental (FEPAM)

para iniciar a cultura permanente. Devido às condições de manutenção: composição

específica da solução nutritiva A (item 5.2.1.1, letras c e d), luminosidade e

temperatura obtém-se uma predominância de algas verdes, principalmente do

gênero Scenedesmus, muito usado em testes toxicológicos padronizados.

5.2.1.1 Manutenção das Culturas de Algas

a) Cultura Permanente

As culturas permanentes servem como matéria-prima para os Testes de

Assimilação. Estas foram mantidas em frascos de vidro cilíndricos de 500 mL, numa

temperatura de 20ºC, sob aeração e iluminação contínua de 120 µE/m

s, com a

adição diária de solução nutritiva A, sendo desta forma, necessária a troca de meio a

cada semana. O objetivo desta renovação é manter as culturas permanentes em

crescimento constante. Tanto a cultura permanente como a pré-cultura (Figura 8)

foram mantidas sob as mesmas condições padronizadas.

b) Pré-Cultura

A partir da transferência de 20% da cultura permanente iniciava-se a pré-

cultura. A transferência era feita antes da fase de declínio do crescimento da

população para obtenção de uma pré-cultura em crescimento acelerado. Para a pré-

cultura utilizavam-se cilindros de 1000 mL, onde 900 mL correspondia a solução

nutritiva A e 100 mL à suspensão da cultura permanente, contendo em torno de 10

células/mL.

Em aproximadamente quatro dias, a pré-cultura atinge o crescimento

exponencial e está fisiologicamente adaptada às condições necessárias para a

realização do teste.

Figura 8 – Manutenção das culturas mistas de Clorofíceas. Culturas

permanentes à esquerda. Pré-culturas, usadas para a realização dos testes, à

direita.

c) Solução Nutritiva A – Para a Cultura Permanente e Pré-Cultura

A Solução A é constituída por 5 mL da solução I; 0,5 mL da solução II; 0,5 mL

da solução III (a composição das soluções pode ser verificada na Tabela 2); mais 1,5

g de Bicarbonato de Sódio e completa-se o volume de 500 mL com água deionizada,

conforme a Tabela 2.

d) Solução Nutritiva B – Para a realização do Teste de Assimilação

A Solução B é constituída por 50 mL da solução I; 5 mL da solução II; 5 mL da

solução III; mais 1,5 g de Bicarbonato de Sódio e completa-se o volume de 500 mL

com água destilada.

A Solução Nutritiva B, usada para a realização do Teste A, tem uma

concentração dez vezes maior que a Solução Nutritiva A. O objetivo é atingir o valor

desejado para a validação do Teste A, que no controle deve ter uma produção

bioquímica de oxigênio (PBO) de 6 ± 1 mg/L em 24 horas. Este valor é atingido com

uma concentração inicial de 50.000 células/mL, em crescimento exponencial, com

uma temperatura de 20ºC, uma intensidade de luz de 120 µE/m

s e uma

concentração 10x mais alta do que na solução nutritiva da manutenção da cultura

permanente e da pré-cultura. Não atingindo este valor, a pré-cultura não se encontra

em crescimento suficiente. Por causa disto, a manutenção e a observação desta

suspensão possuem um papel decisivo para a padronização do Teste A. O número

de células de algas por mL é obtido por espectrofotometria após uma correlação

entre a absorbância e o número de células de algas. Uma suspensão de 50.000

células de algas por mL corresponde a uma absorbância de Abs

578

= 0,010 (em

cubeta com d = 1 cm). Verificada a absorbância da suspensão de pré-cultura, é

calculada uma relação de diluição e o volume total necessário para o teste é

alcançado através da Solução Nutritiva B, de concentração 10x maior.

Tabela 2 – Composição e concentração química utilizada na preparação das

soluções nutritivas A e B.

Composição Química Concentração

Solução I

MgCl

.6H

CaCl

.2H

MgSO

.7H

1,5 g/L

1,2 g/L

1,8 g/L

1,5 g/L

0,16 g/L

Solução II

FeCl

.6H

EDTA.2H

80 mg/L

100 mg/L

Solução III

MnCl

.4H

ZnCl

CoCl

.6H

CuCl

.6H

MoO

.2H

185 mg/L

415 mg/L

3 mg/L

1,5 mg/L

0,01 mg/L

7 mg/L

NaHCO

50 g/L

Seguindo a ISO 8692:E (1989)

5.2.1.2 Procedimentos do Teste A

Na preparação dos testes coloca-se, primeiro, água deionizada

correspondente a ¾ do volume do balão volumétrico esterilizado de 1 L, para evitar

reações de precipitação entre a solução nutritiva B e o meio a ser testado e também,

para evitar o contato direto das algas com o meio. Após são adicionados 100 mL de

solução nutritiva B, mais o volume do meio a ser testado (diferentes diluições da

água superficial ou do elutriato) e o volume da suspensão de pré-cultura de algas

necessário para se obter uma concentração de 50.000 células/mL, completando-se

o volume de 1 L com água deionizada. O controle do teste é feito com água

deionizada, a mesma quantidade de solução nutritiva B e do volume de suspensão

de células de algas. O controle e as diluições, ambos de 1 L, foram distribuídos em 6

frascos de Winkler. Três frascos foram colocados em uma sala climatizada com

20ºC e iluminação constante de 120µE/m

s, denominados frascos claros, e os outros

três foram mantidos no escuro, sob a mesma temperatura de 20ºC, denominados

frascos escuros. O teor de oxigênio foi medido em todos os frascos antes e depois

da exposição de 24 horas.

Em relação às diluições, tanto as amostras de água superficial quanto as de

elutriato foram testadas nas concentrações 20%, 40%, 60% e 80% do volume de 1 L

do balão volumétrico. Nos ensaios com elutriato, para eliminar a turbidez, de modo a

evitar a interferência na taxa de produção bioquímica de oxigênio, antes da

realização dos testes, o preparado foi submetido à centrifugação por 15 min a 5000

rpm, em temperatura ambiente.

5.2.1.3 Cálculo dos Resultados

A Produção Bioquímica de Oxigênio (PBO) ou Potencial de Produção de

Oxigênio (PPO) é determinada dessa forma:

PBO (mg/L) = O

(mg/L) final claro – O

(mg/L) final escuro (após 24 h)

A produção de oxigênio do meio a ser testado e do controle é calculada

utilizando a diferença do frasco claro e frasco escuro.

A taxa de PBO de uma dada concentração do meio a ser testado é calculada

pela equação:

PBO

(%) = (PBOn – PBOc) x 100

PBOc

Onde:

PBO

= Taxa da Produção Bioquímica de Oxigênio

PBOc = Produção Bioquímica de Oxigênio do Controle

PBOn = Produção Bioquímica de Oxigênio no Nível de Concentração do Meio

a ser Testado

O critério do Teste de Assimilação é a inibição da PBO da concentração do

meio a ser testado, em relação ao controle. Trata-se da produção líquida. Assim,

valores negativos na PBO (c > n) são uma indicação de inibição ou de toxicidade da

amostra. Valores positivos, ou seja, favorecimento da Assimilação, podem ocorrer

em meios que contêm muitos nutrientes, principalmente fosfatos e nitrogênio

inorgânico, onde o efeito de “adubação” do meio a ser testado supera um provável

efeito tóxico.

5.2.2 Teste de Dissimilação (Teste D)

Para o Teste de Dissimilação foram obtidas bactérias aeróbias heterotróficas

a partir de uma incubação com água do arroio, localizado nas coordenadas UTM

485948 – 6773971, próximo ao Bloco 57 da UCS.

As bactérias oriundas do arroio foram adaptadas ao consumo de extrato de

carne granulado. Esta adaptação é feita para reduzir o consumo de eventuais

substâncias biodegradáveis no meio a ser testado, causando um aumento da taxa

de decomposição aeróbia nas amostras. Este aumento pode mascarar um eventual

efeito tóxico. Pela adaptação reduz-se este efeito, porém torna-se impossível

eliminá-lo por completo, tendo em vista que, o extrato de carne granulado foi

escolhido para a manutenção das bactérias porque apresenta uma composição

similar a substâncias orgânicas contidas em esgotos cloacais.

5.2.2.1 Manutenção das Culturas de Bactérias

As culturas de bactérias foram mantidas em dois aquários de vidro, um de 35

L e outro de 50 L, sob aeração contínua em sala aclimatizada, com temperatura

controlada de 20ºC e sem iluminação (em caixa de madeira) para evitar uma

contaminação por algas. Deste volume total, 10% compreenderam grânulos de areia

lavados e esterelizados, 10% de água do arroio e 80% de água filtrada (Figura 9).

Figura 9 – Aquário de 35 L utilizado para a manutenção da cultura mista de

bactérias aeróbias heterotróficas adaptadas ao consumo de extrato de carne

granulado.

Diariamente, se fez necessária a retirada de água para as medidas do CBO

(Consumo Bioquímico de Oxigênio) e a adição de 0,006 mg de extrato de carne

granulado para o aquário de 35 L e 0,005 mg para o de 50 L. Antes da adição, o

extrato de carne granulado foi diluído em água reconstituída. Para o teste, o volume

retirado não podia ultrapassar 10% do volume total do aquário, sendo substituído

imediatamente com água filtrada.

A água de Dissimilação retirada, correspondente a 1L, era colocada em

três frascos de Winkler e medida a concentração de oxigênio inicial. Após um

período de 24 h, sob temperatura de 20ºC, mantidos no escuro, os frascos eram

submetidos à medição do teor de oxigênio final. O valor do CBO diário era obtido

pela diferença dos dois valores. O valor desejado do CBO, sob condições

controladas, deveria estar em torno de 0,5 mg/L, conforme KREBS (1985).

A água reconstituída tem composição de 4,850 mL de água deionizada, 100

mL de solução 1 e 50 mL de solução 2. A solução 1 tem constituição de 7,5 g de

Carbonato de Cálcio (CaCO

) para um volume de 5 L. E a solução 2, 1 g de Cloreto

de Potássio (KCl), 2,4 g de Bicarbonato de Sódio (NaHCO

) e 30,5 g de Sulfato de

Magnésio (MgSO

) também para um volume de 5 L.

5.2.2.2 Procedimento do Teste D

O Teste de Dissimilação requer um CBO de 5 ± 1 mg/L, no escuro durante 24

horas a uma temperatura de 20ºC. Segundo CHIOCHETTA (2004), este valor,

normalmente, seria alcançado com uma concentração de peptona 100x maior no

que na água de Dissimilação. Para o Teste D se utilizaram as mesmas diluições do

Teste A (concentrações 20, 40, 60 e 80%). As diluições foram feitas com água de

Dissimilação, adição de 0,006 g extrato de carne granulado e mais o volume do meio

a ser testado (diferentes diluições da água superficial ou do elutriato) em um balão

volumétrico esterelizado de 500 mL. O controle foi feito com água de Dissimilação e

a adição de 0,006 g de extrato de carne granulado. Depois de preparada a diluição,

esta foi distribuída em três frascos de Winkler, mantidos em uma estufa sem

iluminação, com temperatura a 20ºC. O teor de oxigênio foi medido em todos os

frascos, antes e depois da exposição de 24 horas.

5.2.2.3 Cálculo dos Resultados

O Consumo Bioquímico de Oxigênio (CBO) ou Potencial de Consumo de

Oxigênio (PCO) é determinado dessa forma:

CBO (mg/L) = O

(mg/L) inicial – O

(mg/L) final após 24 horas

A taxa do CBO de uma dada concentração do meio a ser testado se calcula

pela seguinte equação:

CBO (%)

= (CBOn – CBOc) x 100

CBOc

Onde:

CBO

= Taxa do Consumo Bioquímico de Oxigênio

CBOn = CBO da Concentração do Meio a ser Testado

CBOc = CBO do Controle

O critério do Teste de Dissimilação é a inibição do CBO e, depende da

comparação entre a concentração do meio a ser testado e o controle. Assim, valores

negativos do CBO (c>n) indicam inibição ou toxicidade da amostra. Valores

positivos, favorecimento ou aceleração dos processos de Dissimilação, podem

ocorrer em esgotos biodegradáveis não tóxicos e também nos casos onde o CBO no

meio a ser testado supera um provável efeito tóxico.

Amostras com valores finais de oxigênio abaixo de 1 mg/L não devem ser

utilizados para a interpretação da inibição, devido à ocorrência de processos

anaeróbios. Os testes têm validade quando o consumo de oxigênio previsto no

controle for alcançado.

Valores de inibição e aceleração da PBO e do CBO até 10% são

considerados NOEL (no observed effect level). Nesta faixa torna-se difícil diferenciar

entre efeitos tóxicos e casuais dos ensaios. Então, são considerados acima de 10%.

5.3 Pré - tratamentos com as amostras de água superficial

Com o objetivo de eliminar interferências da DBO no Teste D e dos nutrientes

no Teste A, foram realizados os seguintes pré-tratamentos: sem aeração, aeração e

homogeneização, aeração e decantação, aeração e filtração, esterilização das

amostras. Também foram realizados os Testes A-D com as amostras brutas

(referência) que ocorreram no dia da coleta.

A amostra esterilizada era submetida a 120ºC por 15 min em autoclave.

A amostra decantada era obtida após aeração com bombas de ar durante 5

dias, em temperatura ambiente, simulando a DBO

e decantação de forma natural

por 1 hora.

A amostra homogeneizada era obtida após aeração com bombas de ar

durante 5 dias, em temperatura ambiente, simulando a DBO

e homogeneização

manual com bastão de vidro antes da utilização nos testes.

A amostra filtrada era obtida após aeração com bombas de ar durante 5 dias,

em temperatura ambiente, simulando a DBO

e filtração em membrana de 0,45 µm.

Este pré-tratamento foi em seguida abandonado pelo fato de apresentar resultados

semelhantes ao pré-tratamento aerado decantado.

5.4 Análises Estatísticas

Os testes estatísticos foram realizados no Núcleo de Assessoria Estatística

(NAE) do Departamento de Estatística, Instituto de Matemática, da UFRGS.

Os dados obtidos foram organizados em matrizes, onde as unidades

amostrais foram dispostas em linhas e as variáveis em colunas.

A mensuração dos testes biológicos foram descritos da seguinte forma: 0 =

quando não ocorreu inibição nem aceleração, 1 – quando ocorreu inibição e 2 –

quando ocorreu aceleração, de modo a conservar as informações dos dados

originais.

Para tabulação e processamento dos dados, foram utilizados os programas

estatísticos SPSS (Statistical Package for the Social Sciences) versão 8.0 e SAS

(Statistical Analysis System) versão 9.1.

Como primeira análise empregou-se a estatística descritiva, com

obtenção da média e desvio padrão.

A análise estatística utilizada foi a Análise de Medidas Repetidas. Os dados

apresentaram heterogeneidade de variâncias tanto para os Testes A-D com as

amostras de água superficial como com as de sedimento (elutriato). Devido a

variabilidade dos dados do Teste A com as amostras de água superficial, aplicou-se

o Teste de Comparações Múltiplas Dunnett T3, no nível de significância de 5%.

Os dados dos Testes A com as amostras de sedimento (elutriato) foram

transformados através do método de Mínimos Quadrados Ponderados, cuja

variância dos grupos entrou na composição da ponderação. Foi aplicado o Teste de

Comparações Múltiplas de Tukey (aplicado sempre no caso de rejeição da hipótese

de nulidade para ANOVA), no nível de significância de 5%.

Utilizou-se o Teste Kruskal – Wallis que é um teste não-paramétrico

equivalente ao ANOVA para distribuição assimétrica. O Teste Qui-Quadrado mais

especificamente o Teste Exato de Fisher foi utilizado para verificar associações entre

as variáveis.

Nos testes estatísticos foram comparados os dados entre os níveis de

concentração, época de coleta, pré-tratamentos. .

Para a comparação geral, entre os locais de coleta, dados das análises

químicas da água (metais pesados e nutrientes), dados químicos do sedimento

(metais pesados, matéria orgânica e granulometria) e dados dos Testes A-D com

água superficial e sedimento foi realizada a análise não paramétrica.

Na avaliação das relações entre as variáveis das amostras de água superficial

e sedimento foi utilizado a Correlação de Spearman.

6. RESULTADOS E DISCUSSÃO

6.1 Avaliação dos Parâmetros Físicos e Químicos da Água Superficial

De acordo com RAND & PETROCELLI (1985), no ambiente aquático, um

poluente pode existir sob três diferentes formas, que determina a sua

disponibilidade para os organismos: dissolvido, onde pode ser prontamente

incorporado, adsorvido a um componente biótico ou abiótico, podendo permanecer

suspenso na coluna d’água ou depositar-se no sedimento de fundo, onde estará

temporariamente ou permanentemente indisponível e incorporado aos organismos,

podendo ser metabolizado e novamente excretado para a água.

A poluição das águas tem como origem diversas fontes, dentre as quais se

destacam os efluentes domésticos, os efluentes industriais e a carga difusa urbana e

agrícola. Essas fontes estão associadas ao tipo de uso e ocupação do solo, sendo

responsável junto com a natureza geológica do terreno e a cobertura vegetal pela

qualidade das águas na Bacia Hidrográfica. Cada uma dessas fontes possui

características próprias relacionadas aos poluentes presentes. Por exemplo, os

esgotos domésticos apresentam contaminantes orgânicos biodegradáveis, nutrientes

e bactérias.

Os rios vêm sendo depositários de rejeitos por muitos anos, alterando

profundamente o estado natural do meio aquático. As alterações da qualidade da

água representam uma das maiores evidências do impacto das atividades humanas

sobre a biosfera (PORTO et al., 1991). Assim, a qualidade da água superficial de um

rio em qualquer ponto reflete muitas influências, sendo importante a sua

identificação e quantificação como forma de gerenciamento dos recursos da terra e

águas (MARKICH & BROWN, 1998).

Os parâmetros físicos e químicos da água superficial da Bacia Hidrográfica do

Arroio Tega, referente ao 2º semestre/05 (Tabela3) e 1º semestre/06 (Tabela 4),

estão apresentados para os locais de coleta. Os resultados, com exceção da

temperatura (ºC), condutividade (µS/cm) e altitude (m), estão expressos em mg/L e

são comparados à Classe 2 (quando não há classificação definida) - águas que

podem ser destinadas: ao abastecimento para consumo humano, após tratamento

simplificado; à proteção das comunidades aquáticas; à recreação de contato

primário, tais como natação, esqui-aquático e mergulho e Classe 4 (para mostrar

elevados níveis de metais) - águas que podem ser destinadas à navegação e à

harmonia paisagística, da Resolução CONAMA nº 357/ 2005.

Tabela 3 - Concentração dos parâmetros físicos e químicos nas amostras de água

dos locais de coleta da Bacia Hidrográfica do Arroio Tega, no 2º semestre/05:

Parâmetros Unidades Classe 2 Classe 4 L1 L2 L3 L4 L5

N-NO

mg/L 10,0 10,0 5,5 7,6 0,16 10,2 1,0

N-NH

mg/L 2,0 5,6 5,9 3,2 - 70,2 0,01

P-PO

mg/L 0,10 0,15 0,51 0,64 - 0,82 0,01

Ni total mg/L 0,025 0,025 0,14 0,47 <0,02 0,77 0,04

Cr total mg/L 0,05 0,05 < 0,03 0,34 <0,04 2,32 <0,04

Zn total mg/L 0,18 5,0 0,19 0,18 0,04 0,20 0,09

Cu dissolvido mg/L 0,009 0,013 < 0,01 0,04 0,02 0,08 <0,01

DBO

mg/L 5,0 10,0 6,4 5,1 6,8 6,9 0,8

OD mg/L 5,0 >2,0 7,7 5,2 6,1 7,1 8,3

pH mg/L 6,0 a 9,0 6,0 a 9,0 7,67 7,2 7,10 7,36 6,65

Temperatura ºC - - 15,2 12,5 17,5 18,6 23

Condutividade µS/cm - - 45 65,4 32 113 13,8

Altitude m - - 694 704 777 755 778

Tabela 4 - Concentração dos parâmetros físicos e químicos nas amostras de água

dos locais de coleta da Bacia Hidrográfica do Arroio Tega, no 1º semestre/06:

Parâmetros Unidades Classe 2 Classe 4 L1 L2 L4 L5

N-NO

mg/L 10,0 10,0 4,21 8,3 0,09 <0,01

N-NH

mg/L 2,0 5,6 12,54 7,1 8,47 0,14

P-PO

mg/L 0,10 0,15 0,83 0,80 0,67 <0,01

Ni total mg/L 0,025 0,025 0,06 0,20 0,20 <0,03

Cr total mg/L 0,05 0,05 0,06 0,19 3,68 < 0,02

Zn total mg/L 0,18 5,0 0,51 0,22 0,05 0,03

Cu dissolvido mg/L 0,009 0,013 0,03 0,05 < 0,01 < 0,01

DBO

mg/L 5,0 10,0 27,0 27,0 45,0 20,0

OD mg/L 5,0 >2,0 2,0 2,8 6,9 7,6

pH mg/L 6,0 a 9,0 6,0 a 9,0 7,00 6,72 7,81 7,20

Temperatura ºC - - 21,2 20 21,9 18,7

Condutividade µS/cm - - 348 305 348 23,5

Altitude m - - 694 704 755 778

Obs.: Resultados comparados a condição de qualidade Classe 2 e Classe 4

da Resolução CONAMA nº 357/05.

6.1.1 Metais

A toxicidade dos metais é uma questão de dose ou tempo de exposição, da

forma física e química do elemento e da via de administração/adsorção. Os níveis

máximos permitidos pelos órgãos de controle ambiental, EPA (Environmental

Protection Agency, EUA), WHO (World Health Organization, ONU) e CONAMA

(Conselho Nacional de Meio Ambiente), quanto à qualidade da água superficial

variam entre si, sendo as diferenças reflexos do potencial toxicológico do metal e da

qualidade ambiental de cada país (PIRES et al., 2000).

Quando comparada à legislação de outros países, como por exemplo,

Canadá, EUA e organizações internacionais como a World Health Organization, o

Brasil, de certo modo, tem os seus limites alinhados e, em alguns casos, mais

restritivos (LEMES, 2001).

A água é a principal via de transporte de metais. O transporte de metais

pesados ou elementos-traço pode ser realizado de duas formas físicas: as espécies

dissolvidas e as espécies associadas a partículas sólidas (FÖRSTNER &

WITTMANN, 1981; LACERDA, 1983; RUBESKA, 1988).

A análise quantitativa de metais totais na água bruta representa o somatório

da concentração de um dado elemento na fração dissolvida mais o seu conteúdo

ligado à fração suspensa.

Os metais totais níquel, cromo, zinco e o cobre dissolvido foram escolhidos

para serem avaliados baseado na toxicidade potencial para a biota aquática e para o

homem. Estes metais também são os lançados pelas empresas situadas na região

de estudo.

Para melhor compreensão da toxicidade e mobilidade dos metais, pode-se

considerar a classificação segundo BORG (1995): zinco e níquel são elementos

presentes principalmente na forma dissolvida, sendo muito suscetíveis ao

decréscimo de pH, relativo à mobilidade, sedimentação, concentração e especiação;

cromo é um elemento presente principalmente adsorvido às partículas; cobre é um

elemento presente principalmente na forma de complexos coloidais ou dissolvidos.

a) Níquel total

O níquel ocorre na crosta terrestre em uma concentração média de 75 mg/kg.

Em ambientes reduzidos, forma sulfitos insolúveis. Em condições aeróbias e pH

inferior a 9 se complexa com hidróxidos, carbonatos, sulfatos e ligantes orgânicos.

Também, pode se aderir reversivelmente a compostos de alumínio e manganês. Há

uma significativa correlação entre as concentrações de níquel e alumínio. Também

se adere a argilas e outras partículas finas (CETESB, 2001). O níquel é encontrado

em despejos industriais resultantes das atividades de galvanoplastia/ galvanização e

tinta invisível (BRAILE & CAVALCANTI, 1993).

O Ni total (Figura 10) foi detectado em todas as coletas amostrais. Somente

na amostra do local de coleta 3, em sua única campanha amostral (inverno/05), o

metal apresentou-se abaixo (<0,02 mg/L) do valor de referência das Classe 2 e 4 da

Resolução nº 357/05 do CONAMA (0,025 mg/L) e junto com o local de coleta 5,

considerado local controle, (<0,03 mg/L) no período de verão/06, apresentou valores

menores que o limite de detecção do método analítico (0,02 mg/L).

Conforme Relatório da CETESB (2001), na água, a concentração de níquel

tipicamente varia entre 0,001 e 0,003 mg/L, porém entradas antropogênicas podem

aumentar para 0,01 a 0,05 mg/L. É o que se constata, embora de forma bem mais

expressiva, com os valores elevados do metal registrados para os locais 2 (0,47 e

0,2 mg/L, respectivamente inverno/05 e verão/06) e 4 (0,77 e 0,2 mg/L

respectivamente inverno/05 e verão/06), situados na zona industrial. O local 1 (0,14

e 0,06 mg/L, respectivamente inverno/05 e verão/06), localiza-se mais distante da

zona industrial propriamente dita, aproximando-se da jusante da ponte do Arroio

Tega, e apresenta menor teor de níquel em relação aos locais que se destacaram

pelos níveis mais elevados.

Ni Total

0,01

0,10

1,00

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão CONAMA 357/05 = 0,025 mg/L

Figura 10: Concentração de Níquel total na água superficial dos locais de

coleta da área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência, condição de qualidade Classe

2 e 4.

b) Cromo total

O cromo ocorre na crosta terrestre em uma concentração média de 100

mg/kg. Na água, o teor natural é baixo entre 0,001 a 0,010 mg/L (MUDROCH et al,

1988 apud MOORE, 1990).

Muitas nações usam o padrão de potabilidade recomendado pela

Organização Mundial de Saúde de 0,05 mg/L, neste caso é assumido que o Cr

é a

espécie dominante. A EPA (1989b) desenvolveu padrão menos restritivo de 0,12

mg/L, que foi derivado com base em ingestão crônica de água contendo Cr

e Cr

O conteúdo de Cr total (Figura 11) foi detectado em todas as amostras

coletadas. O local de coleta 5 apresentou nas duas campanhas amostrais,

inverno/05 e verão/06, o metal com valores abaixo (0,04 e 0,02 mg/L) do valor de

referência das Classe 2 e 4 da Resolução nº 357/05 do CONAMA (0,05 mg/L), assim

como, as amostras dos locais de coleta 1 (0,03 mg/L) e 3 (0,04 mg/L). Já os valores

do metal para os locais de coleta 2 (0,34 e 0,19 mg/L) e 4 (2,32 e 3,68 mg/L),

demonstraram estar acima da referência nas duas campanhas amostrais.

A justificativa para os elevados índices de cromo nos locais 2 e 4, situados na

zona industrial do município, dá-se pelo ramo industrial das atividades industriais

localizadas nesta área. CETESB (2001) explica que o uso primário metalúrgico do

cromo é a produção de ligas usadas em aço inox e outros produtos especializados.

Os cromitos são primeiramente convertidos em dicromato de sódio e depois usados

na manufatura de ácido crômico, pigmentos e agentes tânicos para couro. O

trabalho de BRAILE & CAVALCANTI (1993), acrescenta que a ocorrência natural de

sais de cromo hexavalente, os cromatos, é muito rara, de modo que quando estão

presentes na água, devem originar-se da poluição por despejos industriais. Os sais

de cromo hexavalente são largamente usados nas operações de piquelagem e

cromagem de metais (galvanização), corantes, explosivos, cerâmica, papel, tinturaria

em indústrias têxteis, fotografia, etc.

Cr Total

0,0

0,1

1,0

10,0

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão CONAMA 357/05 = 0,05 mg/L

Figura 11: Concentração de Cromo total na água superficial dos locais de

coleta da área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência, onde a condição de qualidade

Classe 1 a 4 é a mesma.

c) Zinco total

O zinco ocorre na crosta terrestre em uma concentração de 70 mg/kg. Os

maiores usos do zinco são para revestimento de proteção do ferro e aço e

fabricação de ligas e latão. Aproximadamente 34% do total emitido de zinco na

atmosfera são de fonte natural, o restante tem origem em produção do metal,

queima de carvão e óleo, fertilizantes e produção de cimento (MOORE, 1991).

A ocorrência de Zn total (Figura 12) acima do limite de detecção do método

analítico (0,01 mg/L) se verificou em todas as amostras. O local 1 apresentou nas

duas campanhas amostrais, inverno/05 e verão/06, o metal com valores superiores

(0,19 e 0,51 mg/L) ao de referência da Classe 2 da Resolução nº 357/05 do

CONAMA (0,18 mg/L), bem como, o local 2 na amostragem de verão/06 (0,22 mg/L)

e com valor igual ao da norma no período de inverno/05 (0,18 mg/L) e o local 4 no

inverno/05 (0,2 mg/L). Já em comparação ao limite estabelecido na Classe 4 (5

mg/L), nenhum dos locais atingiu esta condição de qualidade. Isto pode ter ocorrido,

pois conforme MOORE (1991), o zinco se adere rapidamente a muitos ligantes

orgânicos, principalmente na presença de compostos de nitrogênio e enxofre

doadores de átomos. Em condições aeróbias, Zn

é espécie predominante para pH

ácido. Em condições anaeróbias, forma ZnS entre pH 1 a 14.

Zn Total

0,01

0,1

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão CONAMA 357/05 = 0,18 mg/L

Figura 12: Concentração de Zinco total na água superficial dos locais de

coleta da área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência, condição de qualidade Classe

2 .

d) Cobre dissolvido

O cobre ocorre na crosta terrestre em uma concentração média de 50 mg/Kg.

Na água, o cobre total é detectado em baixas concentrações, geralmente inferior a

0,020 mg/L. Na água o fator de concentração sedimento/água típico excede 100.

Quando o pH está em torno do neutro, a maioria do cobre inorgânico da solução

está complexado em carbonatos, nitratos, sulfatos e cloretos. Em algumas águas,

mais de 90% pode estar aderido a ácidos húmicos. Existem poucos casos

reportados para efeitos agudos e, raramente para efeitos crônicos. Muitas nações

usam como limite máximo na água, para proteção à saúde humana, 1,0 mg/L.

Utilizando-se estudos toxicológicos, resulta-se no valor para a água potável de 1,3

mg/L (MOORE, 1990).

O Cu dissolvido (Figura 13) foi detectado próximo dos valores do limite de

detecção (0,01 mg/L) e dos valores de referência da Classe 4 da Resolução nº

357/05 do CONAMA (0,013 mg/L) nas amostras dos locais de coleta 5 (<0,01 mg/L)

nas duas campanhas amostrais, 1 (<0,01 mg/L) no inverno/05 e 4 (<0,01 mg/L) no

verão/06. Em comparação a condição de qualidade Classe 2 (0,009 mg/L), todos os

locais apresentaram concentrações acima do valor limite, o qual é restritivo demais.

Então, os menores níveis do metal são apresentados pelo local 5, de desempenho

constante em ambas as amostragens, provavelmente porque este se encontra mais

distante da zona industrial.

Os valores mais elevados de cobre dissolvido são observados para os locais

1 (0,03 mg/L, verão/06), 2 (0,04 e 0,05 mg/L, respectivamente inverno/05 e

verão/06), 3 (0,02 mg/L, inverno/05) e 4 (0,08 mg/L, inverno/05), provavelmente por

estarem situados na zona industrial do município, já que conforme MOORE (1990), o

cobre é utilizado para fiação elétrica, galvanização, produção de ligas, conservante

de pintura, em construção e tubulações hidráulicas e na forma de sulfato de cobre é

usado como algicida e fungicida. BRAILE & CAVALCANTI (1993) relatam também

curtimento, tinturas têxteis, impressões fotográficas, pigmentos e tintas indeléveis.

Cu Dissolvido

0,00

0,01

0,10

1,00

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão

CONAMA 357/05 = 0,009 mg/L

Figura 13: Concentração de Cu dissolvido na água superficial dos locais de

coleta da área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal

representa o limite baseado na respectiva referência, condição de qualidade Classe

6.1.2 Nutrientes

Os nutrientes provocam inicialmente o aumento na produção primária do

ecossistema e, numa fase posterior, passam a ocorrer modificações significativas na

taxa de sedimentação, na dinâmica de oxigênio, alterações nas comunidades e na

redução da qualidade da água para fins econômicos e de lazer. No entanto, quando

a fonte de nutrientes são esgotos domésticos e industriais não tratados, o processo

de deterioração do ecossistema é mais rápido. Isto ocorre porque estes efluentes

são ricos em matéria orgânica, que em pouco tempo, após seu lançamento, começa

a ser decomposta, acarretando altos déficits de oxigênio, além de reduzir a

profundidade média do corpo d’água em conseqüência do acúmulo do material não

decomposto no sedimento e pelo aumento da taxa de sedimentação de detritos

(ESTEVES, 1998).

O mesmo autor relata que a eutrofização artificial quebra a estabilidade do

ecossistema (homeostasia) provocando profundas mudanças no metabolismo e

podendo tornar um corpo d’água inaproveitável para o abastecimento, geração de

energia e área de lazer. Durante este processo, observa-se um aumento da

concentração de quase todos os elementos químicos essenciais à produtividade

primária, sendo o fosfato o nutriente mais importante.

Os nutrientes nitrato, nitrogênio amoniacal e fósforo total foram escolhidos

para serem avaliados, pois compõem os efluentes de esgotos cloacais e industriais

não tratados e da lixiviação de áreas agriculturáveis lançados na região de estudo.

a) Nitrato

O nitrogênio assume grande importância nos ambientes aquáticos por ser um

dos nutrientes essenciais para o desenvolvimento de biomassa. Por isso o nitrogênio

é considerado como um dos nutrientes chave no processo de eutrofização de lagos

e rios (BARTRAM & BALLANCE, 1996).

O íon nitrato (NO

) é a forma comum do nitrogênio combinado encontrado em

águas naturais, sendo o produto final da oxidação bioquímica da amônia. Ele pode

ser bioquimicamente reduzido a nitrito (NO

) por processos de desnitrificação,

geralmente em condições anaeróbias. O íon nitrito é rapidamente oxidado a nitrato.

Fontes naturais de nitrato incluem rochas ígneas, drenagem da terra e de restos de

plantas e animais (CHAPMAN, 1992).

Águas superficiais contendo altas concentrações de nitratos e nitritos não

podem ser consideradas seguras devido a lançamentos recentes de contaminantes.

Por outro lado, amostra sem nitrogênio orgânico, sem nitrogênio amoniacal e com

algum nitrato pode ser considerada relativamente segura pelo fato de que a

nitrificação já ocorreu e a poluição não é recente (PAIVA & PAIVA, 2001).

O nitrato foi encontrado (Figura 14) em todas as amostras coletadas acima do

limite de detecção do método analítico (0,01 mg/L) com exceção do local de coleta 5

(<0,01 mg/L). O nitrato foi detectado acima do valor de referência da Classe 2 e 4 da

Resolução nº 357/05 do CONAMA (10,0 mg/L) para o local de coleta 4, na

campanha amostral do inverno/05 (10,2 mg/L). O local de coleta 2 (7,6 e 8,3 mg/L,

inverno /05 e verão/06, respectivamente) chama a atenção, porque mesmo não

tendo ultrapassado o valor estabelecido pela norma, que é absurdamente

permissivo, apresenta uma quantidade de nitrato muito próxima do limite

referenciado. Segundo os autores BRAILE & CAVALCANTI (1993) e CHAPMAN

(1992), águas residuárias domésticas e industriais podem elevar as concentrações

naturais de nitrato na água, localizando-se quase sempre abaixo de 1 mg/L.

Concentrações próximas de 5 mg/L indicam poluição excessiva, por matéria

orgânica, ou ainda, aplicação excessiva de fertilizantes que são parcialmente

carreados pelas águas de infiltração do solo.

N-NO

0,0

0,1

1,0

10,0

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão

CONAMA 357/05 = 10,0 mg/L

Figura 14: Concentração de N-NO

na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal representa o

limite baseado na respectiva referência, condição de qualidade Classe 2.

b) Nitrogênio Amoniacal

Segundo CHAPMAN (1992), a amônia ocorre naturalmente em corpos d’água

vindo da quebra de matéria orgânica nitrogenada orgânica e inorgânica no solo e na

água, excreção pela biota, redução do gás nitrogênio pelos microorganismos e pela

troca de gás com a atmosfera. É também descartada nos corpos d’água por alguns

processos industriais, e também é um componente dos efluentes municipais.

Conforme o pH altas concentrações de amônia são tóxicas à vida aquática.

A amônia é um útil indicador de poluição urbana. Altas concentrações podem

indicar poluição orgânica de esgotos domésticos, efluentes industriais ou

escoamento superficial com fertilizantes. Variações sazonais também ocorrem, como

resultado da morte e decaimento de organismos aquáticos, particularmente

fitoplâncton e bactérias em águas ricas em nutrientes (CHAPMAN, 1992).

O nitrogênio amoniacal (Figura 15) foi detectado em todas as amostras

coletadas estando acima do valor limite de detecção (0,01 mg/L) com exceção do

local de coleta 5 (<0,01 mg/L), no inverno/05. Quanto aos valores de referência da

Classe 2 da Resolução nº 357/05 do CONAMA (3,7 mg/L para um pH ≤ 7,5 e 2,0

mg/L para 7,5 < pH ≤ 8,0), observa-se que o local de coleta 4 apresentou valores

acima dos referidos pela Resolução, 70,2 mg/L num pH = 7,36 no inverno/05 e 8,47

mg/L num pH = 7,81 no verão/06, assim como, o local de coleta 1 com 5,9 mg/L num

pH = 7,67 no inverno/05 e 12,54 mg/L num pH = 7 no verão/06 e o local de coleta 2,

que registrou valor próximo do citado na referência, 3,2 mg/L num pH = 7,2 no

inverno/05 e valor mais elevado 7,1 mg/L num pH = 6,72 no verão/06.

Em comparação as concentrações limites estabelecidas na Classe 4 da

Resolução nº 357/05 do CONAMA (13,3 mg/L para um pH ≤ 7,5 e 5,6 mg/L para 7,5

< pH ≤ 8,0), os locais de coleta 4 (inverno/05 e verão/06) e 1 (inverno/05 e quase se

equivaleu no verão/06), também apresentaram os valores acima dos citados pela

referência.

N-NH

0,01

0,1

100

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão

CONAMA 357/05 = 3,7 mg/L

Figura 15: Concentração de N-NH

na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal representa o

limite baseado na respectiva referência, condição de qualidade Classe 2.

c) Fósforo Total

O fósforo é um nutriente essencial para organismos vivos e existe nos corpos

d’água nas formas dissolvida e particulada. É geralmente o nutriente limitante para o

crescimento algal e controla a produtividade primária de um corpo d’água. Nas

águas naturais e residuárias a maior parte do fósforo ocorre como ortofosfatos e

polifosfatos dissolvidos, bem como fosfatos organicamente ligados. Mudanças entre

essas formas ocorrem continuamente, e o equilíbrio entre as diferentes formas

depende do pH (CHAPMAN, 1992).

Em águas naturais a disponibilidade de fosfato é geralmente o fator limitante

(PAIVA & PAIVA, 2001). O fósforo, analogamente ao nitrogênio, é um nutriente

muito importante para o crescimento e reprodução dos microrganismos que

promovem a estabilização da matéria orgânica presente nos esgotos sanitários e

despejos industriais biodegradáveis (BRAILE & CAVALCANTI, 1993).

Fontes naturais de fósforo são principalmente o intemperismo de rochas

fosfóricas e a decomposição de matéria orgânica. Efluentes domésticos

(particularmente aqueles que contêm detergentes), efluentes industriais e

escoamento com fertilizantes contribuem para elevados níveis de fósforo nas águas

superficiais. O fósforo associado com constituintes orgânicos e minerais dos

sedimentos nos corpos d’água pode ser mobilizado pelas bactérias e liberado na

coluna d’água. O fósforo raramente é encontrado em grandes concentrações nas

águas naturais, pois ele é assimilado pelas plantas. Como resultado podem existir

consideráveis variações sazonais na concentração de fósforo. Na maioria das águas

naturais o fósforo varia de 0,005 a 0,020 mg/L (CHAPMAN, 1992).

O conteúdo de fósforo total (Figura 16) foi detectado em níveis mais elevados

em comparação referido pela Classe 2 (0,10 mg/L) e Classe 4 (0,15 mg/L), de

valores restritivos, da Resolução nº 357/05 do CONAMA, para ambiente lótico e

tributários de ambientes intermediários, em quase todas as amostras coletadas,

somente as do local 5, mostraram valores que não ultrapassam o limite de detecção

do método analítico (0,01mg/L) nas duas campanhas amostrais.

P Total

0,00

0,01

0,10

1,00

10,00

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão

CONAMA 357/05 = 0,10 mg/L

Figura 16: Concentração de P total na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal representa o

limite baseado na respectiva referência, para ambiente lótico e tributários de

ambientes intermediários, condição de qualidade Classe 2.

6.1.3 Demanda Bioquímica de Oxigênio

BRANCO (1986) conceitua Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO) de uma

água como a quantidade de oxigênio necessária para oxidar a matéria orgânica por

decomposição microbiana aeróbia para uma forma inorgânica estável.

Segundo CHAPMAN (1992), procedimentos laboratoriais padronizados são

usados para determinar a DBO pela medida da quantidade de oxigênio consumido

após incubação da amostra no escuro a uma temperatura específica, usualmente a

20ºC, por um período de tempo específico, freqüentemente usado e referido como

DBO

5,20

. O consumo de oxigênio é determinado a partir da diferença entre as

concentrações de oxigênio dissolvido na amostra antes e depois do período de

incubação. Se a concentração de material orgânico nas amostras for muito alta,

essas podem requerer diluição com água destilada antes da incubação, para que o

oxigênio não seja totalmente reduzido.

O método de incubação com diluição aplica-se a águas superficiais poluídas,

efluentes e águas residuais que têm microorganismos próprios, mas não oxigênio

suficiente para que, após cinco dias de incubação, ainda haja oxigênio dissolvido na

amostra.

Admite-se que nestas condições 80 % da matéria orgânica carbonatada já

estejam mineralizadas e começando a nitrificação. Uma oxidação total, em geral,

leva cerca de 20 dias (ABNT, 1992).

A Figura 17 mostra a DBO

das amostras de água coletadas nas duas

campanhas amostrais. Com exceção do valor apresentado pelo local de coleta 5 (0,8

mg/L) no período de inverno/05, os outros valores foram maiores em comparação ao

referenciado pela Classe 2 da Resolução nº 357/05 do CONAMA (5,0 mg/L),

principalmente no período de verão/06. E se comparado ao valor referenciado pela

Classe 4 (10,0 mg/L), todos os valores correspondentes a coleta verão/06 também

apresentaram-se maiores. Tal fato pode ser explicado pelo aumento de temperatura

característico desta estação, o que ocasiona uma diminuição do oxigênio dissolvido

na água e também, pela possível redução do volume de chuvas, acumulando maior

porcentagem de matéria orgânica no meio.

Esta é uma variável utilizada para o controle da carga poluidora dos efluentes.

Para esse fim, pode-se utilizar também a medição dos metais pesados, sólidos em

suspensão e outros agentes tóxicos. Porém, existe uma grande variedade de

substâncias químicas de composição indefinida nos efluentes (CETESB, 1994) e foi

para superar essas limitações e complementar as informações obtidas com os

métodos físicos e químicos que foram desenvolvidos os ensaios de toxicidade que

utilizam organismos vivos como indicadores de efeitos tóxicos (DIAMOND & DALEY,

2000; MA et al., 2002a; AIT-AISSA et al., 2003).

DBO

100

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão CONAMA 357/05 = 5,0 mg/L

Figura 17: Concentração da DBO

na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal representa o

limite baseado na respectiva referência, condição de qualidade Classe 2.

6.1.4 Oxigênio Dissolvido

O oxigênio dissolvido (OD) é um indicador muito utilizado no controle da

poluição da água e um dos mais importantes gases dissolvidos para caracterização

e dinâmica de um ecossistema aquático, sua concentração varia em função da

temperatura, altitude e aeração da água (APHA, 2005).

As principais fontes de oxigênio para a água são: a atmosfera e a

fotossíntese. Por outro lado, as perdas são: o consumo pela decomposição de

matéria orgânica (oxidação), perdas para a atmosfera, respiração de organismos e

oxidação de íons metálicos como, por exemplo, o ferro e o manganês (ESTEVES,

1998).

CHAPMAN (1992) considera que a determinação da concentração de OD é

fundamental para o controle da qualidade da água, já que o oxigênio geralmente

está envolvido ou influencia todos os processos químicos e biológicos em um corpo

d’água. A medida de OD pode ser utilizada para medir o grau de poluição por

matéria orgânica, a destruição de substâncias orgânicas ou o nível de

autopurificação da água. Para águas não poluídas, o valor de oxigênio dissolvido é

geralmente um valor um pouco inferior a 10 mg/L.

As amostras de água coletadas na estação inverno/05 continham maior

quantidade de oxigênio dissolvido, conforme Figura 18. Se observa que com

exceção das amostras do local 1 (2,0 mg/L) e 2 (2,8 mg/L), coletadas no verão/06,

todas as outras apresentaram valores maiores em comparação ao referenciado pela

Classe 2 da Resolução nº 357/05 do CONAMA (≥ 5 mg/L) e não inferiores ao da

Classe 4 (2,0 mg/L). O comportamento verificado na amostra coletada no local 1,

provavelmente tenha ocorrido por lançamento significativo de efluentes domésticos e

industriais, causando depleção de oxigênio pela decomposição de uma acentuada

quantidade de matéria orgânica.

De forma generalizada, os locais de coleta apresentaram uma boa quantidade

de oxigênio dissolvido, que pode ser explicada pela influência da topografia da

região. O relevo acidentado ocasiona maior movimentação das águas,

proporcionando uma melhor dissolução do oxigênio no meio.

12345

Locais de Coleta

mg/L

Inverno Verão CONAMA 357/05 = 5,0 mg/L

Figura18: Concentração de OD na água superficial dos locais de coleta da

área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. A linha horizontal representa o

limite baseado na respectiva referência (concentração mínima de OD), condição de

qualidade Classe 2.

6.1.5 Potencial Hidrogeniônico

O potencial hidrogeniônico (pH) é a medida do balanço de ácidos e bases de

uma solução e é definido como o logaritmo negativo na base dez do íon hidrogênio.

A escala de pH varia de 0 a 14, onde pH<7 indica águas ácidas, pH>7 indica águas

básicas e pH=7 indica águas neutras. Águas com pH baixo são corrosivas e

agressivas, enquanto que o pH alto possibilita a formação de incrustações. Já nos

corpos d’água pHs elevados podem estar associados à proliferação de algas.

BRANCO (1986), comenta que variações muito grandes no pH do meio podem

afetar a fauna e a flora de uma massa d’água. Os peixes podem agüentar variações

de pH entre os valores 5 e 9.

SPERLING (1995), refere que valores de pH afastados da neutralidade, pH 7,

podem afetar a vida aquática.

Este parâmetro é importante no controle da precipitação, mobilidade e

biodisponibilidade dos íons metálicos, quando em pH básico a maioria destes íons

precipita na forma de hidróxido ou sais básicos (ESTEVES, 1998).

LAYBAUER (1995) acrescenta que em pH básico são freqüentes as formas

particulada e coloidal dos metais, o que favorece a decantação destes, para o

compartimento sedimentar, onde podem ficar retidos e pouco biodisponíveis. Já em

pH ácido, predominam as formas iônicas do metal, na fase dissolvida.

CHEUNG et al. (1993), reportam que o pH afeta indiretamente a toxicidade

das amostras, podendo controlar a forma com que muitas substâncias se

apresentam, como a amônia e metais.

Entretanto, os valores de pH encontrados para as amostras de água, Figura

19, estão na faixa considerada normal para águas doces, de Classes 1 a 4, de

acordo com a Resolução nº 357/05 do CONAMA (pH: 6,0 a 9,0).

12345

Locais de Coleta

Inverno Verão CONAMA 357/05 = 6,0 a 9,0

Figura 19: Resultados do pH na água superficial dos locais de coleta da área

de estudo, no período de inverno/05 e verão/06. O limite está baseado na respectiva

referência.

6.1.6 Temperatura

A temperatura da água é uma das mais importantes características que

determina, em uma quantidade considerável, as tendências de mudanças na sua

qualidade. Conforme CHAPMAN (1992) os corpos d’água sofrem variações de

temperatura com as variações climáticas. Essas variações podem ser sazonais, e

em alguns corpos d’água essa variação pode ser diária. A temperatura é

influenciada pela latitude, altitude, estação, hora do dia, circulação de ar, vazão e

profundidade.

Um aumento na temperatura da água pode afetar processos físicos, químicos

e biológicos, como por exemplo, assimilação de metais pelo organismo, aumento da

decomposição de matéria orgânica por microrganismos e diminuição da quantidade

de oxigênio dissolvido (ESTEVES, 1998).

Segundo BRANCO (1986), os seres habitantes de uma massa d’água podem

ser diversamente afetados pelo que se poderia chamar de poluição térmica, causada

pelo lançamento, num manancial, de despejos muito aquecidos. Os efeitos podem

ser diretos, pela coagulação das proteínas que constituem a matéria viva, ou

indiretos, seja através de um aumento da capacidade tóxica de certas substâncias

que se encontram dissolvidas na água, como a rotenona, etc., ou por propiciar a

proliferação de organismos concorrentes (parasitas), seja pela diminuição que a

temperatura provoca na capacidade da água dissolver e reter oxigênio, ao mesmo

tempo em que aumenta a atividade fisiológica dos organismos aquáticos,

condicionando asfixia nos mesmos. Os peixes são muito sensíveis a variações

bruscas de temperatura.

A variação de temperatura na camada superficial da água seguiu,

evidentemente, o mesmo padrão da variação sazonal, aumentando na estação mais

quente, verão/06 e diminuindo na estação mais fria, inverno/05, conforme Figura 20,

com exceção do local 5, devido a uma grande variação climática no dia da coleta.

Temperatura

12345

Locais de Coleta

º C

Inverno Verão

Figura 20: Resultados da temperatura na água superficial dos locais de coleta

da área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06.

6.1.7 Condutividade

A condutividade é a medida da capacidade da água de conduzir uma corrente

elétrica. Ela é sensível a variações nos sólidos dissolvidos, a maioria sais minerais.

O grau em que esses sais se dissociam em íons, a quantidade de carga elétrica em

cada íon, a mobilidade do íon e a temperatura da solução possuem influência sobre

a condutividade. Ela é expressa como microsiemens por centímetro (µS/cm), e nas

águas naturais seu valor varia entre 10 e 1000 µS/cm. Em águas poluídas,

especialmente que recebem o escoamento de áreas rurais, o valor da condutividade

pode vir a exceder os 1000 µS/cm (CHAPMAN, 1992).

A condutividade é um grande indicador da quantidade total de substâncias

dissolvidas nas águas. Neste caso a medição da condutividade elétrica pode ser

utilizada para estabelecer uma zona poluída, como nas proximidades do descarte de

um efluente, como também a zona de influência desse descarte, as condições de

mistura, a descoberta de ação de jato da corrente, etc. (IHD-WHO, 1978).

A condutividade da água se mostrou mais elevada na estação verão/06,

conforme Figura 21. No local de coleta 5, pode se verificar a menor condutividade,

estando abaixo de 14 µS/cm no inverno/05 e abaixo de 24 µS/cm no verão/06. O que

indica ser o local menos contaminado dos amostrados e mais próximo de sua

situação natural. Pode-se afirmar que, a condutividade é um indicador sensível para

uma mesma bacia hidrográfica.

Condutividade

100

150

200

250

300

350

12345

Locais de Coleta

uS/cm

Inverno Verão

Figura 21: Resultados da condutividade na água superficial dos locais de

coleta da área de estudo, no período de inverno/05 e verão/06.

A avaliação física e química da água superficial revela a situação da Bacia

Hidrográfica do Arroio Tega quanto à contaminação dos seus afluentes através dos

locais estudados. Dessa forma, evidencia-se o comprometimento da qualidade da

água pela contaminação ambiental e o potencial para causar efeitos tóxicos

adversos numa escala decrescente de intensidade: local 4, local 2, local 1, local 3 e

local 5, conforme a análise estatística por ranks apresentados pela Tabela 15, item

6.4.3. O estudo de REIS (2002), do índice de qualidade da água, também aponta

que a maioria dos locais amostrados da BH do Arroio Tega satisfez somente as

condições de qualidade Classe 4. Nesse caso, essa discriminação poderá ser

utilizada como ferramenta auxiliar na indicação daquelas áreas que devem ser

priorizadas ou mais profundamente avaliadas.

E embora em alguns casos a qualidade física e química do efluente não viole

os limites de descarga, este pode ser tóxico SPONZA (2003).

6.2 Avaliação dos Parâmetros Químicos e Físicos do Sedimento

O sedimento reflete a qualidade corrente do sistema aquático e pode ser

usado para detectar a presença de contaminantes que não permaneçam solúveis

após seu lançamento em águas superficiais (CORBI et al., 2006). Além disso, de

acordo com MARGALEF (1998), o sedimento pode ser considerado como o

compartimento resultante da integração de todos os processos que ocorrem em um

ecossistema aquático.

Os sedimentos, além de fornecerem habitat, alimentação e áreas de criação

para muitos organismos aquáticos (GUCHTE & LEEUWEN, 1988), têm fundamental

importância no estudo da evolução histórica de ecossistemas aquáticos e dos

ecossistemas terrestres adjacentes (ESTEVES, 1998). De acordo com este autor,

também são importantes para a avaliação da intensidade e formas de impacto a que

os ecossistemas estão ou estiveram submetidos.

Em ecossistemas aquáticos, o sedimento de fundo representa o principal

compartimento de acumulação, reprocessamento e transferência dos elementos

metálicos, funcionando como depósito e fonte dos mesmos. Reflete a qualidade em

torno de poluição pelos metais e possibilita a avaliação da intensidade de um

impacto ambiental (FÖRSTNER & WITTMANN, 1981). Esses elementos,

potencialmente disponíveis para a biota, podem ser liberados pela atividade

microbiana e mudanças nos vários fatores físico-químicos que afetam o meio,

incluindo pH, salinidade e condições de óxido-redução (MOREIRA &

BOAVENTURA, 2003), alterando a qualidade da água, levando à bioacumulação e

transferência na cadeia trófica (HOROWITZ, 1991). Desta forma, a contaminação de

sedimentos representa um grande problema de poluição ambiental em todo o mundo

(LIMA et al., 2001) e, por esse motivo, são muito utilizados como material de

amostragem, tanto em pesquisa de prospecção mineral como em estudos

ambientais (ROBAINA et al., 2002), registrando em caráter mais permanente os

efeitos da contaminação (BEVILACQUA, 1996).

O material inorgânico e orgânico nos sedimentos de rios e lagos pode ser um

importante meio de avaliação da poluição já que estão predispostos a rápidas trocas

da composição com a coluna de água (LEMES, 2001).

Os parâmetros físicos e químicos do sedimento superficial da Bacia

Hidrográfica do Arroio Tega, compreendem os metais totais, a matéria orgânica e a

granulometria e se referem as amostras coletadas no 2º semestre/05.

6.2.1 Metais Totais

SOARES et al. (2004) indica que um dos meios para se avaliar o grau de

impacto por input antropogênico ou natural em uma área é a determinação da

concentração de elementos químicos, principalmente metais pesados, nos

sedimentos.

Os metais são oriundos de fontes naturais e/ou antrópicas como intemperismo

de rochas, deposição atmosférica, lançamento de efluentes urbanos, agrícolas,

industriais, mineração, além da lixiviação de resíduos contaminados, possuem baixa

degrabilidade, alto poder de bioacumulação e potenciais tóxicos (FÖRSTNER &

WITTMANN, 1981).

Segundo GAMBRELL (1976) apud MALM (1986), em relação à

disponibilidade para o meio, os metais no sistema água – particulado em suspensão

– sedimento de fundo, podem ser classificados de um modo geral em três grupos:

- Disponíveis: metais dissolvidos nas águas superficiais e intersticiais e os

facilmente trocáveis (troca catiônica), adsorvidos à fase sólida, mineral ou orgânica;

- Potencialmente disponíveis: metais complexados com a matéria orgânica, na

forma de sulfetos insolúveis, carbonatos, hidróxidos insolúveis e co-precipitados com

óxidos de ferro e manganês;

- Não disponíveis: metais ligados à estrutura cristalina de minerais primários e

secundários. Estes últimos podem tornar-se disponíveis para o meio somente após

longos períodos por ação de intemperismo (LEINZ & AMARAL, 1978 apud MALM,

1986).

Os metais são retidos no compartimento sedimentar por processos de

adsorção (sorção física), troca catiônica (sorção química), precipitação,

complexação, floculação ou são incorporados em posições inertes do sedimento

(MOORE & RAMAMOORTHY, 1984).

Estes podem estar dissolvidos, sendo então prontamente incorporados aos

organismos que em contato direto ou indireto com os recursos hídricos, ou ainda,

adsorvidos em compartimentos abióticos (RAND & PETROCELLI, 1985).

Após a incorporação biológica, os elementos-traço podem retornar à forma

dissolvida, através da excreção e decomposição microbiana de detritos orgânicos,

completando o ciclo destes elementos (AMAZARRAY, 1992).

A descarga de metais em ambientes aquáticos (provenientes da atividade

antrópica somam-se àqueles de origem natural) resulta em respostas físicas,

químicas e biológicas, ocasionando mudanças nos processos enzimáticos e

acumulação nos tecidos, provocando profundas alterações no metabolismo e até

causando a morte do organismo (ESTEVES, 1998). Mudanças ocorrem também na

densidade, diversidade, estrutura da comunidade e composição das espécies de

populações (MOORE & RAMAMOORTHY, 1984). Através da cadeia alimentar, os

elementos-traço são distribuídos pela biota do ambiente aquático, podendo atingir as

populações humanas, que potencialmente, são as mais prejudicadas, devido à

concentração na rede trófica (ESTEVES, 1998).

Assim sendo, a determinação de metais traço em sedimentos nos permite

detectar o acréscimo de contaminação que a água está sujeita, bem como aos

organismos bentônicos (LIMA et al., 2001). Não esquecendo, porém, que para tal,

além das análises químicas de sedimentos, deve-se levar em conta a origem e

composição química da rocha fonte, evitando uma superestimação da contribuição

antropogênica de um metal em particular (WHITEHEAD et al., 1986).

As concentrações (mg/kg) dos metais totais Cu, Cr, Ni e Zn analisados no

sedimento dos locais de coleta da Bacia Hidrográfica do Arroio Tega encontram-se

na Tabela 5 e são comparados com as concentrações obtidas com os níveis

indicados pelas referências específicas para sedimentos.

Tabela 5 - Comparação dos valores de metais totais (mg/Kg) obtidos no

sedimento do Arroio Tega com os dados (concentração média) da literatura.

* Não Detectado (c) TRAVASSOS (1994) (f) DREVER (1982)

# Ausência do Dado (d) ALLOWAY (1990) (g) CAMPOS et al. (2003)

(a) Este Estudo (e) BOWEN (1979) (h) CONAMA (2004)

(b) RODRIGUES (1997) (i) MACDONALD et al. (2000b) apud BURTON (2002)

(j) Classificação EPA para disposição de sedimentos dragados (THOMAS, 1987)

a) Cobre total

O cobre é um dos metais pesados que ocorre em todas as rochas da crosta

terrestre, com uma concentração variando de 3 a 15 mg/Kg (arenitos, areias e

calcários) e de 100 a 200 mg/Kg (eruptivas básicas), conforme citado em AUBERT &

PINTA (1977).

A concentração de cobre total (limite de quantificação = 0,6 mg/kg), para os

locais de coleta 1, 2 e 3 variou de 89,4 a 977 mg/Kg. A comparação destes valores

com o encontrado para o sedimento do local controle (61,5 mg/Kg), demonstra um

enriquecimento do metal, porém com uma diminuição em direção à foz do Arroio

Tega. Tal redução estaria associada à menor quantidade de silte no local 2 e

ausência de silte e argila no local 1, pois segundo ADRIANO (1986) e MOORE

(1990), minerais de argila, óxidos de Fe, Al e Mn, materiais carbonatados e matéria

orgânica fixam fortemente o cobre, sendo por isso, considerado o mais imóvel dos

metais pesados e sua concentração em sedimentos ser geralmente elevada.

As concentrações do metal são superiores ao nível basal de 69 mg/Kg para o

Rio Caí, ao teor médio para rochas basálticas de 87-90 mg/Kg, ao encontrado em

LOCAIS Cu Cr Ni Zn

Arroio Tega – Local 1 (a) 89,4 * 111 626

Arroio Tega – Local 2 (a) 164 405 353 412

Arroio Tega – Local 3 (a) 977 5,65 25,6 339

Arroio Tega – Local 5 – Controle (a) 61,5 * 26 73,2

Rio Caí – Média (b) 102 117 50,2 136

Nível Basal – Sedimento do Rio Caí (c) 69 61 117,5 #

Crosta Terrestre – Média (d) 50 100 80 75

Folhelho Médio (e) 39 90 68 120

Basalto (e) 90 90 150 100

Basalto (f) 87 170 130 105

Rocha Ígnea Máfica – Média (d) 90 200 150 100

Média Mundial dos Sedimentos (e) 33 90 52 95

Solos Brasileiros (g) 65±7,4 # 18±12 39±24

Baixa Probabilidade de Efeito – Nível 1 (h) 35,7 37,3 18 123

Provável Efeito Adverso à Biota – Nível 2 (h) 197 90 35,9 315

Nível de Baixo Efeito – LEL (i) 16 26 16 120

Nível de Severo Efeito – SEL (i) 110 110 75 820

Sedimentos Fortemente Poluídos (j) > 50 > 75 > 50 > 200

Sedimentos Moderadamente Poluídos (j) 25 a 50 25 a 75 20 a 50 90 a 200

Sedimentos Não Poluídos (j) < 25 < 25 < 20 < 90

solos brasileiros (65±7,4 mg/Kg) com exceção para o local controle (61,5 mg/Kg), ao

valor obtido para a crosta terrestre de 50 mg/Kg. Os sedimentos dos locais 2 e 3

também apresentaram valores acima dos referenciados para o nível de efeito severo

(SEL) de 110 mg/Kg. De acordo com a classificação da EPA, estes sedimentos

estariam fortemente poluídos por cobre.

Os alteritos das rochas basalto-riolíticas que formam a região do Planalto,

percorrida pelo Arroio Tega e tributários, constituem uma fonte considerável de

cobre (BAISCH, 1994). Então, cabe a observação, de que a concentração do metal

no sedimento do local controle deve estar associada à litologia formadora dos solos

da região e não com contribuição antrópica.

A contaminação por cobre é resultante da utilização de materiais que contêm

este elemento, tais como fertilizantes, resíduos municipais e industriais e por

emissões atmosféricas (MELO et al., 2005).

O cobre é essencial para todos os organismos, sendo co-fator em enzimas

redox e no transporte de O

. A toxicidade relativa para plantas varia de moderada a

alta (20-100 mg/Kg), moderada para mamíferos e a classificação de risco à saúde

humana situa-se de 129-141 mg/Kg, de acordo com o trabalho de GUILHERME et

al. (2005).

b) Cromo total

O cromo é encontrado em todas as rochas da crosta terrestre, daí estar

difundido no solo, na água e nos materiais biológicos. Nas rochas eruptivas ácidas

(granito), a concentração de Cr é de 20-40 mg/Kg, atingindo valores de 2000 a 3000

mg/Kg em rochas ultrabásicas (diorito, peridotito) e rochas derivadas de seu

metarmofismo (serpentina), como se pode observar em AUBERT & PINTA (1977).

O conteúdo de cromo total não foi detectado (limite de quantificação = 2

mg/kg) no sedimento dos locais 1 e controle. No local 3, a concentração de 5,65

mg/Kg é bastante inferior a todos os valores limites estipulados pela literatura e no

local 2, o teor do metal (405 mg/kg) mostrou estar bem acima de todos os referidos

nas normas. Assim, conforme a classificação da EPA, estes sedimentos não

estariam poluídos por cromo, com exceção do local 2, que estaria fortemente poluído

para este metal.

BAISCH (1994) refere que os alteritos das rochas basalto-riolíticas do Planalto

são pobres em cromo. Na maioria dos solos ocorre em baixas concentrações, de 2 a

60 mg/kg. A concentração basal no sedimento varia de 9 a 86 mg/kg (MUDROCH et

al., 1988 apud MOORE, 1990). Então, o comportamento apresentado pelo local 2,

indica LEMES (2001), pode ser atribuído à contribuição de possíveis despejos de

curtumes, indústrias que utilizam processos de cromagem de metais,

galvanoplastias, indústria de corantes, explosivos, cerâmica, vidro, papel e têxteis,

cujos efluentes podem conter cromo, já que este local está situado na zona

industrial.

GUILHERME et al. (2005) relata que o cromo parece estar envolvido no

metabolismo de açúcares em mamíferos. A toxicidade relativa para plantas varia de

moderada a alta (5-30 mg/Kg), moderada de Cr

e alta de Cr

para mamíferos e a

classificação de risco à saúde humana para Cr

está entre 17 e 18 mg/Kg e para

, 76 mg/Kg.

c) Níquel total

A maioria das rochas da crosta terrestre contém Ni na sua composição, cuja

concentração nas eruptivas básicas (basalto, gabro) é mais elevada que nas

eruptivas ácidas (granito), da ordem de 150 e 5-10 mg/Kg, respectivamente. Em

rochas sedimentares o teor varia de 2 a 70 mg/Kg (MELO et al., 2005).

A quantidade de níquel total (limite de quantificação = 2 mg/kg) encontrado no

sedimento dos locais 1, 2 e 3, foi de 111, 353 e 25,6 mg/Kg, respectivamente. A

comparação destes valores com o apresentado pelo local controle (26 mg/Kg)

demonstra um enriquecimento do metal ao longo da área de estudo.

No sedimento dos locais 1 e 2, as concentrações são superiores às obtidas

para o Rio Caí de 50,2 mg/Kg, ao encontrado em solos brasileiros (18±12 mg/Kg) e

ao valor obtido para a crosta terrestre de 80 mg/Kg. Estes também apresentaram

valores acima dos referenciados para provável efeito adverso à biota (35,9 mg/Kg) e

nível de efeito severo (75 mg/Kg). De acordo com a classificação da EPA, estes

sedimentos estariam fortemente poluídos por níquel. Enquanto que os sedimentos

dos locais 3 e controle estariam moderadamente poluídos.

Com relação às rochas basálticas da Bacia do Paraná, CORDANI &

VANDOROS (1967) citam concentrações de 36 até 76 ppm para níquel, enquanto

BAISCH (1994) refere que os alteritos das rochas basalto-riolíticas do Planalto são

pobres em níquel. Então, apesar de os níveis do metal para os locais 3 e controle

serem considerados pela EPA como moderadamente poluídos, estes são

naturalmente elevados com origem nas rochas basálticas (rocha-base) da região.

É um elemento utilizado na fabricação de várias ligas, moedas, magnetos,

baterias de acumulação, etc. Maiores concentrações provêm de efluentes de

fábricas de tintas e de processos de galvanoplastia (LEMES, 2001). A aplicação de

resíduos e de certos fertilizantes fosfatados também pode ser uma fonte importante

de Ni (MELO et al., 2005).

Segundo GUILHERME et al. (2005), o metal não apresenta nenhuma função

biológica conhecida em mamíferos, parece ser essencial para plantas. A toxicidade

relativa para plantas varia de moderada a alta (10-100 mg/Kg) e a classificação de

risco à saúde humana de 51a 53 mg/Kg.

d) Zinco total

A maioria das rochas da crosta terrestre contém Zn em concentrações

variáveis: eruptivas básicas (basalto, gabro) de 70 a 130 mg/Kg; eruptivas ácidas

(granito, riolito) de 50 a 60 mg/Kg; metamórficas (xistos) e algumas sedimentares

(argilitos) em torno de 80 mg/Kg; arenitos em torno de 16 e calcários,

aproximadamente 20 mg/Kg (MALAVOLTA, 1994).

O teor de zinco total quantificado (limite de quantificação = 0,5 mg/kg), para o

sedimento dos locais 1, 2 e 3 foi de 626, 412 e 339 mg/Kg, respectivamente. A

comparação destes valores com o encontrado para o local controle (73,2 mg/Kg),

demonstra um crescente incremento do metal no substrato sedimentar em direção à

foz do Arroio Tega.

As concentrações do metal para os locais 1, 2 e 3 são superiores às

apresentadas para o Rio Caí (136 mg/Kg), ao teor médio para rochas basálticas

(100-105 mg/Kg) e ao valor obtido para a crosta terrestre (75 mg/Kg). Estes também

apresentaram valores acima dos referenciados para provável efeito adverso à biota

(315 mg/Kg). De acordo com a classificação da EPA, estes sedimentos estariam

fortemente poluídos por zinco. Enquanto que o sedimento do local controle não

estaria poluído.

BAISCH (1994) destaca que os alteritos das rochas basalto-riolíticas do

Planalto são uma fonte de zinco para os rios da região, porém em menor grau do

que o cobre.

As principais fontes antropogênicas para o solo são as atividades de

mineração, o uso agrícola de lodo de esgoto, de resíduos e subprodutos de

processos industriais e o uso de agroquímicos como fertilizantes (MELO et al.,

2001b). RODRIGUES (1997) acrescenta as indústrias metalúrgicas e as

galvanoplastias.

O zinco é essencial para todos os organismos, sendo co-fator em muitas

enzimas como a anidrase carbônica; a atividade da insulina depende da sua

presença. A toxicidade relativa para plantas varia de baixa a moderada (100-400

mg/Kg), baixa a moderada para mamíferos e a classificação de risco à saúde

humana é de 73 mg/Kg (GUILHERME et al., 2005).

6.2.2 Matéria Orgânica

CHAO (1983) apud LICHT (1998) relata que a matéria orgânica (MO) no solo

e sedimentos é constituída por um complexo grupo de componentes de origem

biológica. Pode conter complexos organometálicos e quelatos, formados por

retenção de íons metálicos ou solubilização de compostos metálicos.

A matéria orgânica é um suporte geoquímico importante das frações

disponíveis de metais no sedimento (fração trocável e extraível) (LAYBAUER,

1995). De acordo com TESSIER et al. (1979), sob condições oxidantes, a matéria

orgânica presente nos sedimentos pode ser degradada, levando à liberação de

traços metálicos solúveis. LICHT (1998) afirma que elementos de transição com

orbitais eletrônicos internos incompletos, como o Fe, Cu, Cr, Al e outros do centro

da tabela periódica, tendem a ser menos solúveis e mais fortemente adsorvidos

que os íons de não-transição, de carga e raio iônico similares. Diferenças no

estado de oxidação (valência) também resultam em mobilidades diferentes.

LIVENS (1991) acrescenta que o controle da mobilidade e/ou retenção dos metais

pesados na interface sedimento-água, pode estar relacionado aos diferentes teores

de matéria orgânica e substâncias húmicas existentes no substrato sedimentar.

A MO desempenha um papel importante na adsorção de certos elementos,

muito embora as opiniões sejam contraditórias entre diversos autores: alguns

acreditam que a ligação seja feita simplesmente através de adsorção, enquanto

que outros, acreditam que esse mecanismo não seja um controle importante para

alguns elementos como Co, Ni, Cu e Zn. As camadas orgânicas no solo e

sedimentos acumulam certos metais, atingindo uma capacidade de troca catiônica

(CTC) dos húmus de 500 meq/100g, enquanto a das argilas raramente excede os

150 meq/100g, destacando desse modo, a influência da matéria orgânica (LICHT,

1998).

Os teores de matéria orgânica obtidos na amostra total homogeneizada de

sedimento estão ilustrados na Figura 22. Observa-se que todos os locais de coleta

apresentaram uma porcentagem de matéria orgânica superior a 10%, o que

caracteriza como orgânico o sedimento, ou seja, oriundo de fontes naturais como

detritos orgânicos de contribuição animal e vegetal e principalmente, de fontes

antropogênicas, como os efluentes domésticos. Isto vem confirmar o que ESTEVES

(1998) destaca: quando os sedimentos apresentam valores de matéria orgânica

acima de 10% são considerados orgânicos, e abaixo de 10% são considerados

sedimentos inorgânicos ou minerais, locais com predominância de sílica, argila e

compostos como cálcio, ferro, manganês e outros.

Matéria Orgânica

1235

Locais de Coleta

Figura 22: Concentração de matéria orgânica no sedimento dos locais de

coleta da área de estudo, no período de inverno/05. O limite de detecção do método

é de 0,01%.

6.2.3 Granulometria

Neste estudo foi selecionada a análise de matéria orgânica e metais na

totalidade do sedimento, pois se entende que, por exemplo, a biota se relaciona e

interage com o todo do ambiente e não apenas com uma fração granulométrica em

específico, mesmo que muitos estudos priorizem a fração silte e argila (< 63 μm).

A análise granulométrica do sedimento foi baseada na classificação textural

de Shepard, conforme ilustra a Tabela 6.

Tabela 6: Classificação granulométrica, por freqüência simples e textural de

Shepard (%), do sedimento dos locais de coleta da BH do Arroio Tega, no período

de inverno/05.

COMPOSIÇÃO L1 L2 L3 L5

Cascalho 8.6 2.9 0 0.4

Areia 91.4 61.6 40.2 20.7

Silte 0 24 48.1 48.2

Argila 0 11.5 11.7 30.7

No local 1, próximo da foz, segundo a classificação textural de Shepard, o

sedimento foi considerado como “areia” ou arenoso, pois caracterizou-se pela

presença de frações grosseiras: areia principalmente e cascalho. No local 2, curso

médio do arroio, classificado quanto a textura como “areia com argila”, também

arenoso, predominaram a areia e o silte, mas também apareceram a argila e o

cascalho, respectivamente nesta ordem.

O local 3, tributário do arroio, classificado como “lama com areia” ou silto

arenoso, foi caracterizado pela maior ocorrência de silte e areia, e logo após, argila.

No local 5, local controle e tributário do arroio, próximo de sua nascente,

classificado como “lama” ou areno siltoso, ocorreu em maior quantidade o silte,

seguido de argila, areia e cascalho.

De acordo com a análise dos dados, o Arroio Tega, Sub Bacia Hidrográfica do

Rio Taquari-Antas, demonstrou condições adversas às descritas por SUGUIO &

BIGARELLA (1979) e PRESS & SIEVER (1986). Pode-se observar um aumento

progressivo na granulometria, de montante para jusante. Via de regra, os

sedimentos mais grosseiros são encontrados no trecho superior do arroio, em

ambientes de maior energia e mais próximos da rocha-mãe, enquanto que os

sedimentos mais ricos em finos estão localizados nos ambientes de menor energia,

nas proximidades da foz, onde o gradiente é mais suave e o vale mais largo,

favorecendo a sedimentação.

A sedimentação de partículas é grandemente controlada pela força das

correntes que as transportam. Quanto maior é a partícula, mais forte deve ser a

corrente para transportá-la. Por exemplo, a presença de lama sugere águas calmas,

que permitem a sedimentação de partículas mais finas, segundo PRESS & SIEVER

(1986). O fato da BH do Arroio Tega apresentar um perfil diferenciado (partículas

maiores próximo ao trecho final), sendo este arroio de 3ª ordem no máximo e de

platô, possivelmente seja decorrente das características do ambiente, onde a

energia do sistema se mantém elevada pela constante declividade, largura do arroio

e períodos de chuva intensa. Também nos locais mais próximos da foz, o arroio se

encontra canalizado, com trechos abertos e outros fechados, proporcionando tanto a

entrada de material fino como grosseiro no sistema.

A avaliação dos parâmetros físicos e químicos do sedimento indica que esse

compartimento do ecossistema aquático, na região abrangida pela BH do Arroio

Tega, apresenta contaminação e potencial para causar efeitos tóxicos adversos

através dos contaminantes analisados. Por meio da hierarquização dos locais de

coleta em função da intensidade de comprometimento (estatística por ranks, Tabela

15, item 6.4.3): local 2, 1, 3 e 5, pode-se usar como subsídio na escolha das áreas

que devem ser priorizadas ou mais profundamente avaliadas.

6.3. Avaliação dos Ensaios Ecotoxicológicos

A sensibilidade do Teste de Assimilação e Dissimilação foi testada em relação

ao herbicida glifosato nos trabalhos de dissertação de mestrado de CHIOCHETTA

(2004) e de conclusão de curso de FONTANELLA (2004). Já a base metodológica

do teste de orientação A-D foi desenvolvida por KREBS (1985) na Alemanha, onde

utilizou como critério de avaliação ecotoxicológica a qualidade da água de Classe 2.

Entretanto, em águas mais poluídas, Classe 3 e 4, o teste D evidenciou problemas

na interpretação dos resultados em função da interferência da alta DBO da água a

ser testada, e no teste A, o teor de nutrientes influenciou na avaliação da toxicidade

da água. Desta forma, estas deficiências limitam a aplicabilidade do Teste A-D em

águas altamente poluídas com esgotos cloacais e industriais.

Então, na tentativa de eliminação das interferências para a adaptação do

método, as amostras do compartimento água, da Bacia Hidrográfica do Arroio Tega,

foram testadas in natura (amostra bruta) e com quatro pré-tratamentos distintos:

esterelização, aerado decantado, aerado homogeneizado e aerado filtrado. Este

último, não foi aplicado a partir dos testes realizados com o local 3, pois se observou

que o método estaria excluindo a participação do material particulado, onde

poderiam estar adsorvidas substâncias e metais de potencial tóxico, não retratando

a realidade da amostra.

Os resultados e a avaliação da manutenção das culturas do Teste A-D e dos

ensaios com pré-tratamentos realizados com a água e o sedimento superficial, no

período do 2º semestre/05 e 1º semestre/06, estão apresentados respectivamente

a seguir.

6.3.1 Teste A-D: Manutenção das Culturas

A comunidade de algas (perifíticas e planctônicas) é de grande relevância na

diversidade biológica dos ecossistemas aquáticos continentais, devido ao grande

número de espécies e alta proporção na diversidade total destes sistemas

(CARNEY, 1998). Além disso, são importantes funcionalmente, devido à produção

primária, biomassa e seu papel na ciclagem biogeoquímica. Segundo ANDERSEN

(1998), as algas chegam a contribuir com 40% da produção primária do planeta. As

clorófitas de água doce compreendem ao redor de 520 gêneros com 7800 espécies

no mundo, divididas em 4 classes e 14 ordens (BOURRELLY, 1990). O fitoplâncton

pode servir de alimento para outros grupos de microorganismos. Existe evidência de

que grandes proporções de matéria orgânica produzida pelas algas podem ser

usadas pelo bacterioplâncton. Também protozoários e zooplâncton se utilizam do

fitoplâncton como fonte de alimento (MOSS, 1998).

As bactérias desempenham um papel de fundamental importância no

ambiente aquático. Através do processo de decomposição e mineralização da

matéria orgânica, as bactérias suprem nutrientes aos produtores primários. Além

disso, estudos realizados em ambientes pelágicos naturais revelam que as bactérias

consomem uma fração significativa da produção fotossintética total (WILLIAMS,

1981; AZAM et al., 1983). O processo de mineralização da matéria orgânica

autóctone ou alóctone na massa de água resulta em biossíntese de proteína

particulada, composta pela célula bacteriana que, por sua vez, constitui excelente

alimento ao zooplâncton (ROCHA, 2000).

Assim, o Teste de Assimilação envolve culturas de algas de várias espécies

de Clorofíceas e o Teste de Dissimilação, bactérias aeróbias heterotróficas. Ambas

apresentam uma rápida resposta fisiológica e a avaliação da manutenção das

culturas encontra-se na seqüência:

a) Teste A – Cultura Mista de Clorofíceas

O Teste de Assimilação utiliza culturas mistas de Clorofíceas com

predominância do gênero Scenedesmus, conforme mostraram as análises por

microscopia, durante todo o período de manutenção da suspensão. A escolha pela

utilização de culturas mistas se justifica pela facilidade de mantê-las em relação às

culturas axênicas (maior probabilidade de infecção bacteriana e contaminação com

outras espécies de algas) e pelo “endpoint” do teste, onde a taxa de produção

primária não varia muito com a composição de diferentes espécies do mesmo

gênero, de forma a poderem compensar eventuais modificações. LEWIS (1995) e

MA et al. (2002b) afirmam que testes com espécies únicas de algas são de

aplicabilidade limitada na avaliação de efeitos de contaminantes ambientais em

comunidades, visto que na natureza as comunidades de algas são compostas por

um conjunto de espécies com diferentes sensibilidades.

As culturas permanente e pré-cultura foram observadas diariamente através

de medidas de absorbância e pH, visando alcançarem uma PBO (Produção

Bioquímica de Oxigênio) mínima necessária de 6,0 mg/L para a validação dos

testes. Para tal propósito, as Clorofíceas devem atingir um crescimento exponencial

anterior à realização do teste, que é em média, de três dias posteriores à incubação

da pré – cultura (Figura 23), resultado apresentado pelos estudos de CHIOCHETTA

(2004) e FONTANELLA (2004), através do acompanhamento das curvas de

crescimento, redução da intensidade de aeração e testes com número de células

para verificar o crescimento, demonstrando qual seria o melhor momento para a

realização dos testes e confirmando assim, o estudo realizado por KREBS (1985).

Esse padrão de crescimento já foi observado por outros autores e é recomendado

por métodos oficiais de ensaios de toxicidade com algas (ISO, 1989; REGINATTO,

1998).

0,05

0,1

0,15

0,2

13579111315

Dias

Abs

Figura 23: Curva de crescimento de uma cultura mista de Clorofíceas,

indicando uma fase estacionária, seguida de um crescimento exponencial pelo 3º e

4º dia, e a fase da morte a partir do 12º dia. Obtidas de 29/08 a 12/09/05.

Com o acompanhamento do pH (Figura 24), observou-se um aumento da

alcalinidade durante o crescimento das algas e a sua estabilização a partir da fase

de morte algácea. Conforme MARGALEF (1998), esta alcalinidade é explicada pelo

sistema carbônico-carbonatos, já que num pH = 9,0 e temperatura de 15ºC tem-se

96,6% de íons bicarbonato e 3,1% de íons carbonato.

9,2

9,4

9,6

9,8

13579111315

Dias

Figura 24: Comportamento do pH durante o crescimento de uma cultura mista

de Clorofíceas, mostrando uma tendência à estabilização após o crescimento

exponencial. Obtidas de 29/08 a 12/09/05.

b) Teste D - Cultura de Bactérias Aeróbias Heterotróficas Adaptadas ao Consumo de

Extrato de Carne Granulado

O Teste de Dissimilação utiliza culturas de bactérias aeróbias adaptadas ao

consumo de extrato de carne granulado e avalia a inibição do CBO (Consumo

Bioquímico de Oxigênio) dessas bactérias em relação ao meio a ser testado, em um

período de 24 h.

A média anual em 2005 do CBO das bactérias do aquário 1 de Dissimilação

foi de 0,4 mg/L e das bactérias do aquário 2 de Dissimilação, 0,5 mg/L (Figura 25). O

CBO diário dos aquários mostrou-se relativamente constante principalmente nos

últimos meses do ano. A média anual situa-se em torno do valor desejado de 0,5

mg/L variando entre 0,3 e 0,8 mg/L de oxigênio.

0,2

0,4

0,6

MAMJJLASON

Mês

CBO Média (24 h)

0,2

0,4

0,6

0,8

MAMJJLASO

Mês

CBO Média (24 h)

Figura 25: Manutenção do CBO médio mensal das bactérias do aquário 1 (A)

e do aquário 2 (B) de Dissimilação, durante o ano de 2005.

A média do CBO, no primeiro trimestre de 2006 (período de término dos

testes), das bactérias do aquário 1 de Dissimilação foi de 0,5 mg/L e das bactérias

do aquário 2 de Dissimilação, 0,4 mg/L (Figura 26). As culturas apresentaram um

potencial de CBO contínuo em comparação ao desempenho de 2005, com uma

variação entre 0,4 e 0,7 mg/L de oxigênio e média trimestral em torno do valor

desejado de 0,5 mg/L.

0,2

0,4

0,6

0,8

JFM

Mês

CBO Média (24 h)

0,2

0,4

0,6

0,8

JFM

Mês

CBO Média (24 h)

Figura 26: Manutenção do CBO médio mensal das bactérias do aquário 1 (A)

e do aquário 2 (B) de Dissimilação, no primeiro trimestre de 2006.

A oscilação do CBO mensal durante a manutenção das bactérias, usadas

para a realização do Teste D, provavelmente deve-se à formação de biofilmes

laterais nos aquários de Dissimilação, alterações de temperatura na sala de cultivo e

à condição higroscópica do extrato de carne granulado, mesmo que de pequena

proporção.

Conforme KREBS (1985) o aquário com água de Dissimilação sofre

modificações permanentes devido à baixa concentração da suspensão de bactérias.

A manutenção de uma baixa taxa de consumo de oxigênio nos aquários, condição

prévia para conseguir um aumento necessário do CBO durante o teste de 24 h, faz

com que mínimas diferenças na alimentação provoquem uma oscilação da atividade

das bactérias. A solução encontrada por este autor foi a colocação de cascalho para

se criar um ambiente favorável. No presente estudo, este artefato não contribuiu

satisfatoriamente na estabilidade do aquário.

O substrato pode ter interferido na intensidade de formação dos biofilmes. Um

biofilme é uma matriz de algas microbênticas, bactérias fototrópicas e heterotróficas

organizadas em diferentes camadas incluindo uma estrutura polimérica de produtos

de excreção (PISTOCCHI et al., 2000). Fortes interações entre os níveis tróficos de

algas microbênticas e bactérias heterotróficas estão provavelmente ocorrendo no

biofilme (BARRANGUET et al., 2003), a influência da mudança da comunidade algal

sobre as bactérias heterotróficas tem sido previamente observada por WATSON &

BOLLEN (1952).

A temperatura por algumas vezes não se manteve constante, devido a falhas

de funcionamento do aparelho de ar condicionado e a queda de luz/ desligamentos

na rede de energia pela empresa responsável.

Observou-se o aumento da absorção de água pelo extrato de carne granulado

a partir de agosto/05 e então, se fez a encomenda de novo material, chegado em

janeiro/06.

Para alcançar um CBO em torno de 0,5 mg/L pelas bactérias dos aquários de

Dissimilação foram testadas diferentes maneiras e quantidades diárias de extrato de

carne granulado (CHIOCHETTA, 2004). A adição diária de 0,1 mg/L permitiu um

CBO realtivamente constante e próximo do valor desejado 0,5 mg/L, variando entre

0,2 e 0,7 mg/L de oxigênio (Figura 27).

0,2

0,4

0,6

0,8

1 3 5 7 10 12 14 16 18 20 22 25 27 29

Dias

CBO (24hs)

Figura 27 – Curva de manutenção do CBO das bactérias do aquário de

Dissimilação, no período de 01/03 a 28/03/2005.

Através de pesquisa do material utilizado por último para a alimentação das

bactérias, descobriu-se que não era peptona seca granulada como afirmado por

CHIOCHETTA (2004), mas extrato de carne seco e granulado. Então, o valor

desejado de 0,5 mg/L de consumo de oxigênio pelas bactérias aeróbias dos

aquários de Dissimilação, foram obtidos com a adição de 0,1 mg/L de extrato de

carne seco e granulado, já que não existe peptona seca granulada, apenas em pó.

6.3.2 Teste de Assimilação com Amostras de Água Superficial

Os Testes de Assimilação com as amostras de água superficial (Apêndice 1)

dos locais 1 e 2 utilizaram os pré-tratamentos: esterelização, aeração e decantação,

aeração e homogeneização, aeração e filtração e a amostra bruta ou in natura como

referência, imediatamente após a coleta. Para os locais 3, 4 e 5 se utilizaram os pré-

tratamentos: esterelização, aeração e decantação, aeração e homogeneização e

também a amostra bruta ou in natura.

Os Testes A com a água superficial do local 1, com a amostra bruta e os pré-

tratamentos aeração e decantação, aeração e homogeneização, comportaram-se de

forma similar, mostrando inibição da PBO após 24h (Figura 28).

-40

-20

100

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Filtrada

-100

-80

-60

-40

-20

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 28 - Testes de Assimilação com a água superficial do local 1,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes A com a água superficial do local 2 obtiveram valores de 8,8

(inverno/05) e 12,3 (verão/06) mg/L de oxigênio no controle, acima do recomendável

6,0 + - 1 mg/L. Os pré-tratamentos aeração e decantação e aeração e

homogeneização apresentaram um comportamento semelhante quanto à inibição da

PBO após 24h, com destaque para o último (Figura 29).

-60

-40

-20

100

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Filtrada

-120

-100

-80

-60

-40

-20

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 29 - Testes de Assimilação com a água superficial do local 2,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes A com a água superficial do local 3 obtiveram 11 mg/L de oxigênio

no controle, acima do recomendável 6,0 + - 1 mg/L, mesmo que considerada a faixa

de erro do aparelho e do operador. Neste caso, novamente os pré-tratamentos

aeração e decantação e aeração e homogeneização apresentaram um

comportamento semelhante, com destaque para o último, a respeito da inibição da

PBO após 24h (Figura 30).

-60

-40

-20

100

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 30 - Teste de Assimilação com a água superficial do local 3,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes A com a água superficial do local 4 alcançaram 5,6 (inverno/05) e

10,3 (verão/06) mg/L de oxigênio no controle. Todos os 4 pré-tratamentos

apresentaram desenvolvimento semelhante quanto à inibição da PBO após 24h, com

destaque para amostra bruta e esterelização (Figura 31).

-100

-90

-80

-70

-60

-50

-40

-30

-20

-10

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição (%)

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

-100

-80

-60

-40

-20

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 31 - Testes de Assimilação com a água superficial do local 4,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes A com a água superficial do local 5 atingiram 3,3 e 10,3 mg/L de

oxigênio no controle, sendo o primeiro valor, um pouco abaixo e o segundo, acima da

faixa recomendável de 6,0 + - 1 mg/L. A amostra bruta e o pré-tratamento aeração e

decantação apresentaram inibição da PBO após 24 h, porém seus comportamentos

mostraram-se distintos da amostragem do inverno/05 para a do verão/06 (Figura 32).

-30

-20

-10

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

-60

-40

-20

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 32 - Testes de Assimilação com a água superficial do local 5,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

A inibição do potencial de produção de oxigênio nos Testes de Assimilação

referente à água superficial, considerando todos os pré-tratamentos, segue

estatisticamente a ordem decrescente local 4> local 2 > local 3> local 1> local 5.

Para avaliar qual pré-tratamento mostra-se mais expressivo quanto à inibição

da PBO após 24h, isto é, mais eficiente na eliminação da interferência dos nutrientes

presentes nas amostras de água superficial, adiante serão feitas as análises

estatísticas dos dados.

6.3.3 Teste de Assimilação com Amostras de Sedimento Superficial

As amostragens de sedimento superficial foram realizadas junto com as de

água superficial, nos locais 1, 2, 3 e 5 (Apêndice 3). No local 4 não há condições de

coleta de sedimento, pois existem grandes fragmentos de rochas. Para os testes se

utilizou a metodologia denominada elutriato (EPA, 1991).

Os Testes A com o sedimento superficial do local 1 obtiveram 8,6 (inverno/05)

e 9,8 (verão/06) mg/L de oxigênio no controle, valores um tanto acima da faixa

recomendável de 6,0 + - 1 mg/L. Em todas as concentrações de elutriato e nas duas

campanhas amostrais ocorreu inibição da PBO após 24 h (Figura 33). No local 1

foram realizadas duas campanhas amostrais, inverno/05 e verão/06, pois na primeira

não foi possível realizar a concentração de 80% no Teste D por falta de material, já

que esta foi a primeira coleta e não havia experiência anterior.

-100

-80

-60

-40

-20

Inibição (%)

20 40 60 80

Concentração (%)

-100

-80

-60

-40

-20

Inibição (%)

20 40 60 80

Concentração (%)

Figura 33 - Testes de Assimilação com o sedimento superficial do local 1,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) da produção de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

O Teste A com o sedimento superficial do local 2 alcançou 7,0 mg/L de

oxigênio no controle, valor que está dentro da faixa recomendável de 6,0 + - 1 mg/L.

Ocorreu inibição da PBO após 24h, a partir da concentração de 40 %, chegando a

100% nas concentrações de 60 e 80 % de elutriato (Figura 34).

-100

-80

-60

-40

-20

Inibição % Estimulação

20 40 60 80

Concentração (%)

Figura 34 - Teste de Assimilação com o sedimento superficial do local 2,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

O Teste A com o sedimento superficial do local 3 atingiu 3,3 mg/L de oxigênio

no controle, valor abaixo da faixa recomendável de 6,0 + - 1 mg/L, mas que pode

estar dentro da faixa de erro do aparelho e do operador. Ocorreu inibição da PBO

após 24h, em todas as concentrações de elutriato (Figura 35).

-100

-80

-60

-40

-20

Inibição (%)

20 40 60 80

Concentração (%)

Figura 35 - Teste de Assimilação com o sedimento superficial do local 3,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

O Teste A com o sedimento superficial do local 5 obteve 9,8 mg/L de oxigênio

no controle, valor acima da faixa recomendável de 6,0 + - 1 mg/L. A inibição da PBO

após 24h ocorreu em todas as concentrações de elutriato e apresentou desempenho

crescente como o mostrado pelo local 3 anteriormente (Figura 36).

-100

-80

-60

-40

-20

Inibição (%)

20 40 60 80

Concentração (%)

Figura 36 - Teste de Assimilação com o sedimento superficial do local 5,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes de Assimilação com o sedimento superficial apresentaram maior

inibição da produção de oxigênio do que com a água superficial, porém para verificar

a eficiência e a sensibilidade deste método há necessidade de compará-lo com os

resultados dos Testes D, de modo a ver se existe ou não complementação da

atividade autotrófica pela atividade heterotrófica.

6.3.4 Teste de Dissimilação com Amostras de Água Superficial

O Teste D avalia a toxicidade da água superficial dentro dos processos de

autodepuração de esgotos biodegradáveis. Os Testes de Dissimilação foram

realizados com a água superficial coletada em cinco locais da BH do Arroio Tega

(Apêndice 2). Com a amostragem dos locais 1 e 2 foram testados os pré-

tratamentos: esterelização, aeração e decantação, aeração e homogeneização,

aeração e filtração e a amostra sem pré-tratamento, ou seja, bruta ou in natura,

como referência. Com a amostra de água superficial do local 3, o pré-tratamento

esterelização. Com a amostragem do local 4 foram feitos dois Testes de

Dissimilação, um com o pré-tratamento esterelização e o outro com três pré-

tratamentos: esterelização, aeração e decantação e aeração e homogeneização. E

com a amostra de água superficial do local 5 foram feitos testes com os pré-

tratamentos: esterelização, aeração e decantação, aeração e homogeneização, e

também com a amostra bruta.

Os Testes de Dissimilação com a água superficial do local 1 obtiveram 5,6

(inverno/05) e 6,4 (verão/06) mg/L de oxigênio no controle, dentro da faixa

recomendável 5,0 + - 1 mg/L (de erro do aparelho e do operador). O pré-tratamento

esterelização apresentou comportamento similar e constante nas duas campanhas

amostrais, inibindo o CBO, após 24h, no Teste D (Figura 37).

-30

-20

-10

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Filtrada

-40

-30

-20

-10

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 37 - Testes de Dissimilação com a água superficial do local 1,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes de Dissimilação com água superficial do local 2 alcançaram valores

de 8,4 (inverno/05) e 4,8 (verão/06) mg/L de oxigênio no controle, o primeiro um

pouco acima e o segundo, dentro do recomendável 5,0 + - 1 mg/L. A amostra

esterelizada apresentou comportamento semelhante quanto à inibição do CBO, após

24h (Figura 38).

-70

-60

-50

-40

-30

-20

-10

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Filtrada

-100

-80

-60

-40

-20

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 38 - Testes de Dissimilação com a água superficial do local 2,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

O Teste de Dissimilação com a água superficial do local 3 atingiu 3,0 mg/L de

oxigênio no controle, um pouco abaixo do recomendável 5,0 + - 1 mg/L, mas deve

estar dentro da faixa de erro do aparelho e do operador. Optou-se pelo pré-

tratamento esterelização, pois o mesmo demonstrou nos testes anteriores, ser

provavelmente o mais eficiente na eliminação da interferência da alta DBO na

amostra, no Teste D. Entretanto, neste teste seu desempenho não correspondeu aos

testes anteriores, sendo ineficiente, já que ocorreu aceleração, em quase todas as

concentrações (Figura 39).

20 40 60 80

Concentração (%)

Estimulação (%)

Esterelizada

Figura 39 - Teste de Dissimilação com a água superficial do local 3,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) do consumo

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes de Dissimilação com a água superficial do local 4, obtiveram 3,0

(inverno/05) e 4,6 (verão/06) mg/L de oxigênio no controle, sendo o primeiro um

pouco abaixo e o segundo, dentro da faixa recomendável 5,0 + - 1 mg/L. Na primeira

campanha amostral, a inibição do CBO após 24h ocorreu somente no pré-tratamento

esterelização. E na segunda, a inibição do CBO após 24h ocorreu somente no pré-

tratamento aeração e decantação (Figura 40).

-20

100

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulaçã

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

-80

-60

-40

-20

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 40 - Testes de Dissimilação com a água superficial do local 4,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes de Dissimilação com a água superficial do local 5 obtiveram 1,5

(inverno/05) e 4,6 (verão/06) mg/L de oxigênio no controle, o primeiro ficando abaixo

e o segundo, dentro da faixa recomendável 5,0 + - 1 mg/L. Dentre os pré-tratamentos

testados a esterelização e a aeração e decantação foram os que apresentaram

inibição do CBO, após 24h, em ambas as campanhas amostrais (Figura 41).

-100

-80

-60

-40

-20

100

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Amostra Bruta

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

-10

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Esterelizada

Decantada

Homogeneizada

Figura 41 - Testes de Dissimilação com a água superficial do local 5,

amostragem de inverno/05 (A) e verão/06 (B). Dados referentes à diferença

percentual (%) do consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

A inibição do consumo de oxigênio nos Testes de Dissimilação referente à

água superficial, considerando todos os pré-tratamentos, segue estatisticamente a

ordem decrescente: local 5> local 2 > local 1> local 4> local 3. O local 5 que deveria

ser o menos tóxico, devido à menor poluição e interferência antrópica, pode ter

apresentado uma toxicidade maior no Teste D ocasionada por um valor de consumo

de oxigênio não satisfatório no controle (instabilidade da cultura de bactérias).

O pré-tratamento esterelização mostrou ser o mais expressivo quanto à

inibição do CBO após 24h, o que indica também ser o mais eficiente na eliminação

da interferência da alta DBO nas amostras de água superficial, porém há

necessidade de análises estatísticas dos dados para ter a confiabilidade do resultado

e verificar se serão precisos mais testes para sua comprovação ou não.

6.3.5 Teste de Dissimilação com Amostras de Sedimento Superficial

A primeira coleta de sedimento superficial, para a execução dos Testes D

(Apêndice 4) foi realizada no local 1. Então, não se tinha a noção de quanto

sedimento úmido seria necessário para obter a quantidade desejada de sedimento

seco visando a posterior elaboração do Teste D. O Teste A foi o primeiro a ser

executado, utilizando a maior parte do sedimento seco. O elutriato não foi

centrifugado, pois conforme a metodologia da EPA (1991) este procedimento não

obrigatório dependeria da condição de turbidez da solução após a agitação manual.

Isto pode ter influenciado no Teste D com o local 1, provocando inibição do consumo

de O

nas concentrações maiores de amostra (60 e 80%), de acordo com a Figura

42. A partir das demais amostragens a centrifugação foi adotada como obrigatória,

pois a solução apresentava certa turbidez podendo interferir no desempenho da

fotossíntese pela cultura mista de Clorofíceas (Teste A).

-40

-20

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Figura 42 - Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 1,

amostragem de verão/06. Dados referentes à diferença percentual (%) do consumo

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

O Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 2 obteve 4,3

mg/L de oxigênio no controle, dentro da faixa recomendável de 5,0 + - 1 mg/L.

Ocorreu estimulação, de aproximadamente 80%, do CBO após 24h, em todas as

concentrações de elutriato (Figura 43).

100

20 40 60 80

Concentração (%)

Estimulação (%)

Figura 43 - Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 2,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) do consumo

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

O Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 3 alcançou 1,5

mg/L de oxigênio no controle, valor abaixo da faixa recomendável de 5,0 + - 1 mg/L,

devido a um provável erro do aparelho e/ou do operador. Apresentou um

comportamento de aceleração, assim como o local 2, de 100%, do CBO após 24h,

em todas as concentrações de elutriato (Figura 44).

100

20 40 60 80

Concentração (%)

Estimulação (%)

Figura 44 - Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 3,

amostragem de inverno/05 (A). Dados referentes à diferença percentual (%) do

consumo de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

O Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 5 obteve 5,1

mg/L de oxigênio no controle, valor recomendável. Todas as concentrações

apresentaram estimulação do CBO após 24h (Figura 45).

20 40 60 80

Concentração (%)

Estimulação (%)

Figura 45 - Teste de Dissimilação com o sedimento superficial do local 5,

amostragem de inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) do consumo

de O

mg/L em relação ao controle de cada ensaio.

Os Testes de Dissimilação com o elutriato do sedimento superficial não

apresentaram, com exceção do local 1, inibição do CBO após 24h pela cultura de

bactérias aeróbias heterotróficas adaptadas ao consumo de extrato de carne

granulado, ao contrário da sensibilidade demonstrada pelos Testes A. Deste modo,

não ocorre complementação das atividades autotrófica e heterotrófica. Assim, com

base nos resultados dos testes realizados por este estudo, a metodologia de

elutriato do sedimento superficial no Teste A-D não oferece condições de

padronização. O mesmo desempenho é confirmado por GUZZELLA (1998), onde os

resultados do teste elutriato com a bactéria Vibrio fischeri foram insatisfatórios em

predizer a toxicidade do sedimento. Ele foi útil em expor a bactéria a substâncias

solúveis em água, fornecendo uma estimativa real de biodisponibilidade e a

desvantagem foi a falta de sensibilidade.

O mesmo autor declara que lamentavelmente, o melhor procedimento - teste

para salvaguardar o ambiente aquático não existe. Somente com metodologias de

abordagens comprometidas com esta causa é possível alcançar um conhecimento

completo do potencial de toxicidade do sedimento.

6.3.6 Outros Testes

Teste A

Para investigar a influência da solução nutritiva forte na cultura mista de

clorofíceas (Teste A), durante o período de 24h, foram realizados Testes de

Assimilação com a água superficial do Arroio Previde (local 4) sem a solução

nutritiva forte nas diluições, apenas no controle e com a solução nutritiva forte nas

diluições e no controle. Em ambos os Testes A, a amostra de água foi aerada por 5

dias e decantada por 30 min antes do ensaio (Apêndice 5).

Suspeitava-se que com a solução nutritiva forte haveria um efeito de adição

de nutrientes aos da amostra de água superficial coletada, ocasionando aceleração

do metabolismo, isto é, aumento do Potencial de Produção de Oxigênio (PPO).

Entretanto, o Teste de Assimilação com solução nutritiva forte apresentou um PPO

menor em todas as diluições, chegando a mais de 15% de inibição, enquanto que, o

Teste de Assimilação sem solução nutritiva forte resultou numa aceleração de até

20%, com um maior PPO nas concentrações. Todavia, pode-se afirmar através

desta comparação que a solução nutritiva forte no Teste A não provoca a aceleração

da fotossíntese da cultura mista de Clorofíceas, ao contrário, se ausente no meio, as

algas utilizam os nutrientes da amostra, causando a estimulação do seu

metabolismo (Figura 46).

-20

-15

-10

-5

20 40 60 80

Concentração (%)

Inibição % Estimulação

Sem SNF

Com SNF

Figura 46 - Testes A com água superficial do Arroio Previde, local 4, sem a

solução nutritiva forte (SNF) e com a solução nutritiva forte (SNF), campanha

amostral inverno/05. Dados referentes à diferença percentual (%) da produção de O

mg/L em relação ao controle.

Através de teste realizado, em relação à quantidade de solução nutritiva ISO

8692 : E (1989) administrada à cultura permanente de clorofíceas, se constatou uma

rápida adaptação, no período de uma semana, a valores 10 vezes menores ao

recomendado pela norma. Esta adaptação pode ser percebida pelo desenvolvimento

da cultura, que nesse período conseguiu atingir um crescimento exponencial

comparável ao daquela que recebia uma solução nutritiva 10 vezes mais

enriquecida.

Teste D

Para a verificação da Demanda Bioquímica de Oxigênio, transcorridos 5 dias

a 20ºC, optou-se pelas diluições 10x, 20x e 50x com água deionizada aerada por

24h para que o oxigênio não fosse totalmente reduzido pelas bactérias aeróbias

heterotróficas, já que a concentração de material orgânico nas amostras costuma ser

elevada (Apêndice 5). O PCO, com exceção do controle, se manteve

aproximadamente o mesmo nas diluições (Tabela 7). Contudo, percebe-se através

da indiferença entre os resultados necessidade de proceder com diluições maiores.

Tabela 7: DBO

com a água superficial do Arroio Previde, local 4, usando o

consumo de O

mg/L como medida, campanha amostral inverno/05.

Controle e C (%) O

inicial O

final escuro PCO

C 7,1 5,2 1,9

10x 7,2 0,2 7,0

20x 7,2 0,2 7,0

50x 7,1 0,2 6,9

DBO

= água de diluição aerada por 24h (água reconstituída). Diluições: 10x

(50 mL água do Arroio Previde + 450 mL água reconstituída); 20x (25 mL água do

Arroio Previde + 475 mL água reconstituída) e 50x (10 mL água do Arroio Previde +

490 mL água reconstituída). Duração: 14/10/05 a 19/10/05.

Para determinar a quantidade de extrato de carne granulado necessário para

obter um PCO ideal de 5,0 mg/L de O

no controle do Teste de Dissimilação foram

realizados vários testes, com diferentes concentrações e água de Dissimilação dos

aquários 1 e 2 (Figura 47). Os primeiros Testes D (A), com concentrações de 1 a

80% (em g/ 1000 mL), mostraram um PCO acima do valor ideal. Então, foram

testadas concentrações menores (B), 0,2 a 2,0% (em g/ 500 mL), onde se obteve um

PCO = 5,0 e 5,7mg/L de O

, nas concentrações 1,5% (correspondendo a 0,0045 g) e

2,0% (0,0060 g), respectivamente. Portanto, esta última concentração de extrato de

carne granulado, foi utilizada nos Testes D por apresentar um PCO mais próximo do

ideal, com uma margem mais confiável para padronização do método.

12,5 5 1015203040506080

Concentração (%)

PCO (mg/L)

Teste 1

Teste 2

Teste 3

0,20,40,60,8 1 1,5 2

Concentração (%)

PCO (mg/L)

Teste 1

Teste 2

Teste 3

Teste 4

Figura 47 - Testes D, com extrato de carne granulado e água de Dissimilação

dos aquários 1 e 2, buscando alcançar um PCO ideal no controle. Sendo A, testes

com concentração em g/ 1000 mL e B, testes com concentração em g/ 500 mL.

Preliminarmente, ao que indicam os testes, a solução nutritiva forte não é

responsável pela aceleração da fotossíntese da cultura mista de Clorofíceas no

Teste A e a melhor concentração de extrato de carne granulado para obtenção de

um PCO ideal no controle do Teste D = 5 mg/L O

é 0,0060 g para um volume de

500mL. Para verificar se os resultados dos Testes A e D, discutidos acima, são

significativos estatisticamente, há necessidade de realização de mais testes.

6.4. Avaliação Estatística

6.4.1 Dados da Água Superficial

Com o objetivo de avaliar se existe correlação entre os parâmetros físicos e

químicos da água superficial, realizou-se a análise do Coeficiente de Spearman,

obtida com os dados originais, conforme a Tabela 8.

Pode-se observar uma forte correlação positiva entre nitrato com níquel total

(0,74), com zinco total (0,78) e com cobre dissolvido (0,81), nitrogênio amoniacal

com fosfato (0,90), com condutividade (0,83), fosfato com zinco total (0,81), com

cobre dissolvido (0,70), com condutividade (0,85), níquel total e cromo total (0,78),

cromo total e condutividade (0,72), demanda bioquímica de oxigênio e condutividade

(0,75). Uma correlação positiva mediana entre nitrato e fosfato (0,57), nitrogênio

amoniacal com níquel total (0,59), com cromo total (0,62), com zinco total (0,62),

com cobre dissolvido (0,57), com demanda bioquímica de oxigênio (0,60), fosfato

com níquel total (0,56), com cromo total (0,62), com demanda bioquímica de

oxigênio (0,50), níquel total com zinco total (0,53), com cobre dissolvido (0,60), com

condutividade (0,57), cromo total e cobre dissolvido (0,53), zinco total com cobre

dissolvido (0,63), com condutividade (0,60) e oxigênio dissolvido e altitude (0,52).

Estes resultados entre nutrientes e metais possivelmente estejam

relacionados à contribuição de efluentes domésticos não tratados e de atividades

industriais como o ramo metal-mecânico e a galvanoplastia. Uma forte correlação

negativa entre zinco total e altitude (-0,77) e oxigênio dissolvido e condutividade (-

0,70). Nesta situação, a maior altitude é próxima do local controle, de menor

influência das atividades industriais, provavelmente por isso seja menor a

quantidade de zinco presente, porém à medida que se aproxima em direção à foz, a

sua quantidade aumenta devido ao maior número de indústrias. E o local controle,

de maior concentração de oxigênio, apresentou a menor condutividade,

possivelmente, devido à baixa interferência antrópica.

Tabela 8 - Matriz de correlação (Coeficiente de Spearman) entre os

parâmetros físicos e químicos, referente às coletas de amostras de água superficial

no período de inverno/05 e verão/06.

NiT CrT ZnT CuD DBO

OD pH TEM CON ALT

1 0,48 0,57 0,74* 0,41 0,78*0,81** -0,17 -0,27 -0,08 -0,35 0,31 -0,54

1 0,90** 0,59 0,62 0,62 0,57 0,60 -0,57 0,40 -0,05 0,83* -0,44

1 0,56 0,62 0,81* 0,70* 0,50 -0,76 0,04 0,05 0,85** -0,54

NiT 1 0,78* 0,53 0,60 0,12 -0,21 0,40 -0,20 0,57 -0,44

CrT 1 0,34 0,53 0,37 -0,43 0,28 0,13 0,72* -0,22

ZnT 1 0,63 0,18 -0,48-0,22 0,03 0,60 -0,77*

CuD 1 0,11 -0,62-0,19 -0,3 0,43 -0,33

DBO

1 -0,51 0,22 0,40 0,75* -0,2

OD 1 0,22 0,08 -0,70* 0,52

pH 1 -0,37 0,28 -0,19

TEM 1 0,16 0,32

COM 1 -0,65

ALT 1

* Nível de significância = 0,05 ** Nível de significância = 0,01

6.4.2 Dados do Sedimento Superficial

Com o objetivo de avaliar se existe correlação entre os parâmetros físicos e

químicos do sedimento superficial, realizou-se a análise do Coeficiente de

Spearman, obtida com os dados originais, conforme a Tabela 9.

Pode-se observar uma forte correlação positiva entre cobre e cromo total

(0,74), níquel com matéria orgânica (0,80), com cascalho (0,80), zinco com cascalho

(0,80), com areia (1,0), cascalho e areia (0,80), silte e argila (1,0). Uma correlação

positiva mediana de níquel com zinco (0,60) e com areia (0,60). Estes resultados

provavelmente estejam relacionados às interações entre metais e nutrientes, e

destes, com a fração granulométrica de maior afinidade. Uma forte correlação

negativa de zinco com silte (-1,0) e com argila (-1,0) indicando que, os locais

(destacam-se 1 e 2) com menor quantidade de silte e argila no meio apresentaram

maior concentração de zinco, isto porque este se adere a ligantes orgânicos que

geralmente estão associados a partículas de menor granulometria. Por

apresentarem maior área específica, as partículas menores favorecem processos

que se desenvolvem na interface sedimento/água, como adsorção, interação com a

matéria orgânica e precipitação dos metais. A correlação negativa de cascalho com

silte (-0,80) e com argila (-0,80) é porque quanto maior a presença da classificação

granulométrica cascalho, menor será a porcentagem de silte e argila na amostra, da

mesma forma, areia com silte (-1,0) e argila (-1,0) e silte com argila (1,0), refletindo a

dinâmica do rio.

Tabela 9 - Matriz de correlação (Coeficiente de Spearman) entre os

parâmetros físicos e químicos, referente às coletas de amostras de sedimento

superficial, no período de inverno/05.

Cu Cr T Ni Zn MO CAS ARE SIL ARG

Cu 1 0,74 -0,20 0,20 -0,40 -0,40 0,20 -0,20 -0,20

Cr T 1 0,32 0,10 0,32 -0,21 0,10 -0,10 -0,10

Ni 1 0,60 0,80 0,80 0,60 -0,60 -0,60

Zn 1 0 0,80 1,0** -1,0** -1,0**

MO 1 0,40 0 0 0

CAS 1 0,80 -0,80 -0,80

ARE 1 -1,0** -1,0**

SIL 1 1,0**

ARG 1

** Nível de significância = 0,01

6.4.3 Dados dos Testes Ecotoxicológicos

a) Teste de Assimilação com Amostras de Água Superficial

A análise estatística do Teste A com a água superficial compreendeu a

comparação entre concentrações (20, 40, 60 e 80%) dentro de pré-tratamentos (sem

pré-tratamento ou amostra bruta, esterelizado, decantado aerado e homogeneizado

aerado) e épocas (verão e inverno) através do Teste Qui-Quadrado, mais

especificamente Teste Exato de Fisher (Apêndice 6). Neste teste, as maiores

porcentagens de inibição nos ensaios ecotoxicológicos de assimilação foram 68,8%

com os pré-tratamentos esterelizado e homogeneizado aerado, na época verão;

80% com os pré-tratamentos decantado e homogeneizado aerados, ambos na

época inverno, e 81,3% com a amostra bruta ou sem pré-tratamento, na época

verão; apesar de apenas as amostras decantadas aeradas, época inverno,

apresentarem diferença significativa entre as concentrações e a inibição do PPO,

após 24 horas (p=0,037).

A análise descritiva dos dados, sem ter significância estatisticamente,

apresentou como melhores desempenhos na eliminação da interferência dos

nutrientes na amostra (inibição do PPO), os pré-tratamentos na época verão:

esterelizado, concentração 80%, média de inibição 69,53 e desvio padrão 34,94;

amostra bruta ou sem pré-tratamento, 40%, média de inibição 53,43, desvio padrão

4,31, na concentração 60%, média de inibição 61,86, desvio padrão 13,29 e na

concentração 80%, média de inibição 58,80, desvio padrão 33,36.

Também foi utilizada a análise de medidas repetidas, onde o fator pré -

tratamento possui 4 níveis (1- dec, 2 – est, 3 - hom e 4 - st), o fator concentração

tem 4 níveis (20, 40, 60 e 80), enquanto que o fator época de coleta possui 2 níveis

(1- inverno e 2- verão). Os dados apresentaram heterogeneidade de variâncias e

como não se tem uma análise estatística não-paramétrica adequada para este tipo

de análise, a análise de variância foi realizada com os dados originais, conforme a

Tabela 10.

Através da análise de variância, pode-se concluir que há diferença

significativa (p=0,0054) para uma probabilidade de erro de p = 0,05 ou nível de

significância de 5%, entre as médias de concentração, em relação à inibição do

potencial de produção de oxigênio, após 24 horas.

Tabela 10 – Análise de variância com os dados originais dos Testes A com a

água superficial.

CAUSAS DE VARIAÇÃO GRAUS DE SOMA DE QUADRADO VALOR Pr > F

LIBERDADEQUADRADOS MÉDIO DE F

PRE_TRAT

3 3138.31525 1046.10508 2.28 0.094

CONCENT

3 6753.61116 2251.20372 4.91 0.0054

PRE_TRAT*CONCENT

9 2239.01216 248.77913 0.54 0.8347

ERRO (A)

40 18351.34875 458.78372

EPOCA

1 4609.54003 4609.54003 3.71 0.067

PRE_TRAT*EPOCA

3 1680.33936 560.11312 0.45 0.719

CONCENT*EPOCA

3 177.22028 59.07343 0.05 0.9859

PRE_TR*CONCENT*EPOCA

8 946.92858 118.36607 0.1 0.999

ERRO (B)

22 27305.45958 1241.15725

TOTAL CORRIGIDO

93 75328.40809

Como os dados apresentaram variabilidade e existe diferença significativa

entre as médias de concentração entre os pré-tratamentos foi utilizado o teste de

comparações múltiplas Dunnett T3, no nível de significância de 5%.

Para determinar qual média de concentração difere uma da outra, a variável

resposta compreendeu a inibição do potencial de produção de oxigênio após 24

horas, mostrado pela Tabela 11.

Através do Teste Dunnett T3, pode-se concluir que a inibição média na

concentração 80 (maior média de inibição) deve diferir significativamente da inibição

média da concentração 20 (menor média de inibição), em relação à inibição do

potencial de produção de oxigênio, após 24 horas.

Tabela 11 – Teste de comparações múltiplas Dunnett T3 com as

concentrações dos Testes A com água superficial.

Concentração n Média Erro Padrão Agrupamento

da Média Dunnett T3

28 46.43 6.31 A

27 35.50 5.76 AB

23 26.35 4.63 AB

16 21.72 3.50 B

Todos dos dados referentes à análise estatística descritiva encontram-se no

Apêndice 7.

b) Teste de Assimilação com Amostras de Sedimento Superficial

Na comparação entre concentrações (20, 40, 60 e 80%) e épocas (inverno e

verão) através do Teste Qui-Quadrado (Teste Exato de Fisher), concluiu-se não

haver diferença significativa (p=1,000) entre as concentrações em relação às

proporções de inibição do potencial de produção de oxigênio, após 24 horas

(Apêndice 6). Entretanto, neste teste, a inibição alcançou 95% quando incluídas as

duas épocas de coleta cruzadas com as concentrações, mesmo sem significância

estatística. Observou-se que na época de coleta verão, em todas as concentrações,

só ocorreu inibição do PPO, por isto, não foi realizado o Teste Qui-Quadrado.

A análise de medidas repetidas (Tabela 12) considerou os fatores:

concentração com 4 níveis (20, 40, 60 e 80) e época que possui 2 níveis (inverno,

verão). Os dados apresentaram heterogeneidade de variâncias, portanto, estes

foram transformados através do método de mínimos quadrados ponderados, cuja

variância dos grupos entrou na composição da ponderação.

De acordo com a análise de variância apresentada, pode-se concluir que

deve haver diferença significativa entre as médias de concentração (p=0,0096), em

relação à inibição do potencial de produção de oxigênio, após 24 horas, para uma

probabilidade de erro de p = 0,05 ou nível de significância de 5%.

Tabela 12 – Análise de variância com os dados transformados através do

método mínimos quadrados ponderados.

CAUSAS DE GRAUS DE SOMA DE QUADRADO VALOR Pr > F

VARIAÇÃO LIBERDADE QUADRADOS MÉDIO DE F

Concent 3 25.15891226 8.38630409 8.58 0.0096

Erro (A) 7 6.83979759 0.97711394

Epoca 1 0.94917924 0.94917924 0.91 0.3935

Concent*Epoca 3 1.34785443 0.44928481 0.43 0.7418

Erro (B) 4 4.16020241 1.0400506

Total Corrigido 18 37.8327133

Para determinar qual média de concentração difere uma da outra foi utilizado

o Teste de Comparações Múltiplas de Tukey, no nível de significância de 5%, tendo

como variável resposta a inibição do potencial de produção de oxigênio, após 24

horas.

Através do Teste de Tukey, a maior diferença entre as médias foi 61,094 na

comparação entre as concentrações 80 e 20% (Tabela 13). Desta maneira, pode-se

concluir que a inibição média na concentração 80 (maior média de inibição) deve

diferir significativamente da inibição média da concentração 20 (menor média de

inibição), em relação à inibição do potencial de produção de oxigênio, após 24

horas. Na análise estatística descritiva dos dados, mesmo sem significância

estatisticamente, apresenta a concentração 80% com melhor desempenho de

inibição (94,24) do PPO, após 24h, e menor desvio padrão (4,33).

Tabela 13 – Teste de comparações múltiplas de Tukey entre as

concentrações dos Testes A com sedimento superficial.

Comparação entre

as Concentrações

Diferença entre

as médias

Intervalo de

confiança 95%

80 – 60 13,357 -17,712 44,426

80 – 40 35,283 -6,892 77,459

80 – 20 61,094 11,254 110,934

60 – 40 21,927 -30,062 73,915

60 – 20 47,737 -10,641 106,115

40 – 20 25,811 -39,162 90,784

Todos dos dados referentes à análise estatística descritiva encontram-se no

Apêndice 8.

c) Teste de Dissimilação com Amostras de Água Superficial

Comparando as concentrações dentro dos pré-tratamentos e épocas, através

do Teste Qui-Quadrado (Teste Exato de Fisher), pode-se concluir que não há

diferença significativa entre as concentrações em relação às proporções de inibição

do potencial de consumo de oxigênio, após 24 horas (Apêndice 6). Neste teste, a

maior porcentagem de inibição nos ensaios ecotoxicológicos de dissimilação foi

54,2% com o pré-tratamento esterelizado, época inverno, e 75% com a amostra

bruta ou sem pré-tratamento, época verão, apesar de não apresentarem diferenças

significativas entre as concentrações e a inibição do PCO.

A estatística descritiva dos dados, sem ter significância estatisticamente,

mostra o pré-tratamento esterelizado com a concentração 80% na época de coleta

verão com o melhor desempenho, 57,5 de inibição e 24,74 de desvio padrão, na

comparação geral.

A análise de medidas repetidas envolveu os fatores: pré-tratamento possui 4

níveis (1 - dec, 2 - est, 3 - hom e 4 - st), concentração tem 4 níveis (20, 40, 60 e

80%) e época possui 2 níveis (1- inverno e 2- verão). Os dados apresentaram

heterogeneidade de variâncias e como não se tem uma análise estatística não-

paramétrica adequada para este tipo de análise, a análise de variância foi realizada

com os dados originais, conforme a Tabela 14.

Através da análise de variância, pode-se concluir que não há diferença

significativa entre as médias de inibição no pré-tratamento, concentração e nem na

época, assim como não há diferença significativa entre as médias de inibição na

interação desses fatores, ao nível de significância de 5%, em relação à inibição do

potencial de consumo de oxigênio, após 24 horas.

Tabela 14 - Análise de variância com os dados originais dos Testes D com a

água superficial.

CAUSAS DE VARIAÇÃO GRAUS DE SOMA DE QUADRADO VALOR Pr > F

LIBERDADE QUADRADOS MÉDIO DE F

PRE_TRAT

3 4073.552424 1357.850808 1.77 0.2066

CONCENT

3 4853.763718 1617.921239 2.11 0.1528

PRE_TRAT*CONCENT

6 1220.326565 203.387761 0.26 0.943

ERRO (A)

12 9214.887833 767.907319

EPOCA

1 44.276312 44.276312 0.55 0.5136

PRE_TRAT*EPOCA

2 66.349833 33.174917 0.41 0.6965

CONCENT*EPOCA

3 408.786011 136.262004 1.68 0.3402

PRE_TR*CONCENT*EPOCA

2 52.949091 26.474545 0.33 0.7443

ERRO (B)

3 243.3225 81.1075

TOTAL CORRIGIDO

36 23742.70108

Todos dos dados referentes à análise estatística descritiva encontram-se no

Apêndice 8.

d) Teste de Dissimilação com Amostras de Sedimento Superficial

Os Testes D com as amostras de sedimento superficial apresentaram

aceleração do PCO, após 24h, em praticamente todas as concentrações e locais,

com exceção das concentrações 60 (-17,6%) e 80% (-35,3%) do local 1. O que leva

a pensar que as bactérias aeróbias heterotróficas adaptadas ao consumo de extrato

de carne granulado não são sensíveis ao elutriato quanto à inibição do PCO após

24h, pelo contrário, têm seu metabolismo estimulado, comportamento oposto ao

apresentado pelas culturas de Clorofíceas. Desta forma, pode-se dizer que o método

do Teste D com elutriato não demonstra uma sensibilidade para a sua padronização.

Observa-se que o Teste A-D com água superficial, mesmo não apresentando

significância estatisticamente, mostraram que a maior inibição do PBO e PCO, foi

com o pré-tratamento esterelizado na concentração 80%, apesar deste apresentar

maior desvio padrão que o Teste A com a amostra bruta. Tal comportamento na

eliminação das interferências do Teste A-D, respectivamente os nutrientes e a alta

DBO na amostra, seja devido à fervura a 120ºC/15 min em autoclave por eliminar a

concorrência com as bactérias existentes na amostra e por provocar a liberação e/ou

a decomposição dos nutrientes e substâncias orgânicas biodegradáveis, mas não

dos compostos persistentes e metais pesados do meio, revelando assim, os efeitos

de potencial tóxico da água superficial.

Para a comparação geral, entre os locais de coleta, dados químicos da água

(metais pesados e nutrientes) e do sedimento (metais pesados, matéria orgânica e

granulometria), dados biológicos dos Testes de Assimilação e Dissimilação com

água e sedimento superficial foi realizada a análise não paramétrica (Tabela 15).

Nos dados biológicos os valores utilizados para a análise foram os de inibição.

Os ranks estão na mesma ordem de grandeza dos valores registrados para

cada variável em estudo. O local 4 apresenta os maiores ranks para as variáveis

água – metais pesados, Teste D – água, Teste A – água, significando em geral, que

os metais pesados e a inibição no Teste A-D com água superficial apresentaram os

maiores valores em comparação aos demais locais de amostragem. O local 2

mostra os maiores ranks para as variáveis água – nutrientes, sedimento – metais

pesados, sedimento – matéria orgânica e Teste A – sedimento, significando em

geral, que os nutrientes da água superficial, os metais pesados e a matéria orgânica

do sedimento superficial e a inibição no Teste A com o sedimento superficial

apresentaram os maiores valores em comparação aos outros locais. Os locais 1 e 2

apresentaram uma proximidade quanto ao desempenho nos resultados das

variáveis água – metais pesados, água – nutrientes e Teste A – água, demonstrando

serem os locais mais impactados pela contaminação de metais pesados e

nutrientes, e que o nível de concentração destes na água superficial influencia

diretamente a inibição do potencial de produção de oxigênio após 24h, no Teste A

com a água superficial. O local 1 obteve o maior rank para a variável sedimento –

granulometria, significando que este local possui o maior tamanho de grânulos no

sedimento superficial.

Tabela 15 – Análise não paramétrica, por rank e rank médio, entre todos os

dados químicos e biológicos dos Testes A-D, com a água e o sedimento superficial.

Locais

Água

metais

(rank

médio)

Água

nutrien

(rank

médio)

Sedim

metais

(rank)

Sedim

mat org

(rank)

Sedim

granulo

(rank)

Água

Teste D

(rank

médio)

Água

Teste A

(rank

médio)

Sedim

Teste A

(rank

médio)

1 6 6 2 2 4 15,04 43,2 9,56

2 6,5 7 4 4 3 16,73 50,78 13,33

3 3 3 3 1 2 # 30,21 7,75

4 7 6,5 * * * 28,63 56,06 *

5 1,5 1,5 1 3 1 24,25 36,09 10,63

# Neste local não houve inibição.

* Impossibilidade de amostragem do sedimento superficial do local 4.

• Obs.: Nos dados biológicos, Teste D, sedimento superficial, em nenhum

momento foi analisado pois não houve inibição. Só há o local 1 com duas

informações de inibição.

7. CONSIDERAÇÕES FINAIS

Os resultados obtidos no presente trabalho permitem inferir que na (o):

AVALIAÇÃO FÍSICA E QUÍMICA DA ÁGUA SUPERFICIAL

A água superficial da BH do Arroio Tega, quanto aos parâmetros físicos e

químicos avaliados, atende apenas a Classe 3 ou 4 da Resolução CONAMA 357/05,

salientando níquel, cobre e fosfato (menos local 5) com teores muito acima dos da

norma. A condutividade também é bastante elevada, mostrando o comprometimento

dos corpos d’água da área de estudo. Tudo isso revela contaminação, alteração da

qualidade e potencial para causar efeitos tóxicos adversos na seguinte escala

decrescente de intensidade (integração dos parâmetros físicos, químicos e

biológicos): local 4, local 2, local 1, local 3 e local 5. Essa discriminação poderá ser

utilizada como ferramenta auxiliar na indicação daquelas áreas que devem ser

priorizadas ou mais profundamente avaliadas (ex. tratamento da água).

AVALIAÇÃO FÍSICA E QUÍMICA DO SEDIMENTO SUPERFICIAL

O sedimento superficial da BH do Arroio Tega, no que tange aos parâmetros

físicos e químicos avaliados, apresenta contaminação e potencial para causar

efeitos tóxicos adversos. A ordem decrescente quanto à impactação por fontes

antrópicas segue: local 2, local 1, local 3 e local 5. Essa hierarquização pode ser

usada como subsídio na escolha das áreas que devem ser priorizadas ou mais

profundamente avaliadas.

Quanto ao grau de contaminação por metais, pode-se estabelecer a seguinte

classificação: cobre – locais 2 e 3 fortemente poluídos e local 1 moderadamente

poluído; cromo – local 2 fortemente poluído; níquel – locais 1 e 2 fortemente

poluídos; zinco – locais 1, 2 e 3 fortemente poluídos.

As avaliações da água e do sedimento superficial refletem a utilização do

recurso hídrico como depositário direto das atividades desenvolvidas na área de

estudo – efluentes industriais e cloacais não tratados e a agricultura - modificando

fortemente as condições ambientais.

MANUTENÇÃO DO TESTE DE ASSIMILAÇÃO (TESTE A)

As culturas mistas de Clorofíceas atingem a fase exponencial em três dias, na

média, posteriores à incubação.

Este estudo revela uma elevada e desconhecida capacidade de adaptação

das culturas à solução nutritiva ISO 8692/1989 (E) 10 vezes menos enriquecida

(modificação da norma original), no alcance do crescimento exponencial.

MANUTENÇÃO DO TESTE DE DISSIMILAÇÃO (TESTE D)

As culturas de bactérias aeróbias heterotróficas com uma concentração de

0,0001 g/L ou 0,005 g em 50 L) de extrato de carne granulado fornecida diariamente

alcançam um CBO médio diário de 0,5 mg/L (valor desejado).

A concentração de 0,012 g/L de extrato de carne granulado no controle do

Teste-D mostrou ser ideal para atingir um PCO desejado de 5 mg/L, após 24h.

TESTE A – D COM ÁGUA SUPERFICIAL

O pré-tratamento esterilizado, estatisticamente sem significância, foi o que

apresentou maior inibição do consumo e produção de oxigênio, na concentração

80%, após 24h, nos Testes A e D com amostras de água superficial da Bacia

Hidrográfica do Arroio Tega.

Quanto à aplicabilidade dos Testes A e D, na eliminação da interferência dos

nutrientes e da alta DBO, o pré-tratamento esterilizado apresenta as maiores

porcentagens de inibição do PPO e PCO, mas para a obtenção da significância

estatística, devem ser feitos mais testes.

Na análise estatística dos Testes de Assimilação com água superficial, há

diferença significativa entre as médias de concentração (p=0,0054), em relação à

inibição do potencial de produção de oxigênio, após 24 horas, para uma

probabilidade de erro de p = 0,05 ou nível de significância de 5%, diferindo

significativamente a inibição média na concentração 80 (maior média de inibição) da

inibição média da concentração 20 (menor média de inibição).

Contudo, os resultados apresentam possibilidade de aplicação do Teste A-D

na avaliação da toxicidade e monitoramento de efluentes e águas superficiais. Este

método mostrou ser um procedimento operacional simples e rápido, aplicável

simultaneamente a um grande número de amostras e de baixo custo.

TESTE A – D COM SEDIMENTO SUPERFICIAL

Através dos Testes A e D realizados com o sedimento superficial, se verificou

a necessidade de centrifugar a solução de elutriato por um período de 15 min a 5000

rpm de modo a eliminar a interferência da turbidez.

Na análise estatística dos Testes A com sedimento superficial, há diferença

significativa entre as médias de concentração (p=0,0096), em relação à inibição do

potencial de produção de oxigênio, após 24 horas, para uma probabilidade de erro

de p = 0,05 ou nível de significância de 5%, diferindo significativamente a inibição

média na concentração 80 (maior média de inibição) da inibição média da

concentração 20 (menor média de inibição).

No Teste A, o rank dos locais de coleta quanto à inibição da PPO, após 24h,

se mostrou na seguinte ordem decrescente 2<5<1<3. No Teste D, apenas o local 1,

nas concentrações 60 e 80%, mostrou inibição do PCO, após 24h.

Os Testes A e D, com a solução de elutriato, responderam de forma

diferenciada quanto às taxas de PPO e PCO após 24h. Os Testes A apresentaram

inibição da fotossíntese e os Testes D, aceleração da respiração, mostrando

sensibilidades diferentes, não havendo uma complementação dos processos

autotrófico e heterotrófico.

Assim, os resultados não apresentam possibilidade de aplicação dos Testes

A-D com elutriato na avaliação da toxicidade de sedimentos superficiais.

8. RECOMENDAÇÕES

- Este estudo poderá servir como subsídio para futuras investigações

geoquímicas e ambientais na região, uma vez que estabeleceu faixas de

concentração e relações de referência para os elementos químicos cobre, níquel,

cromo e zinco, presentes na água e sedimentos superficiais da Bacia Hidrográfica do

Arroio Tega, em Caxias do Sul, RS.

- Sugerir a elaboração de um plano de trabalho conjunto entre o órgão de

abastecimento de água e esgotamento sanitário, secretaria de meio ambiente,

secretaria da educação, ongs e associações de bairro do município, com base neste

estudo integrado dos parâmetros químicos e biológicos da água e do sedimento

superficial e de outros estudos afins, enfatizando-se a situação dos locais mais

críticos, isto é, de maior poluição ambiental, na BH do Arroio Tega, de modo a definir

ações direcionadas à educação ambiental (estudo de percepção e sensibilização

ambiental), ao controle das possíveis fontes poluidoras através da fiscalização

(quanto ao tratamento e destino adequado dos seus efluentes), ao monitoramento

da qualidade ambiental (determinação de locais ao longo da BH) e busca de

investimentos para implantação e/ou ampliação de um sistema de tratamento de

esgoto cloacal.

- Realizar ensaios ecotoxicológicos com a água e o sedimento superficial em

outros organismos da cadeia trófica, como por exemplo, consumidores primários

(crustáceos) e secundários (peixes), pois estes podem refletir sensibilidades

complementares às mostradas neste trabalho.

- Desenvolver estudos objetivando conhecer os mecanismos de transporte

dos elementos-traço, identificação das suas possíveis formas tóxicas e medidas

saneadoras em ecossistemas aquáticos.

- A variabilidade dos resultados químicos e ecotoxicológicos observada

durante o trabalho pode indicar a necessidade de intervalos menores entre as

campanhas amostrais e/ou maior quantidade de testes (mínimo de 32 combinações).

Desta forma, sugere-se a adoção de um número maior de testes e amostragens

mais freqüentes.

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10. APÊNDICES

APÊNDICE 1

Testes de Assimilação com as amostras de água superficial da BH do Arroio Tega,

nas duas campanhas amostrais (2º semestre/05 e 1º semestre/06)

Testes de toxicidade com 4 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio Tega,

local 1, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral inverno/05 .

PT Data Abs Cresc. Controle e

C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

final

PPO % de

Inibição

C 8,3 9,57 12,3 * 7,2 * 5,1 -

20 8,3 9,42 12,0 * 6,9 * 5,1 0

R 20/06 0,078 3º dia 40 8,2 9,38 11,5 * 6,6 * 4,9 -3,9

60 8,1 9,30 10,9 * 6,0 * 4,9 -3,9

80 8,2 9,24 9,3 * 5,7 * 3,6 -29,4

C 8,8 9,26 16,5 9,51 7,7 9,1 8,8 -

20 9,0 9,23 23,7 9,51 7,5 9,1 16,2 84,1

1 22/06 0,059 3º dia 40 8,8 9,24 24,3 9,48 7,3 9,1 17,0 93,2

60 8,3 9,24 23,4 9,40 6,4 9,1 17,0 93,2

80 # # # # # # # #

C 8,8 9,20 17,3 9,16 7,7 9,09 9,6 -

20 8,8 9,13 17,8 9,32 7,9 9,05 9,9 3,1

2 25/06 0,100 3º dia 40 8,8 9,04 16,9 9,21 7,9 8,96 9,0 -6,3

60 8,9 8,99 16,7 9,17 7,8 8,90 8,9 -7,3

80 8,9 8,97 14,7 9,08 7,1 8,86 7,6 -20,8

C 8,8 9,20 17,3 9,16 7,7 9,09 9,6 -

20 8,8 9,08 16,3 9,25 6,9 9,00 9,4 -2,1

3 25/06 0,100 3º dia 40 8,8 9,04 15,7 9,23 6,7 8,93 9,0 -6,3

60 8,8 9,00 15,1 9,15 6,1 8,87 9,0 -6,3

80 8,8 8,98 14,4 9,10 5,9 8,80 8,5 -11,5

C 8,8 9,20 17,3 9,16 7,7 9,09 9,6 -

20 8,8 9,12 18,2 9,33 6,8 9,02 11,4 18,7

4 25/06 0,100 3º dia 40 8,8 9,08 17,5 9,21 6,2 8,88 11,3 17,7

60 8,9 9,02 19,0 9,20 6,2 8,82 12,8 33,3

80 # # # # # # # #

Nota: coleta em 20/06/05 às 08h:50min, após a coleta o teste foi realizado o mais breve

possível (bactérias pela manhã e algas pela tarde). Semana anterior foi de muita chuva.

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos (PT):

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, teste realizado no

dia seguinte.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

4- Filtrado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, filtra-se em membrana 0,45 µm.

Obs.: * pHmetro com problemas (dava erro na calibração), por isso não se realizou a

medição. # quantidade de amostra insuficiente para fazer a concentração de 80%.

Testes de toxicidade com 4 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio Tega,

local 2, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral inverno/05.

PT Data Abs Cresc. Controle

e C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

final

PPO % de

Inibição

C 8,6 9,10 16,4 9,42 7,6 8,98 8,8 -

20 8,1 8,93 16,0 9,24 5,6 8,78 10,4 18,2

R 06/07 0,127 3º dia 40 8,0 8,81 11,9 9,00 3,6 8,55 8,3 -5,7

60 7,3 8,65 9,2 8,73 2,0 8,31 7,2 -18,2

80 7,1 8,54 7,8 8,58 1,2 8,14 6,6 -25,0

C 8,8 9,05 15,0 9,27 6,9 8,82 8,1 -

20 7,8 9,05 14,5 9,25 5,4 8,91 9,1 12,3

1 06/07 0,127 3º dia 40 7,0 9,07 11,4 9,19 3,9 8,91 7,5 -7,4

60 5,9 9,10 10,2 9,17 3,0 9,00 7,2 -11,1

80 5,4 9,07 8,6 9,19 1,6 8,99 7,0 -13,6

C 9,3 9,13 11,0 9,23 6,3 8,78 4,7 -

20 9,3 9,06 14,0 9,23 7,7 8,90 6,3 34,0

2 11/07 0,166 3º dia 40 9,2 9,01 11,9 9,09 8,0 8,90 3,9 -17

60 9,3 8,96 11,4 8,97 7,8 8,83 3,6 -23,4

80 9,2 8,93 11,0 8,92 7,4 8,78 3,6 -23,4

C 9,3 9,13 11,0 9,23 6,3 8,78 4,7 -

20 8,8 9,12 13,3 9,36 7,4 8,90 5,9 25,5

3 11/07 0,166 3º dia 40 8,8 9,03 10,6 9,06 6,8 8,75 3,8 -19,1

60 8,8 8,97 9,6 8,91 6,3 8,66 3,3 -29,8

80 8,7 8,93 7,8 8,77 5,6 8,57 2,2 -53,2

C 9,3 9,13 11,0 9,23 6,3 8,78 4,7 -

20 8,1 9,08 11,3 9,20 6,7 8,91 4,6 -2,1

4 11/07 0,166 3º dia 40 8,0 9,00 10,9 9,16 6,3 8,84 4,6 -2,1

60 8,1 8,94 9,5 8,93 5,1 8,74 4,4 -6,4

80 8,1 8,89 8,9 8,87 4,7 8,64 4,2 -10,6

Nota: coleta em 06/07/05 às 11h, o teste foi realizado à tarde (bactérias e algas).

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, depois foi realizado

o teste.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

4- Filtrado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, filtra-se em membrana 0,45 µm.

Testes de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do arroio

tributário da Represa São Paulo que desemboca no Arroio Dal Bó – tributário do Arroio

Tega, local 3, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral

inverno/05.

PT Data Abs Cresc. Controle

e C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

final

PPO % de

Inibição

C 8,0 9,06 17,8 9,30 6,8 8,96 11,0 -

20 8,0 9,01 16,8 9,26 6,5 8,89 10,3 -6,4

R 30/09 0,148 4° dia 40 8,1 8,93 18,6 9,18 6,5 8,81 12,1 +10,0

60 8,0 8,88 20,7 9,20 6,1 8,73 14,6 +32,7

80 7,9 8,88 21,4 9,19 5,6 8,62 15,8 +43,6

C 8,0 9,06 17,8 9,30 6,8 8,96 11,0 -

20 8,5 9,08 21,3 9,39 5,5 8,94 15,8 +43,6

1 30/09 0,148 4º dia 20 8,0 9,07 20,8 9,41 5,3 9,00 15,5 +40,9

60 7,0 9,06 24,3 9,43 4,4 9,03 19,9 +80,9

80 6,3 9,06 22,8 9,43 3,8 9,03 19,0 +72,7

C 7,4 8,89 13,9 9,06 6,2 8,80 7,7 -

20 7,1 8,84 13,9 9,02 6,1 8,76 7,8 +1,3

2 04/10 0,197 3º dia 40 7,1 8,81 13,8 9,02 6,1 8,73 7,7 0

60 7,3 8,80 13,2 8,93 6,2 8,70 7,0 -9,1

80 7,5 8,79 12,4 8,94 6,4 8,72 7,0 -9,1

C 7,4 8,89 13,9 9,06 6,2 8,80 7,7 -

20 7,5 8,83 11,8 8,94 5,4 8,68 6,4 -16,9

3 04/10 0,197 3º dia 40 7,5 8,79 11,4 8,87 4,8 8,58 6,6 -14,3

60 7,4 8,74 10,1 8,75 4,0 8,49 6,1 -20,8

80 7,4 8,70 7,4 8,52 3,2 8,34 4,2 -45,4

Nota:

coleta em 29/09/05 às 16:45h, as amostras foram colocadas na geladeira e o teste

foi feito no dia seguinte (bactérias e algas). Os testes R e 1, no claro apresentaram 28,9ºC

(sala a 28ºC) e escuro 19,5ºC. Os testes 2 e 3 foram feitos em temperatura de 20 a 23ºC

no câmara com lâmpadas fluorescentes fora da sala aclimatizada. O testes 4 não foi

realizada devido falta de espaço nesta câmara.

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, depois foi realizado

o teste.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

Testes de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio

Previde tributário do Arroio Tega, local 4, usando a produção de O

mg/L como medida,

campanha amostral inverno/05.

PT Data Abs Cresc. Controle

e C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

final

PPO % de

Inibição

C 8,5 9,00 13,3 8,99 7,7 8,87 5,6 -

20 8,1 8,92 10,7 8,84 6,6 8,74 4,1 -26,8

R 16/10 0,152 3° dia 40 7,4 8,40 8,2 8,69 5,1 8,63 3,1 -44,6

60 6,7 8,77 5,0 8,55 3,8 8,53 1,2 -78,6

80 6,1 8,69 3,1 8,42 2,7 8,42 0,4 -92,9

C 8,4 8,93 11,4 8,96 7,2 8,77 4,2 -

20 8,8 8,96 10,7 8,94 7,6 8,84 3,1 -26,2

1 17/10 0,152 3º dia 20 8,7 8,89 8,4 8,81 6,5 8,77 1,9 -54,8

60 9,3 8,87 7,4 8,74 7,4 8,76 0 -100,0

80 10,3 8,95 8,8 8,84 8,8 8,87 0 -100,0

C 8,2 9,04 14,9 9,21 7,2 8,94 7,7 -

20 8,2 8,98 13,8 9,09 7,0 8,87 6,8 -11,7

2 18/10 0,139 3º dia 40 8,3 8,92 13,9 9,01 6,9 8,80 7,0 -9,1

60 8,2 8,87 13,4 8,93 6,5 8,75 6,9 -10,4

80 8,3 8,82 12,8 8,86 6,3 8,68 6,5 -15,6

C 8,2 9,04 14,9 9,21 7,2 8,94 7,7 -

20 8,0 8,99 12,4 9,03 6,4 8,84 6,0 -22,1

3 18/10 0,139 3º dia 40 8,1 8,94 11,2 8,93 5,7 8,76 5,5 -28,6

60 8,1 8,87 11,0 8,84 5,0 8,64 6,0 -22,1

80 8,1 8,82 8,5 8,72 4,2 8,59 4,3 -44,2

Nota:

coleta em 13/10/05 às 17:30h somente água. As amostras foram colocadas na

geladeira a -4ºC. Teste realizado em paralelo com moluscos (Marina).

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, depois foi realizado

o teste.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

Testes de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do afluente da

Represa São Miguel do Complexo Dal Bó, que desemboca posteriormente no Arroio Dal Bó

tributário do Arroio Tega, local 5 – controle, usando a produção de O

mg/L como medida,

campanha amostral inverno/05.

PT Data Abs Cresc. Controle

e C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

final

PPO % de

Inibição

C 8,1 - 10,3 - 7,0 - 3,3 -

20 8,3 - 11,0 - 6,7 - 4,3 +30,3

R 03/11 0,161 3° dia 40 8,3 - 11,5 - 6,8 - 4,7 +42,4

60 8,3 - 12,0 - 6,9 - 5,1 +54,5

80 8,3 - 11,9 - 6,9 - 5,0 +51,5

C 8,0 8,88 11,1 9,07 6,5 8,90 4,6 -

20 7,3 8,90 10,8 9,07 5,8 8,94 5,0 +8,7

1 04/11 0,179 4º dia 20 7,5 8,87 12,0 9,12 5,5 8,92 6,5 +41,3

60 7,6 8,87 11,8 9,14 5,6 8,93 6,2 +34,8

80 6,9 8,80 10,2 9,04 4,7 8,86 5,5 +19,6

C 8,3 - 12,3 - 6,7 - 5,6 -

20 7,8 - 8,1 - 3,8 - 4,3 -23,2

2 08/11 0,166 3º dia 40 8,0 - 8,6 - 4,0 - 4,6 -17,8

60 8,3 - 10,2 - 4,9 - 5,3 -5,4

80 8,5 - 11,1 - 5,8 - 5,3 -5,4

C 8,3 - 12,3 - 6,7 - 5,6 -

20 7,7 - 9,2 - 4,2 - 5,0 -10,7

3 08/11 0,166 3º dia 40 7,9 - 10,1 - 4,1 - 6,0 +7,1

60 7,9 - 11,0 - 4,7 - 6,3 +12,5

80 8,2 - 12,0 - 5,5 - 6,5 +16,1

Nota:

coleta em 03/11/05 às 15h. Uma semana com sol e temperaturas baixas de 27/10 a

01/11.

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, depois foi realizado

o teste.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

100

Testes de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio Tega,

local 1, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral verão/06.

PT Data Abs Cresc. Controle

e C (%)

inicial O

final

claro

final

escuro

PPO % de

Inibição

C 7,0 8,1 5,8 2,3 -

20 6,5 6,9 5,3 1,6 -30,4

R 02/02 0,089 3° dia 40 6,1 6,1 5,1 1,0 -56,5

60 5,7 4,5 3,9 0,6 -73,9

80 5,5 2,9 3,2 -0,3 -100

C 7,0 8,1 5,8 2,3 -

20 6,1 6,7 4,8 1,9 -17,4

1 02/02 0,089 3° dia 40 5,4 5,5 4,2 1,3 -43,5

60 4,7 3,8 3,6 0,2 -91,3

80 4,4 3,5 3,2 0,3 -87,0

C 7,0 11,8 5,9 5,9 -

20 6,8 12,6 4,7 7,9 33,9

2 07/02 0,084 3º dia 40 6,8 11,1 4,1 7,0 18,6

60 6,6 8,6 3,4 5,2 -11,9

80 6,7 7,5 2,8 4,7 -20,3

C 7,0 11,8 5,9 5,9 -

20 7,0 13,5 3,5 10,0 69,5

3 07/02 0,084 3º dia 40 6,8 8,5 1,8 6,7 13,6

60 6,8 5,3 1,0 4,3 -27,1

80 6,8 1,4 0,4 1,0 -83,1

Nota:

coleta em 02/02/06 às 08:30h. Problemas com temperatura para os frascos “claros”,

houve queda de luz e temperatura ambiente muito elevada (sem condições controladas),

fazendo o experimento chegar a 30ºC (R e 1). Temperatura nos pré-tratamentos 2 e 3

estava em torno de 26ºC.

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, depois foi realizado

o teste.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

101

Testes de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio Tega,

local 2, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral verão 2006.

PT Data Abs Cresc. Controle

e C (%)

inicial O

final

claro

final

escuro

PPO % de

Inibição

C 6,8 18,2 5,9 12,3 -

20 6,6 20,8 5,3 15,5 26,0

R 14/02 0,058 3° dia 40 6,3 19,1 4,8 14,3 16,3

60 6,0 16,5 4,0 12,5 1,6

80 5,8 11,8 3,6 8,2 -33,3

C 6,8 18,2 5,9 12,3 -

20 6,6 18,4 4,6 13,8 12,2

1 14/02 0,058 3° dia 40 5,8 15,0 4,0 11,0 -10,6

60 5,3 12,2 3,5 8,7 -29,3

80 3,8 11,1 2,4 8,7 -29,3

C 7,0 10,2 6,1 4,1 -

20 7,1 9,8 5,2 4,6 12,2

2 19/02 0,108 3º dia 40 7,0 7,4 4,0 3,4 -17,1

60 6,9 4,0 3,0 1,0 -75,6

80 6,9 2,6 2,4 0,2 -95,1

C 7,0 10,2 6,1 4,1 -

20 7,3 6,5 4,2 2,3 -43,9

3 19/02 0,108 3º dia 40 7,2 3,0 2,5 0,5 -87,8

60 7,1 2,1 1,5 0,6 -85,4

80 7,1 1,3 1,0 0,3 -92,7

Nota:

coleta em 02/02/06 às 08:30h. Temperatura nos frascos “claros” de 28 a 30 ºC

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, depois foi realizado

o teste.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

102

Testes de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio

Previde tributário do Arroio Tega, local 4, usando a produção de O

mg/L como medida,

campanha amostral verão/06.

PT Data Abs Cresc. Controle e

C (%)

inicial O

final

claro

final

escuro

PPO % de

Inibição

C 7,4 16,7 6,4 10,3 -

20 6,9 9,4 4,9 4,5 -56,3

R 03/03 0,147 3° dia 40 6,4 8,0 3,4 4,6 -55,3

60 5,7 5,1 1,4 3,7 -64,1

80 5,4 3,1 0,2 2,9 -71,8

C 7,2 13,8 6,0 7,8 -

20 6,8 13,6 5,1 8,5 9,0

1 04/03 0,144 4° dia 40 6,1 10,8 4,5 6,3 -19,2

60 5,9 8,6 3,9 4,7 -39,7

80 5,7 4,4 3,8 0,6 -92,3

C 6,2 16,8 6,1 10,7 -

20 5,9 15,0 6,3 8,7 -18,7

2 08/03 0,121 3º dia 40 5,9 14,8 6,3 8,5 -20,6

60 5,9 14,4 6,3 8,1 -24,3

80 5,9 13,1 6,1 7,0 -34,6

C 6,2 16,8 6,1 10,7 -

20 5,9 15,8 5,9 9,9 -7,5

3 08/03 0,121 3º dia 40 5,9 15,0 5,6 9,4 -12,1

60 5,8 13,2 5,2 8,0 -25,2

80 5,9 11,2 4,8 6,4 -40,2

Nota:

coleta em 03/03/06 às 08:30h. Temperatura nos frascos “claros” de 26 a 28,3ºC.

Chuva em 01/03/06, dois dias anteriores estavam limpos e nublados.

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, depois foi realizado

o teste.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

103

Testes de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do afluente da

Represa São Miguel do Complexo Dal Bó, que desemboca posteriormente no Arroio Dal Bó

tributário do Arroio Tega, local 5 – controle, usando a produção de O

mg/L como medida,

campanha amostral verão/06.

PT Data Abs Cresc. Controle e

C (%)

inicial O

final

claro

final

escuro

PPO % de

Inibição

C 7,4 16,7 6,4 10,3 -

20 7,5 14,3 6,8 7,5 -27,2

R 03/03 0,147 3° dia 40 7,6 12,1 6,8 5,3 -48,5

60 7,7 12,4 7,0 5,4 -47,6

80 7,8 14,1 6,9 7,2 -30,1

C 7,2 13,8 6,0 7,8 -

20 6,6 16,8 5,1 11,7 50,0

1 04/03 0,144 4° dia 40 6,2 17,1 4,8 12,3 57,7

60 5,6 10,9 4,4 6,5 -16,7

80 4,5 15,4 3,4 12,0 53,8

C 8,3 17,1 5,4 11,7 -

20 8,2 20,3 5,3 15,0 28,2

2 08/03 0,136 4º dia 40 7,9 22,7 4,9 17,8 52,1

60 8,0 20,0 4,2 15,8 35,0

80 7,8 15,0 3,3 11,7 0

C 8,3 17,7 5,4 11,7 -

20 7,8 22,6 5,3 17,3 47,9

3 08/03 0,136 4º dia 40 8,0 21,0 4,9 16,1 37,6

60 7,9 21,5 4,4 17,1 46,2

80 7,9 15,0 3,4 11,6 -0,8

Nota:

coleta em 03/03/06 às 09h. Temperatura nos frascos “claros” de até 27,8ºC. Chuva

em 01/03/06, dois dias anteriores estavam limpos e nublados.

Referência:

PPO =Potencial de Produção de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, depois foi realizado

o teste.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

104

APÊNDICE 2

Testes de Dissimilação com as amostras de água superficial da BH do Arroio Tega,

nas duas campanhas amostrais (2º semestre/05 e 1º semestre/06)

105

Testes de toxicidade com 4 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio

Tega, local 1, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 2), campanha

amostral inverno/05.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 8,5 8,4 2,8 8,0 5,6 -

20 8,4 8,5 0,7 8,0 7,7 37,5

R 20/06 0,5 40 8,4 8,3 0,7 7,9 7,7 37,5

60 8,5 8,2 0,5 7,7 8,0 42,8

80 8,5 8,2 0,5 7,5 8,0 42,8

C 8,5 * 0,5 * 8,0 -

20 7,9 * 0,5 * 7,4 -7,5

1 21/06 0,5 40 7,5 * 0,5 * 7,0 -12,5

60 7,0 * 0,7 * 6,3 -21,2

80 6,6 * 0,7 * 5,4 -26,2

C 8,7 7,43 0,8 7,54 7,9 -

20 8,8 7,45 0,5 7,36 8,3 5,1

2 25/06 0,5 40 8,8 7,41 0,5 7,30 8,3 5,1

60 8,9 7,40 0,6 7,25 8,3 5,1

80 8,9 7,39 0,6 7,23 8,3 5,1

C 8,7 7,43 0,8 7,54 7,9 -

20 8,7 7,43 0,8 7,25 7,9 0

3 25/06 0,5 40 8,7 7,47 0,8 7,31 7,9 0

60 8,7 7,43 0,6 7,29 7,1 -10,1

80 8,7 7,40 0,4 7,19 7,3 -7,6

C 8,7 7,43 0,8 7,54 7,9 -

20 9,0 7,43 0,4 7,20 8,6 8,9

4 25/06 0,5 40 8,9 7,42 0,5 7,22 8,4 6,3

60 9,0 7,39 0,6 7,23 8,6 8,9

80 # # # # # #

Nota:

a quantidade de extrato de carne corresponde a 100x o valor diário (0,005 g/L).

Referência:

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos (PT):

1-Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, teste realizado

no dia seguinte.

2-Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3-Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a

aeração e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

106

4-Filtrado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, filtra-se em membrana 0,45 µm.

Obs.: * pHmetro com problemas (dava erro na calibração), por isso não se realizou a

medição. # quantidade de amostra insuficiente para fazer a concentração de 80%.

Testes de toxicidade com 4 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio

Tega, local 2, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 2), campanha

amostral inverno/05.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle

e C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 8,7 7,45 0,3 7,28 8,4 -

20 8,4 7,40 0,2 7,29 8,2 -2,4

R 06/07 0,5 40 8,2 7,38 0,2 7,26 8,0 -4,8

60 7,8 7,32 0,2 7,23 7,6 -9,5

80 7,9 7,28 0,3 7,20 7,6 -9,5

C 9,0 7,48 0,2 7,41 8,8 -

20 8,0 7,51 0,2 7,38 7,8 -11,4

1 06/07 0,5 40 7,2 7,57 0,2 7,39 7,0 -20,4

60 6,5 7,68 0,2 7,55 6,3 -28,4

80 5,8 7,76 0,2 7,62 5,6 -36,4

C 7,1 7,49 0,4 7,29 6,7 -

20 7,4 7,44 0,4 7,43 7,0 4,5

2 11/07 0,5 40 7,7 7,43 0,4 7,43 7,3 9,0

60 7,9 7,46 0,3 7,41 7,6 13,4

80 8,2 7,47 0,2 7,47 8,0 19,4

C 7,1 7,49 0,4 7,29 6,7 -

20 7,3 7,39 1,0 7,46 6,3 -6,0

3 11/07 0,5 40 7,4 7,40 0,4 7,33 7,0 4,5

60 7,5 7,40 0,3 7,27 7,2 6,0

80 7,4 7,41 0,3 7,27 7,1 6,0

C 7,1 7,49 0,4 7,29 6,7 -

20 7,6 7,43 0,3 7,31 7,3 9,0

4 11/07 0,5 40 8,0 9,00 0,1 7,42 7,9 17,9

60 8,1 8,94 6,0 7,78 2,1 -68,6

80 8,1 8,89 0,2 7,41 7,9 17,9

Nota:

a quantidade de extrato de carne corresponde a 100x o valor diário (0,005 g/L).

Referência:

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min, teste realizado no mesmo dia da coleta.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a

aeração e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

4- Filtrado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, filtra-se em membrana 0,45µ.

107

Obs.: * pHmetro com problemas (dava erro na calibração), por isso não se realizou a

medição. # quantidade de amostra insuficiente para fazer a concentração de 80%.

Teste de toxicidade com pré-tratamento esterilizado da amostra de água superficial do

Arroio Previde tributário do Arroio Tega, local 4, usando o consumo de O

mg/L como

medida (aquário 1), campanha amostral inverno/05.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 8,0 8,5 5,0 8,00 3,0 -

20 7,8 8,6 3,2 7,95 4,6 +53,3

1 30/09 0,00900 40 7,5 8,8 3,4 7,91 4,1 +36,6

60 7,3 8,9 3,8 8,22 3,5 +16,6

80 6,9 9,0 5,5 8,50 1,4 -53,3

Nota: a amostra foi coletada em 29/09/05 às 16:45h e levada para autoclavar, sendo o

teste realizado no dia seguinte. Coleta apenas de água e teste realizado em conjunto com

postura de moluscos (Marina). A quantidade de extrato de carne corresponde a 150% de

0,006 g/L.

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

Pré-Tratamento:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min, teste realizado no dia seguinte a coleta.

108

Teste de toxicidade com pré-tratamento esterilizado da amostra de água superficial do

arroio tributário da Represa São Paulo que desemboca no Arroio Dal Bó – tributário do

Arroio Tega, local 3, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 1), campanha

amostral inverno/05.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

Inicial

inicial

Final

final

PCO % de

Inibição

C 8,0 8,50 5,0 8,00 3,0 -

20 7,4 8,20 3,4 8,00 3,0 0

1 27/10 0,01200 40 7,0 8,50 1,8 7,92 5,2 +73,3

60 6,3 8,70 1,0 7,92 5,3 +76,6

80 5,6 8,80 0,8 8,14 4,8 +60,0

Nota: a amostra foi coletada em 13/10/05 às 17:30h e levada para autoclavar, após a

amostra foi congelada a -4ºC. A quantidade de extrato de carne corresponde a 200% de

0,006 g/L.

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

Pré-Tratamento:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min, teste realizado no mesmo dia da coleta.

109

Teste de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio

Previde tributário do Arroio Tega, local 4, usando o consumo de O

mg/L como medida

(aquário 1), campanha amostral inverno/05.

Nota: a amostra foi coletada em 13/10/05 às 17:30h e levada para autoclavar. A amostra

foi congelada a -4ºC, sendo o realizado o teste em 27/10/05. Coleta apenas de água e

teste realizado em conjunto com postura de moluscos (Marina). A quantidade de extrato

de carne corresponde a 200% de 0,006 g/L.

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, teste realizado

no dia seguinte.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a

aeração e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 7,7 4,7 3,0 -

20 8,0 4,1 3,9 +30,0

1 27/10 0,01200 40 8,3 3,9 4,4 +46,0

60 8,6 4,4 4,2 +40,0

80 9,0 6,3 2,6 -13,3

C 7,7 4,7 3,0 -

20 7,5 3,4 4,0 +33,3

2 27/10 0,01200 40 7,2 2,6 4,5 +50,0

60 6,9 2,1 4,7 +56,6

80 6,7 1,4 5,2 +73,3

C 7,7 4,7 3,0 -

20 7,5 1,8 5,6 +86,6

3 27/10 0,01200 40 7,2 1,1 6,0 +100,0

60 7,0 0,4 6,6 +100,0

80 6,9 0,4 6,4 +100,0

110

Teste de toxicidade com 3 pré-tratamentos da amostra de água superficial do afluente da

Represa São Miguel do Complexo Dal Bó, que desemboca posteriormente no Arroio Dal

Bó tributário do Arroio Tega, local 5 – controle, usando o consumo de O

mg/L como

medida (aquário 1), campanha amostral inverno/05.

Nota:

a amostra foi coletada em 03/11/05 às 15h e levada para autoclavar. A amostra foi

congelada a -4ºC, sendo o realizado o teste em 09/11/05. A quantidade de extrato de

carne corresponde a 200% de 0,006 g/L.

Referência:

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

R - Não Aerado: sem pré-tratamento.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, teste realizado

no dia seguinte.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a

aeração e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 8,0 6,5 1,5 -

20 9,2 6,4 2,8 +86,6

R 09/11 0,01200 40 8,8 6,8 2,0 +33,3

60 8,5 7,2 1,3 -13,3

80 8,2 7,8 0,4 -73,3

C 8,0 6,5 1,5 -

20 8,1 6,6 1,5 0

1 09/11 0,01200 40 7,0 7,1 0,1 -93,3

60 6,7 5,8 0,9 -40,0

80 6,2 5,7 0,5 -66,6

C 8,0 6,5 1,5 -

20 7,9 0,3 7,6 +100,0

2 10/11 0,01200 40 8,0 7,6 0,4 -73,3

60 8,1 1,1 7,0 +100,0

80 8,2 0,3 7,9 +100,0

C 8,0 6,5 1,5 -

20 8,0 0,8 7,2 +100,0

3 10/11 0,01200 40 8,1 0,3 7,8 +100,0

60 8,2 0,3 7,9 +100,0

80 8,3 1,6 6,7 +100,0

111

Testes de toxicidade com 4 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio

Tega, local 1, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 1), campanha

amostral verão/06.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 6,8 0,4 6,4 -

20 6,8 0,3 6,5 1,6

R 02/02 0,01200 40 6,3 0,2 6,1 -4,7

60 6,0 0,2 5,8 -9,4

80 5,4 0,1 5,3 -17,2

C 6,9 0,4 6,5 -

20 6,4 0,3 6,1 -6,2

1 02/02 0,01200 40 5,5 0,2 5,3 -18,5

60 4,7 0,2 4,5 -30,8

80 4,1 0,2 3,9 -40,0

C 7,0 1,1 5,9 -

20 6,8 0,8 6,0 1,7

2 07/02 0,02000 40 6,6 0,5 5,9 0

60 6,6 0,3 6,3 6,3

80 6,4 0,2 6,2 5,1

C 7,0 1,1 5,9 -

20 7,1 1,3 5,8 -1,7

3 07/02 0,02000 40 6,9 0,8 6,1 3,4

60 6,8 0,6 6,2 5,1

80 6,8 0,3 6,5 10,2

Nota:

A quantidade de extrato de carne corresponde de 200% (R e 1) a 166% (2 e 3) de

0,006 g/L.

Referência:

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min no mesmo dia da coleta, teste realizado

no dia seguinte.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração

e espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a

aeração e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

112

Testes de toxicidade com 4 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio

Tega, local 2, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 2), campanha

amostral verão/06.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 7,7 2,9 4,8 -

20 7,1 2,0 5,1 6,2

1 14/02 0,01200 40 6,1 0,4 5,7 18,8

60 5,0 1,2 3,8 -20,8

80 3,7 2,5 1,2 -75,0

C 7,6 2,8 4,8 -

20 7,7 1,8 5,9 22,9

2 19/02 0,01200 40 7,5 0,8 6,7 39,6

60 7,4 0,2 7,2 50,0

80 7,2 0,2 7,0 45,8

C 7,6 2,8 4,8 -

20 7,5 1,0 6,5 35,4

3 19/02 0,01200 40 7,3 0,2 7,1 47,9

60 7,1 0,2 6,9 43,8

80 6,9 0,2 6,7 39,6

Nota: a quantidade de extrato de carne corresponde a 120% o valor diário (0,005 g/L).

Referência:

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min, teste realizado no mesmo dia da coleta.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a

aeração e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

113

Testes de toxicidade com 4 pré-tratamentos da amostra de água superficial do Arroio

Previde, tributário do Arroio Tega, local 4, usando o consumo de O

mg/L como medida

(aquário 2), campanha amostral verão/06.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 8,0 3,4 4,6 -

20 7,4 1,2 6,2 34,8

1 04/03 0,01200 40 7,1 0,2 6,9 50,0

60 6,5 0,2 6,3 37,0

80 6,0 0,1 5,9 28,3

C 7,6 2,5 5,1 -

20 7,5 1,9 2,6 -49,0

2 08/03 0,01200 40 7,4 1,3 6,1 19,6

60 7,4 1,5 5,9 15,7

80 7,4 6,2 1,2 -76,5

C 7,6 2,5 5,1 -

20 7,5 1,4 6,1 19,6

3 08/03 0,01200 40 7,4 0,9 6,5 27,4

60 7,3 0,4 6,9 35,3

80 7,2 0,2 7,0 37,2

Nota: a quantidade de extrato de carne corresponde a 120% o valor diário (0,005 g/L).

Referência:

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min, teste realizado no mesmo dia da coleta.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a

aeração e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

114

Testes de toxicidade com 4 pré-tratamentos da amostra de água superficial do afluente

da Represa São Miguel do Complexo Dal Bó, que desemboca posteriormente no Arroio

Dal Bó tributário do Arroio Tega, local 5 – controle, usando o consumo de O

mg/L como

medida (aquário 2), campanha amostral verão/06.

PT Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial

final

PCO % de

Inibição

C 8,0 3,4 4,6 -

20 7,4 2,9 4,5 -2,2

1 04/03 0,01200 40 6,7 2,0 4,7 2,2

60 6,4 1,3 5,1 10,9

80 5,9 1,0 4,9 6,5

C 7,4 2,0 5,4 -

20 7,3 2,4 4,9 -9,2

2 09/03 0,01200 40 7,3 0,5 6,8 25,9

60 7,3 0,2 7,1 31,5

80 7,2 0,2 7,0 29,6

C 7,4 2,0 5,4 -

20 7,3 1,4 5,9 9,2

3 09/03 0,01200 40 7,3 0,5 6,8 25,9

60 7,2 0,2 7,0 29,6

80 7,1 0,2 6,9 27,8

Nota: a quantidade de extrato de carne corresponde a 120% o valor diário (0,005 g/L).

Referência:

R - Não Aerado: feito no mesmo dia da coleta.

Pré-Tratamentos:

1- Esterilizado: autoclavado a 120ºC por 15 min, teste realizado no mesmo dia da coleta.

2- Aerado Decantado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a aeração e

espera-se decantar em torno de 30 min.

3- Aerado Homogeneizado: aerado por 5 dias, a T ambiente, no escuro, desliga-se a

aeração e agita-se manualmente a amostra por uns 5 min.

115

APÊNDICE 3

Testes de Assimilação com as amostras de sedimento superficial da BH do Arroio

Tega, nas duas campanhas amostrais (2º semestre/05 e 1º semestre/06)

116

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do Arroio Tega, local 1, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral

inverno/05.

Data Abs Cresc. Controle e

C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

final

PPO % de

Inibição

C 8,1 9,50 14,8 9,73 6,2 9,36 8,6 -

20 8,2 9,30 6,4 9,11 3,5 9,05 2,9 -66,3

16/06 0,123 4º dia 40 8,3 9,08 1,7 8,63 1,2 8,73 0,5 -94,2

60 8,3 8,88 1,5 8,41 0,5 8,50 1,0 -88,4

80 8,3 8,75 1,2 8,18 0,3 8,32 0,9 -89,5

Nota: coleta em 08/06/05 das 09h:15min às 09h:30min, colocado para secar às 12h:40min

em estufa a 60ºC em beckers de 40mL. Retirado às 14h:30min de 16/06/05.

PPO = Potencial de Produção de Oxigênio

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do Arroio Tega, local 2, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral

inverno/05.

Data Abs Cresc. Controle e

C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

final

PPO % de

Inibição

C 8,3 9,20 14,6 10,10 7,6 9,16 7,0 -

20 9,0 8,70 12,5 9,28 0,3 8,24 12,2 74,3

03/08 0,159 3º dia 40 9,5 8,48 5,0 8,29 0,2 7,85 4,8 -31,4

60 8,9 8,39 0,1 7,46 0,1 7,99 0 -100

80 8,4 8,33 0,1 7,28 0,1 7,33 0 -100

Nota: coleta em 06/07/05 das 11h:15min às 11h:30min, colocado para secar às 16h em

estufa a 60ºC em beckers de 250 e 500mL. Retirado às 15h de 20/07/05. A amostra foi

centrifugada a 5000 rpm/15 min.

PPO = Potencial de Produção de Oxigênio

117

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do arroio tributário da Represa São Paulo que desemboca no Arroio Dal Bó – tributário do

Arroio Tega, local 3, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral

inverno/05.

Data Abs Crescimento Controle e

C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

PPO % de

Inibição

C 8,1 10,3 7,0 3,3 -

20 8,2 7,7 4,9 2,8 -15,2

03/11 0,161 3º dia 40 8,2 4,8 2,8 2,0 -39,4

60 8,1 1,6 0,4 1,2 -63,6

80 8,0 0,3 0,2 0,1 -97,0

Nota: coleta em 03/11/05 das 15h às 15h:30min com peneira de 125 µm, colocado para

secar às 19:40h em estufa a 60ºC em beckers de 250mL. Retirado às 10h de 14/11/05. A

amostra foi centrifugada a 5000 rpm/15 min em temperatura ambiente. Quantidade de

extrato de carne equivalente a 1,5% de 0,6g/L.

PPO = Potencial de Produção de Oxigênio

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do afluente da Represa São Miguel do Complexo Dal Bó, que desemboca posteriormente

no Arroio Dal Bó tributário do Arroio Tega, local 5 – controle, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral inverno/05.

Data Abs Crescimento Controle e

C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

PPO % de

Inibição

C 7,7 16,8 7,0 9,8 -

20 7,4 10,6 5,3 5,3 -45,9

27/02/06 0,070 4º dia 40 7,0 5,7 3,4 2,3 -76,5

60 6,8 2,9 1,4 1,5 -84,7

80 6,4 1,0 0,4 0,6 -93,9

Nota: coleta em 03/11/05 às 15h com peneira de 125 µm, colocado para secar às 19:40h

em 03/11/05 estufa a 60ºC em beckers de 250 e 500mL. Retirado às 10h de 14/11/05. A

amostra foi centrifugada em um liofilizador sem o funcionamento da bomba de vácuo/60

min, pois a centrífuga estava estragada. Não se sabe de quanto é a rotação.

PPO = Potencial de Produção de Oxigênio

118

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do Arroio Tega, local 1, usando a produção de O

mg/L como medida, campanha amostral

verão/06.

Data Abs Crescimento Controle e

C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

PPO % de

Inibição

C 7,7 16,8 7,0 9,8 -

20 6,9 13,4 4,4 9,0 -8,2

27/02 0,070 4º dia 40 6,1 7,0 1,4 5,6 -42,8

60 5,6 5,6 0,3 5,3 -45,9

80 4,7 1,3 0,2 0,9 -90,8

Nota: coleta em 02/02/06 às 10h, colocado para secar às 10h em 03/02/06 estufa a 60ºC

em beckers de 250 e 500mL. Retirado às 14h de 22/02/06. A amostra foi centrifugada em

um liofilizador sem o funcionamento da bomba de vácuo/60 min, pois a centrífuga estava

estragada. Não se sabe de quanto é a rotação.

PPO = Potencial de Produção de Oxigênio

119

APÊNDICE 4

Testes de Dissimilação com as amostras de sedimento superficial da BH do Arroio

Tega, nas duas campanhas amostrais (2º semestre/05 e 1º semestre/06)

120

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do Arroio Tega, local 2, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 1),

campanha amostral inverno/05.

Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial pH inicial O

final pH final PCO % de

Inibição

C 8,5 8,12 4,2 7,47 4,3 -

20 8,4 7,67 0,4 7,01 8,0 +86

01/09 0,00900 40 8,2 7,50 0,4 6,91 7,8 +81,4

60 8,1 7,36 0,3 6,83 7,8 +81,4

80 8,0 7,26 0,3 6,75 7,7 +79,1

Nota: Nota: coleta em 06/07/05 das 11h:15min às 11h:30min com a Draga de Eckmann,

colocado para secar às 16h em estufa a 60ºC em beckers de 250mL. Retirado às 15h de

20/07/05. A amostra foi centrifugada a 5000 rpm/15 min a temperatura ambiente.

Quantidade de extrato de carne equivalente a 1,5% de 0,6g/L.

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do arroio tributário da Represa São Paulo que desemboca no Arroio Dal Bó – tributário do

Arroio Tega, local 3, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 1), campanha

amostral inverno/05 .

Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial O

final PCO % de

Inibição

C 8,0 6,5 1,5 -

20 7,8 4,2 3,6 +100,0

10/11 0,00900 40 8,1 4,3 3,8 +100,0

60 8,0 4,0 4,0 +100,0

80 7,9 1,2 6,7 +100,0

Nota:

coleta em 03/11/05 das 15h às 15h:30 min com peneira de 125 µm, colocado para

secar às 19:40h em estufa a 60ºC em beckers de 250mL. Retirado às 10h de 14/11/05. A

amostra foi centrifugada a 5000 rpm/15 min em temperatura ambiente. Quantidade de

extrato de carne equivalente a 1,5 % de 0,6 g/L.

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

121

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do afluente da Represa São Miguel do Complexo Dal Bó, que desemboca posteriormente

no Arroio Dal Bó tributário do Arroio Tega, local 5 – controle, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 2), campanha amostral inverno/05.

Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial O

final PCO % de

Inibição

C 7,8 2,7 5,1 -

20 7,4 1,5 5,9 15,7

27/02/06 0,01200 40 7,0 0,4 6,6 29,4

60 6,5 0,3 6,2 21,6

80 6,0 0,2 5,8 13,7

Nota: coleta em 03/11/05 às 15h, 30 min com peneira de 125 µm, colocado para secar às

19:40h em 03/11/05 estufa a 60ºC em beckers de 250 e 500mL. Retirado às 10h de

14/11/05. A amostra foi centrifugada em um liofilizador sem o funcionamento da bomba de

vácuo/60 min, pois a centrífuga estava estragada. Não se sabe de quanto é a rotação.

Quantidade de extrato de carne equivalente a 2,4% de 0,5g/L.

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

Teste de toxicidade com elutriato (EPA, 1991), preparado a partir do sedimento superficial

do Arroio Tega, local 1, usando o consumo de O

mg/L como medida (aquário 2),

campanha amostral verão/06.

Data Extrato de

Carne (g/L)

Controle e

C (%)

inicial O

final PCO % de

Inibição

C 7,8 2,7 5,1 -

20 6,7 0,2 6,5 27,4

27/02/06 0,01200 40 5,5 0,2 5,3 3,9

60 4,4 0,2 4,2 -17,6

80 3,5 0,2 3,3 -35,3

Nota: coleta em 02/02/06 às 10 h, colocado para secar às 10h:40min em 03/02/06 estufa a

60ºC em beckers de 250 e 500mL. Retirado às 14h de 22/02/06. A amostra foi centrifugada

em um liofilizador sem o funcionamento da bomba de vácuo/60min, pois a centrífuga

estava estragada. Não se sabe de quanto é a rotação. Quantidade de extrato de carne

equivalente a 2,4% de 0,5g/L.

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

122

APÊNDICE 5

Outros Testes com as amostras de água superficial da BH do Arroio Tega, nas duas

campanhas amostrais (2º semestre/05 e 1º semestre/06)

123

Teste A

Testes A com água superficial do Arroio Previde, local 4, sem a solução

nutritiva forte e com a solução nutritiva forte, usando a produção de O

mg/L como

medida, campanha amostral inverno/05.

Data Abs Cresc. Controle

e C (%)

inicial

final

claro

final

escuro

PPO % de

Inibição

C 8,2 14,9 7,2 7,7 -

20 7,8 15,7 6,8 8,9 +15,6

S/SNF 18/10 0,139 3º dia 40 7,7 15,0 6,1 8,9 +15,6

60 7,6 14,9 5,6 9,3 +20,8

80 7,4 14,2 5,2 9,0 +16,9

C 8,2 14,9 7,2 7,7 -

20 8,2 13,8 7,0 6,8 -11,7

C/SNF 18/10 0,139 3º dia 40 8,3 13,9 6,9 7,0 -9,1

60 8,2 13,4 6,5 6,9 -10,4

80 8,3 12,8 6,3 6,5 -15,6

Nota: coleta em 13/10/05 às 17h:30min, somente de água superficial. A

amostra foi congelada a -4ºC.

S/SNF = sem solução nutritiva forte nas diluições, apenas no controle. A

amostra foi aerada por 5 dias e decantada por 30 min antes do teste.

C/SNF = com solução nutritiva forte nas diluições e controle. A amostra foi

aerada por 5 dias e decantada por 30 min antes do teste.

PPO = Potencial de Produção de Oxigênio

124

Teste D

DBO

com a água superficial do Arroio Previde, local 4, usando o consumo de

mg/L como medida, campanha amostral inverno/05 (14/10/05).

Controle e C (%) O2 inicial O2 final escuro PCO

C 7,1 5,2 1,9

10x 7,2 0,2 7,0

20x 7,2 0,2 7,0

50x 7,1 0,2 6,9

DBO

= água de diluição aerada por 24h (água reconstituída). Diluições: 10x

(50 mL água do Arroio Previde + 450 mL água reconstituída); 20x (25 mL água do

Arroio Previde + 475 mL água reconstituída) e 50x (10 mL água do Arroio Previde +

490 mL água reconstituída). Duração: 14/10/05 a 19/10/05.

PCO = Potencial de Consumo de Oxigênio

Testes D com diferentes concentrações de extrato de carne granulado, com a

água de dissimilação do aquário 1.

Data C (%) C (g/1000mL) O

Inicial O

Final PCO

2,5 0,015 9,0 0,3 8,7

5 0,030 9,0 0,4 8,6

10 0,060 9,1 0,2 8,8

11/08/05 15 0,090 9,0 0,2 8,8

20 0,120 9,0 0,2 8,8

40 0,240 9,0 0,2 8,8

60 0,360 9,1 0,2 8,9

80 0,480 9,1 0,2 8,9

Nota: o extrato de carne granulado foi pesado em balança de 3 dígitos.

Testes D com diferentes concentrações de extrato de carne granulado, com a

água de dissimilação do aquário 1.

Data C (%) C (g/500mL) O

Inicial O

Final PCO

1 0,00300 8,3 2,8 5,5

2,5 0,00700 8,4 1,2 7,2

5 0,01500 8,6 0,4 8,2

10 0,03000 8,7 0,3 8,4

18/08/05 15 0,04500 8,8 0,4 8,4

20 0,06000 8,8 0,2 8,6

30 0,09000 8,8 0,3 8,5

40 0,12000 9,0 0,2 8,8

50 0,15000 8,9 0,2 8,7

125

60 0,18000 8,8 0,2 8,6

Nota: o extrato de carne granulado foi pesado em balança de 5 dígitos.

Testes D com diferentes concentrações de extrato de carne granulado, com a

água de dissimilação do aquário 1.

Data C (%) C (g/500mL) O

Inicial O

Final PCO

0,2 0,00060 9,5 6,6 2,9

0,4 0,00120 9,5 6,2 3,3

0,6 0,00180 9,8 5,5 4,3

25/08/05 0,8 0,00240 9,7 5,4 4,3

1,0 0,00300 9,6 5,1 4,5

1,5 0,00450 9,6 4,6 5,0

2,0 0,00600 9,3 3,6 5,7

Nota: a peptona bacteriológica foi pesada em balança de 5 dígitos.

Testes D com diferentes concentrações de extrato de carne granulado, com a

água de dissimilação do aquário 1.

Data C (%) C (g/500mL) O

Inicial O

Final PCO

0,2 0,00060 8,0 7,1 0,8

0,4 0,00120 8,0 6,5 1,5

0,6 0,00180 8,0 6,1 2,0

20/10/05 0,8 0,00240 8,0 5,5 2,6

1,0 0,00300 8,0 5,3 2,7

1,5 0,00450 8,0 5,0 3,0

2,0 0,00600 8,0 4,3 3,7

Nota: a peptona bacteriológica foi pesada em balança de 5 dígitos.

Testes D com diferentes concentrações de extrato de carne granulado, com a

água de dissimilação do aquário 1.

Data C (%) C (g/500mL) O

Inicial O

Final PCO

0,2 0,00060 8,1 7,4 0,7

0,4 0,00120 8,2 7,0 1,2

0,6 0,00180 8,3 6,3 2,0

04/11/05 0,8 0,00240 8,4 6,0 2,4

1,0 0,00300 8,4 5,6 2,8

1,5 0,00450 8,4 5,0 3,4

2,0 0,00600 8,4 4,6 3,8

126

Nota: o extrato de carne granulado foi pesado em balança de 5 dígitos.

Testes D com diferentes concentrações de extrato de carne granulado, com a

água de dissimilação do aquário 2.

Data C (%) C (g/L) O

Inicial O

Final PCO

20 0,1 8,8 0,5 8,3

09/08/05 40 0,2 8,9 0,4 8,5

60 0,3 8,9 0,5 8,4

80 0,4 8,9 0,6 8,3

Nota:

a peptona bacteriológica foi pesada em balança de 3 dígitos.

Testes D com diferentes concentrações de extrato de carne granulado, com a

água de dissimilação do aquário 2.

Data C (%) C (g/500mL) O

Inicial O

Final PCO

0,2 0,00050 8,3 6,2 2,1

0,4 0,00100 8,2 6,9 1,3

0,6 0,00150 8,2 6,7 1,5

25/08/05 0,8 0,00200 8,2 6,6 1,6

1,0 0,00250 9,4 6,4 3,0

1,5 0,00375 8,8 6,9 1,9

2,0 0,00500 9,2 6,7 2,5

Nota:

a peptona bacteriológica foi pesada em balança de 5 dígitos.

127

APÊNDICE 6

Dados estatísticos do Teste Qui-Quadrado (Teste Exato de Fisher) com os Testes A

(água e sedimento superficial) e D (água superficial) das amostras da BH do Arroio

Tega, amostragens inverno/05 e verão/06

128

Dados do Teste A com a água superficial - Teste Qui-Quadrado (Teste Exato de

Fisher)

Crosstabs: Concentração dentro de Prétrat =1 (dec) e Época =1 (i-inverno)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que deve haver diferença significativa entre as

concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio após

24 horas (p=0,037). Os resíduos ajustados indicam que a proporção de inibição da

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

0 1 0 0 1

.0% 20.0% .0% .0% 5.0%

-.6 1.8 -.6 -.6

2 4 5 5 16

40.0% 80.0% 100.0% 100.0% 80.0%

-2.6 .0 1.3 1.3

3 0 0 0 3

60.0% .0% .0% .0% 15.0%

3.3 -1.1 -1.1 -1.1

5 5 5 5 20

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Adjusted Residual

Count

% within CONCENT

Adjusted Residual

Count

% within CONCENT

Adjusted Residual

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

13.500

6 .036 .037

.032 .042

12.781 6 .047 .037

.032 .042

9.357 .037

.032 .042

3.200

1 .074 .118

.110 .127 .058

.052 .064

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

12 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 1156607048.

The standardized statistic is -1.789.

129

produção de oxigênio após 24 horas na concentração 20 é significativamente menor

do que nas outras concentrações (p=0,005). Através dos resíduos ajustados

podemos verificar que a inibição e a aceleração estão mais associadas à

concentração 20.

Crosstabs: Concentração dentro de Prétrat =1 (dec) e Época =2 (v-verão)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=0,344).

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 1

25.0% 6.3%

1 2 3 3 9

25.0% 50.0% 75.0% 75.0% 56.3%

3 2 1 6

75.0% 50.0% 25.0% 37.5%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

7.556

6 .273 .344

.332 .356

8.630 6 .195 .344

.332 .356

7.094 .344

.332 .356

5.828

1 .016 .021

.017 .024 .010

.008 .013

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

12 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 1634676757.

The standardized statistic is -2.414.

130

Crosstabs: Concentração dentro de Prétrat =2 (est) e Época =1 (i-inverno)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=0,919).

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 2 2 2 7

20.0% 40.0% 40.0% 50.0% 36.8%

4 3 3 2 12

80.0% 60.0% 60.0% 50.0% 63.2%

5 5 5 4 19

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

.950

3 .813 .919

.912 .926

.999 3 .802 .919

.912 .926

1.233 .919

.912 .926

.758

1 .384 .407

.394 .420 .258

.247 .270

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is 1.47.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 846668601.

The standardized statistic is -.871.

131

Crosstabs: Concentração dentro de Prétrat =2 (est) e Época =2 (v-verão)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=0,250).

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 3 4 3 11

25.0% 75.0% 100.0% 75.0% 68.8%

3 1 1 5

75.0% 25.0% 25.0% 31.3%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

5.527

3 .137 .250

.238 .261

6.379 3 .095 .250

.238 .261

4.774 .250

.238 .261

2.673

1 .102 .163

.153 .172 .083

.076 .090

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is 1.25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 391318613.

The standardized statistic is -1.635.

132

Crosstabs: Concentração dentro de Prétrat =3 (hom) e Época =1 (i-inverno)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

4 4 4 4 16

80.0% 80.0% 80.0% 80.0% 80.0%

1 1 1 1 4

20.0% 20.0% 20.0% 20.0% 20.0%

5 5 5 5 20

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

.000

3 1.000 1.000

1.000 1.000

.000 3 1.000 1.000

1.000 1.000

.638 1.000

1.000 1.000

.000

1 1.000 1.000

1.000 1.000 .604

.591 .616

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is 1.00.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 263739791.

The standardized statistic is .000.

133

Crosstabs: Concentração dentro de Prétrat =3 (hom) e Época =2 (v-verão)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=0,644).

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

2 2 3 4 11

50.0% 50.0% 75.0% 100.0% 68.8%

2 2 1 5

50.0% 50.0% 25.0% 31.3%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

3.200

3 .362 .644

.632 .657

4.286 3 .232 .644

.632 .657

3.152 .644

.632 .657

2.673

1 .102 .160

.151 .169 .082

.075 .089

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is 1.25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 1110856691.

The standardized statistic is -1.635.

134

Crosstabs: Concentração dentro de Prétrat =4 (st) e Época =1 (i-inverno)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Crosstabs: Concentração dentro de Prétrat =4 (st) e Época =2 (v-verão)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 1

20.0% 5.0%

2 3 3 3 11

40.0% 60.0% 60.0% 60.0% 55.0%

2 2 2 2 8

40.0% 40.0% 40.0% 40.0% 40.0%

5 5 5 5 20

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

3.273

6 .774 1.000

1.000 1.000

3.065 6 .801 1.000

1.000 1.000

3.458 1.000

1.000 1.000

.261

1 .609 .740

.729 .751 .372

.360 .385

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

12 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 1831435319.

The standardized statistic is .511.

135

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Dados do Teste A com o sedimento superficial - Teste Qui-Quadrado (Teste Exato

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

3 3 3 4 13

75.0% 75.0% 75.0% 100.0% 81.3%

1 1 1 3

25.0% 25.0% 25.0% 18.8%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

1.231

3 .746 1.000

1.000 1.000

1.946 3 .584 1.000

1.000 1.000

1.697 1.000

1.000 1.000

.692

1 .405 .600

.587 .612 .307

.295 .318

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interva

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interva

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .75.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 1810951851.

The standardized statistic is -.832.

136

de Fisher)

Crosstabs: Concentração dentro de Época =1 (Inverno)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Crosstabs: Concentração dentro de Época =2 (Verão)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

2 3 3 3 11

66.7% 100.0% 100.0% 100.0% 91.7%

1 1

33.3% 8.3%

3 3 3 3 12

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

3.273

3 .351 1.000

1.000 1.000

3.065 3 .382 1.000

1.000 1.000

3.065 1.000

1.000 1.000

1.800

1 .180 .505

.492 .518 .257

.246 .268

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 2000000.

The standardized statistic is -1.342.

137

Teste Qui-Quadrado não realizado, visto que só temos o código de inibição

(código=1), ou seja, no verão, em qualquer uma das quatro concentrações, só

ocorreu inibição.

Crosstabs: Concentração (Geral: misturadas as estações verão e inverno)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

2 2 2 2 8

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

2 2 2 2 8

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

1CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

Pearson Chi-Square

N of Valid Cases

Value

No statistics are computed because CÓDINIB is a

constant.

138

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição da produção de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Dados do Teste D com a água superficial - Teste Qui-Quadrado (Teste Exato de

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

4 5 5 5 19

80.0% 100.0% 100.0% 100.0% 95.0%

1 1

20.0% 5.0%

5 5 5 5 20

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

3.158

3 .368 1.000

1.000 1.000

2.937 3 .402 1.000

1.000 1.000

2.958 1.000

1.000 1.000

1.800

1 .180 .498

.485 .510 .251

.240 .262

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 624387341.

The standardized statistic is -1.342.

139

Fisher)

Crosstabs: Concentração dentro de Pretrat =1 (dec) e Epoca =1 (i-inverno)

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição do consumo de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Crosstabs: Concentração dentro de Pretrat =1 (dec) e Epoca =2 (v-verão)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 1

25.0% 6.3%

4 3 4 4 15

100.0% 75.0% 100.0% 100.0% 93.8%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

3.200

3 .362 1.000

1.000 1.000

2.983 3 .394 1.000

1.000 1.000

2.998 1.000

1.000 1.000

.200

1 .655 1.000

1.000 1.000 .504

.491 .517

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 2000000.

The standardized statistic is .447.

140

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição do consumo de oxigênio

após 24 horas (p=0,546).

Crosstabs: Concentração dentro de Pretrat =2 (est) e Epoca =1 (i-inverno)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 1

25.0% 6.3%

2 1 3

50.0% 25.0% 18.8%

2 3 4 3 12

50.0% 75.0% 100.0% 75.0% 75.0%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

7.333

6 .291 .546

.533 .559

7.951 6 .242 .546

.533 .559

6.287 .546

.533 .559

.862

1 .353 .496

.483 .509 .246

.235 .257

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interva

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interva

Monte Carlo Sig. (1-sided)

12 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 624387341.

The standardized statistic is .928.

141

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição do consumo de oxigênio

após 24 horas (p=0,379).

Crosstabs: Concentração dentro de Pretrat =2 (est) e Epoca =2 (v-verão)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

2 2

33.3% 8.3%

2 3 3 5 13

33.3% 50.0% 50.0% 83.3% 54.2%

2 3 3 1 9

33.3% 50.0% 50.0% 16.7% 37.5%

6 6 6 6 24

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

8.684

6 .192 .218

.208 .229

8.310 6 .216 .304

.292 .316

6.140 .379

.367 .392

.193

1 .661 .773

.762 .784 .382

.370 .395

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interva

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interva

Monte Carlo Sig. (1-sided)

12 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .50.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 957002199.

The standardized statistic is .439.

142

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição do consumo de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Crosstabs: Concentração dentro de Pretrat =3 (hom) e Epoca =1 (i-inverno)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

2 1 2 2 7

50.0% 25.0% 50.0% 50.0% 43.8%

2 3 2 2 9

50.0% 75.0% 50.0% 50.0% 56.3%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

.762

3 .859 1.000

1.000 1.000

.796 3 .850 1.000

1.000 1.000

1.087 1.000

1.000 1.000

.048

1 .827 1.000

1.000 1.000 .506

.493 .519

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is 1.75.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 92208573.

The standardized statistic is -.218.

143

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição do consumo de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Crosstabs: Concentração dentro de Pretrat =3 (hom) e Epoca =2 (v-verão)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 1 2

25.0% 25.0% 12.5%

1 1 1 3

25.0% 25.0% 25.0% 18.8%

2 3 3 3 11

50.0% 75.0% 75.0% 75.0% 68.8%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

3.273

6 .774 1.000

1.000 1.000

4.791 6 .571 1.000

1.000 1.000

3.894 1.000

1.000 1.000

1.157

1 .282 .382

.369 .394 .186

.176 .196

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

12 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .50.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 1993510611.

The standardized statistic is 1.076.

144

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição do consumo de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Crosstabs: Concentração dentro de Pretrat =4 (st) e Epoca =1 (i-inverno)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 1

25.0% 6.3%

3 4 4 4 15

75.0% 100.0% 100.0% 100.0% 93.8%

4 4 4 4 16

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

3.200

3 .362 1.000

1.000 1.000

2.983 3 .394 1.000

1.000 1.000

2.998 1.000

1.000 1.000

1.800

1 .180 .496

.483 .509 .250

.239 .261

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 79654295.

The standardized statistic is 1.342.

145

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição do consumo de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

Crosstabs: Concentração dentro de Pretrat =4 (st) e Epoca =2 (v-verão)

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 1 2 2 6

33.3% 33.3% 66.7% 66.7% 50.0%

2 2 1 1 6

66.7% 66.7% 33.3% 33.3% 50.0%

3 3 3 3 12

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

1.333

3 .721 1.000

1.000 1.000

1.359 3 .715 1.000

1.000 1.000

1.604 1.000

1.000 1.000

.978

1 .323 .474

.461 .486 .232

.221 .243

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interva

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

9% Confidence Interva

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is 1.50.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 475497203.

The standardized statistic is -.989.

146

Através do Teste Qui-Quadrado, mais especificamente através do Teste

Exato de Fisher, podemos concluir que não deve haver diferença significativa entre

as concentrações em relação as proporções de inibição do consumo de oxigênio

após 24 horas (p=1,000).

CÓDINIB * CONCENT Crosstabulation

1 1 1 3

100.0% 100.0% 100.0% 75.0%

1 1

100.0% 25.0%

1 1 1 1 4

100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

Count

% within CONCENT

CÓDINIB

Total

20 40 60 80

CONCENT

Total

Chi-Square Tests

4.000

3 .261 1.000

1.000 1.000

4.499 3 .212 1.000

1.000 1.000

3.667 1.000

1.000 1.000

1.800

1 .180 .499

.486 .511 .245

.234 .256

Pearson Chi-Square

Likelihood Ratio

Fisher's Exact Test

Linear-by-Linear

Association

N of Valid Cases

Value df

Asymp.

Sig.

(2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (2-sided)

Sig.

Lower

Bound

Upper

Bound

99% Confidence Interval

Monte Carlo Sig. (1-sided)

8 cells (100.0%) have expected count less than 5. The minimum expected count is .25.

Based on 10000 sampled tables with starting seed 726961337.

The standardized statistic is -1.342.

147

APÊNDICE 7

Estatística descritiva com os dados dos Testes A com as amostras de água

superficial e sedimento da BH do Arroio Tega, amostragens inverno/05 e verão/06

Estatística descritiva realizada com os dados originais, não transformados,

dos Testes A com água superficial durante o estudo.

148

Level of -----------INIBICAO----------

PRE_TRAT N Mean Std Dev

1 25 21.3280000 20.7716457

2 18 43.8555556 34.3894516

3 27 31.8222222 27.3307285

4 24 42.9333333 27.6970673

Level of -----------INIBICAO----------

CONCENT N Mean Std Dev

20 16 21.7187500 13.9905310

40 23 26.3521739 22.1828736

60 27 35.5000000 29.9266025

80 28 46.4321429 33.4092918

Level of -----------INIBICAO----------

EPOCA N Mean Std Dev

1 50 24.3380000 24.1515867

2 44 45.3477273 29.1012306

Level of Level of -----------INIBICAO----------

PRE_TRAT CONCENT N Mean Std Dev

1 20 3 17.8666667 5.7951129

1 40 6 14.6500000 5.6102585

1 60 8 20.9250000 23.1935798

1 80 8 28.0375000 28.5356387

2 20 2 21.8000000 6.2225397

2 40 5 27.1000000 20.9702170

2 60 6 48.0166667 38.3112734

2 80 5 64.4400000 39.9035462

3 20 6 17.2000000 14.8414285

3 40 6 28.0333333 30.2224861

3 60 7 30.9571429 25.1759712

3 80 8 46.3875000 31.3470635

4 20 5 29.4200000 17.7848812

4 40 6 35.7500000 24.3765256

4 60 6 47.7166667 30.6558586

4 80 7 54.6428571 32.6318279

Level of Level of -----------INIBICAO----------

PRE_TRAT EPOCA N Mean Std Dev

1 1 16 13.4375000 6.6878871

149

1 2 9 35.3555556 29.4045962

2 1 7 44.7285714 40.9224761

2 2 11 43.3000000 31.6988328

3 1 16 22.0875000 14.9225054

3 2 11 45.9818182 35.1557909

4 1 11 30.4909091 30.3538945

4 2 13 53.4615385 20.9889470

Level of Level of -----------INIBICAO----------

CONCENT EPOCA N Mean Std Dev

20 1 9 16.2333333 8.9582364

20 2 7 28.7714286 16.7084524

40 1 13 18.0692308 15.8258430

40 2 10 37.1200000 25.3177935

60 1 14 24.7428571 28.7515274

60 2 13 47.0846154 27.6503721

80 1 14 34.9642857 29.7457588

80 2 14 57.9000000 33.9139409

Level of Level of Level of -----------INIBICAO----------

PRE_TRAT CONCENT EPOCA N Mean Std Dev

1 20 1 2 17.4500000 8.1317280

1 20 2 1 18.7000000 .

1 40 1 4 12.5500000 5.7250910

1 40 2 2 18.8500000 2.4748737

1 60 1 5 11.1200000 7.1187780

1 60 2 3 37.2666667 33.7716350

1 80 1 5 14.8600000 7.6064446

1 80 2 3 50.0000000 39.7068004

2 20 1 1 26.2000000 .

2 20 2 1 17.4000000 .

2 40 1 2 31.1000000 33.5168614

2 40 2 3 24.4333333 17.0629228

2 60 1 2 55.5500000 62.8617928

2 60 2 4 44.2500000 32.7460430

2 80 1 2 56.8000000 61.0940259

2 80 2 3 69.5333333 34.9437167

3 20 1 4 12.9500000 8.6044562

3 20 2 2 25.7000000 25.7386868

3 40 1 4 17.0750000 9.3225086

3 40 2 2 49.9500000 53.5279833

3 60 1 4 19.7500000 9.8069703

3 60 2 3 45.9000000 34.2211923

3 80 1 4 38.5750000 18.4857377

3 80 2 4 54.2000000 42.2887692

150

4 20 1 2 16.6000000 14.4249783

4 20 2 3 37.9666667 15.9575478

4 40 1 3 18.0666667 22.9961591

4 40 2 3 53.4333333 4.3143172

4 60 1 3 33.5666667 39.6500105

4 60 2 3 61.8666667 13.2914760

4 80 1 3 49.1000000 37.9956576

4 80 2 4 58.8000000 33.3685481

Estatística descritiva realizada com os dados originais dos Testes A com

sedimento superficial durante o estudo.

Level of -----------INIBICAO----------

CONCENT N Mean Std Dev

20 4 33.9000000 27.1043662

40 5 56.8600000 27.0682101

60 5 76.5200000 21.5862688

80 5 94.2400000 4.3362426

Level of -----------INIBICAO----------

EPOCA N Mean Std Dev

1 11 71.3636364 30.4909912

2 8 61.0875000 30.1127139

Level of Level of -----------INIBICAO----------

CONCENT EPOCA N Mean Std Dev

20 1 2 40.7500000 36.1331565

20 2 2 27.0500000 26.6579257

40 1 3 55.0000000 34.1830367

40 2 2 59.6500000 23.8294985

60 1 3 84.0000000 18.5946229

60 2 2 65.3000000 27.4357431

80 1 3 95.5000000 5.4083269

80 2 2 92.3500000 2.1920310

Estatística descritiva realizada com os dados transformados dos Testes A

com sedimento superficial durante o estudo.

151

Level of Sum of -----------INIBICAO----------

CONCENT N Weights Mean Std Dev

20 4 0.0043462016 31.8786852 0.85365436

40 5 0.0060895259 57.6894883 0.87064756

60 5 0.0113335691 79.6159909 0.96323817

80 5 0.5187971931 92.9727422 0.97679305

Level of Sum of -----------INIBICAO----------

EPOCA N Weights Mean Std Dev

1 11 0.1153399361 93.0062358 1.27409836

2 8 0.4252265536 91.4779433 1.74795925

Level of Level of Sum of -----------INIBICAO----------

CONCENT EPOCA N Weights Mean Std Dev

20 1 2 0.0015318569 40.7500000 1.00000000

20 2 2 0.0028143447 27.0500000 1.00000000

40 1 3 0.002567438 55.0000000 1.00000000

40 2 2 0.0035220879 59.6500000 1.00000000

60 1 3 0.0086765386 84.0000000 1.00000000

60 2 2 0.0026570305 65.3000000 1.00000000

80 1 3 0.1025641026 95.5000000 1.00000000

80 2 2 0.4162330905 92.3500000 1.00000000

152

APÊNDICE 9

Estatística descritiva com os dados originais dos Testes D com as amostras de água

superficial da BH do Arroio Tega, amostragens inverno/05 e verão/06

Estatística descritiva realizada com os dados originais, não transformados,

dos Testes D com água superficial durante o estudo.

153

Level of -----------INIBICAO----------

PRE_TRAT N Mean Std Dev

1 4 52.0000000 31.0632688

2 20 31.2000000 24.3950599

3 4 6.3500000 3.5294003

4 9 16.0111111 21.9606719

Level of -----------INIBICAO----------

CONCENT N Mean Std Dev

20 9 10.6222222 14.7660741

40 7 32.5000000 35.6927163

60 9 20.3888889 10.9168957

80 12 41.2416667 26.8805931

Level of -----------INIBICAO----------

EPOCA N Mean Std Dev

1 23 27.8391304 26.3599169

2 14 25.8000000 25.4496789

Level of Level of -----------INIBICAO----------

PRE_TRAT CONCENT N Mean Std Dev

1 20 2 29.1000000 28.1428499

1 40 1 73.3000000 .

1 80 1 76.5000000 .

2 20 4 6.8250000 3.7933055

2 40 4 36.1750000 38.2318693

2 60 5 28.2400000 7.9024047

2 80 7 44.4000000 21.9477410

3 20 2 3.8500000 3.0405592

3 60 1 10.1000000 .

3 80 1 7.6000000 .

4 20 1 2.4000000 .

4 40 2 4.7500000 0.0707107

4 60 3 10.7333333 2.2233608

4 80 3 33.3333333 34.8256132

Level of Level of -----------INIBICAO----------

PRE_TRAT EPOCA N Mean Std Dev

1 1 1 73.3000000 .

154

1 2 3 44.9000000 33.8368143

2 1 13 33.1153846 25.0467512

2 2 7 27.6428571 24.6404719

3 1 3 7.9000000 2.0663978

3 2 1 1.7000000 .

4 1 6 18.8000000 26.9756928

4 2 3 10.4333333 6.3137416

Level of Level of -----------INIBICAO----------

CONCENT EPOCA N Mean Std Dev

20 1 4 6.8250000 3.7259227

20 2 5 13.6600000 19.9926987

40 1 5 40.8600000 39.7666066

40 2 2 11.6000000 9.7580736

60 1 6 20.4166667 12.0341874

60 2 3 20.3333333 10.7076297

80 1 8 35.7750000 26.0407236

80 2 4 52.1750000 28.7759593

Level of Level of Level of -----------INIBICAO----------

PRE_TRAT CONCENT EPOCA N Mean Std Dev

1 20 2 2 29.1000000 28.1428499

1 40 1 1 73.3000000 .

1 80 2 1 76.5000000 .

2 20 1 2 9.4500000 2.7577164

2 20 2 2 4.2000000 2.8284271

2 40 1 3 42.0666667 44.5448463

2 40 2 1 18.5000000 .

2 60 1 3 29.8666667 9.4854274

2 60 2 2 25.8000000 7.0710678

2 80 1 5 39.1600000 21.1967686

2 80 2 2 57.5000000 24.7487373

3 20 1 1 6.0000000 .

3 20 2 1 1.7000000 .

3 60 1 1 10.1000000 .

3 80 1 1 7.6000000 .

4 20 1 1 2.4000000 .

4 40 1 1 4.8000000 .

4 40 2 1 4.7000000 .

4 60 1 2 11.4000000 2.6870058

4 60 2 1 9.4000000 .

4 80 1 2 41.4000000 45.1134126

4 80 2 1 17.2000000 .

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