( PDF ) Densitometria óssea em mandíbula de suínos submetidos a enxerto ósseo autógeno, homógeno e heterógeno.

CLEVERSON LUCIANO TRENTO

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Densitometria óssea em mandíbula de suínos

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Densitometria óssea em mandíbula de suínos

submetidos a enxerto ósseo autógeno,

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homógeno e heterógeno”

ARAÇATUBA

2006

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1

CLEVERSON LUCIANO TRENTO

“Densitometria óssea em mandíbula de suínos submetidos a

enxerto ósseo autógeno, homógeno e heterógeno”

Tese apresentada à Faculdade de

Odontologia de Araçatuba – Universidade

Estadual Paulista “Júlio de Mesquita

Filho”, como parte dos requisitos para

obtenção do título de Doutor em

Odontologia, Área de Concentração

Estomatologia.

Orientador: Prof. Dr. Alvimar Lima

de Castro

ARAÇATUBA

2006

2

CLEVERSON LUCIANO TRENTO

“Densitometria óssea em mandíbula de suínos submetidos a

enxerto ósseo autógeno, homógeno e heterógeno”

COMISSÃO JULGADORA

TESE PARA OBTENÇÃO DO GRAU DE DOUTOR

Presidente..............: Dr. Alvimar Lima de Castro.

1º Examinador.......: Dr. Gilberto Aparecido Coclete

2º Examinador.......: Dr. Edson Calixto da Fonseca

3º Examinador.......: Dr. Pedro Ângelo Cintra

4º Examinador.......: Dr.

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Ana Maria Pires Soubhia

Araçatuba, 04 de Dezembro de 2006.

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Há dias em que temos a sensação de que chegamos ao fim da linha.

Não conseguimos vislumbrar uma saída viável para os problemas que

surgem em grande quantidade.

Porém, as dores mais amargas, passam...

Tudo passa...

A ilusão fascina, mas se desvanece...

O poder apaixona, entretanto, transita de pessoa.

O prazer alegra, todavia é efêmero.

A glória terrestre exalta e desaparece.

O triunfador de hoje, passa, mais tarde, vencido...

Tudo, nesta vida, tem um propósito...

A dor aflige, mas também passa.

A carência aturde, porém, um dia se preenche.

A debilidade física deprime, todavia, liberta das paixões.

O silêncio que entristece, leva à meditação que felicita.

A submissão aflige, entretanto fortalece o caráter.

O fracasso espezinha, ao mesmo tempo ensina o homem a conquistar-se.

A situação muda, como mudam as estações...

O verão brinca de esconde-esconde com a brisa morna, mas cede lugar ao

outono, que espalha suas tintas sobre a folhagem.

O inverno chega e, sem pedir licença, congela a brisa e derruba as folhas.

Tudo parece sem vida, sem cor, sem perfume...

Será o fim? Não! Todas as dores terminam.

Aguardemos que o tempo, com suas mãos cheias de bálsamo, traga o alívio.

A ação do tempo é infalível, e nos guia suavemente pelo caminho certo,

aliviando nossas dores, assim como a brisa leve abranda o calor do verão.

Mais depressa do que se supõe, teremos a resposta, na consolação de que

necessitamos.

Por tudo isso, resistamos... E confiemos nesse abençoado aliado chamado

Deus !!!.

Deus !!!.Deus !!!.

Deus !!!.

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“Ao contrário do ouro e do barro,

O verdadeiro amor, dividido, não diminui.”

Martin Luther King

Dedico este trabalho a minha

Dedico este trabalho a minhaDedico este trabalho a minha

Dedico este trabalho a minha

esposa

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Ariadna

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Ariadna, pelo seu altruísmo, compreensão,

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dedicação, presença constante nos momentos

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edicação, presença constante nos momentos

difíceis e colaboração incondicional na

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difíceis e colaboração incondicional na

conquista de mais este objetivo em nossas vidas.

conquista de mais este objetivo em nossas vidas.conquista de mais este objetivo em nossas vidas.

conquista de mais este objetivo em nossas vidas.

Com todo o meu amor !!!

Com todo o meu amor !!!Com todo o meu amor !!!

Com todo o meu amor !!!

E a minha filha

E a minha filhaE a minha filha

E a minha filha

Beatriz

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presente de Deus em minha vida, pelo carinho

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com que perdoou

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ausência...

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Com amor,

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Minha eterna gratidão !!!

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Minha eterna gratidão !!!

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Dedicatória

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A MINHA ESPOSA

Ariadna Valderrama Jordão Trento

Ariadna Valderrama Jordão TrentoAriadna Valderrama Jordão Trento

Ariadna Valderrama Jordão Trento, pela presença constante e apoio carinhoso,

pelo amor e compreensão em todos os momentos da minha vida, cuja força, amor e

espírito de doação eu me inspiro para vencer os desafios da vida, te amo muito!

A MINHA FILHA

Beatriz Jordão Trento,

Beatriz Jordão Trento, Beatriz Jordão Trento,

Beatriz Jordão Trento, semente nascida pelo amor de duas pessoas que veio

transformar nossas vidas, tu és a razão de meu viver.

AOS MEUS PAIS

Edvaldo Trento e Marilene Grou Trento

Edvaldo Trento e Marilene Grou TrentoEdvaldo Trento e Marilene Grou Trento

Edvaldo Trento e Marilene Grou Trento, pela dedicação, exemplo de vida,

incentivo e sacrifício incondicional de suas vidas, visando a minha formação, a

realização dos meus sonhos e a minha felicidade.

AOS MEUS IRMÃOS

Clenilson Alessandro Trento

Clenilson Alessandro TrentoClenilson Alessandro Trento

Clenilson Alessandro Trento e Clauber Francys Trento

e Clauber Francys Trento e Clauber Francys Trento

e Clauber Francys Trento, por todo o apoio e alegria,

que apesar da distância me fazem sentir sempre presente o amor e carinho que nos

fortalece.

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Agradecimento especial

Agradecimento especialAgradecimento especial

Agradecimento especial

“A felicidade, às vezes, é uma benção, mas geralmente é uma conquista.”

Paulo Coelho

AO MEU ORIENTADOR

Alvimar Lima de Castro,

Alvimar Lima de Castro,Alvimar Lima de Castro,

Alvimar Lima de Castro, meu professor, amigo, pessoa virtuosa e iluminada que

através de seu vasto conhecimento, contagiou e possibilitou o meu

desenvolvimento intelectual e cultural, que se portou como só o fazem os mestres.

Acreditando no meu trabalho, deu-me a liberdade necessária dividindo comigo as

expectativas, conduziu-me a maiores reflexões e desta forma enriqueceu-me.

Minha especial admiração e gratidão.

A PROFESSORA

Ana Maria Pires So

Ana Maria Pires SoAna Maria Pires So

Ana Maria Pires Soubhia,

ubhia,ubhia,

ubhia, a minha eterna gratidão pela oportunidade oferecida,

bem como pela colaboração criteriosa, tolerância e dedicação demonstrada

durante a realização das diversas etapas deste projeto.

AO PROFESSOR

Mário Jef

Mário JefMário Jef

Mário Jeff

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ferson Quirino Louzada

erson Quirino Louzadaerson Quirino Louzada

erson Quirino Louzada por ser uma pessoa muito especial, sempre

disposta a ajudar com humor e simpatia contagiantes e pela grande contribuição

dada a esse experimento, um tríplice e fraternal abraço.

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Eu

Já perdoei erros quase imperdoáveis, tentei substituir pessoas insubstituíveis e

esqueci pessoas inesquecíveis.

Já fiz coisas por impulso, já me decepcionei com pessoas quando nunca pensei me

decepcionar, mas também já decepcionei alguém.

Já abracei pra proteger, dei risada quando não podia, fiz amigos eternos, já amei

e fui amado, mas também já fui rejeitado, fui amado e não amei.

Já gritei e pulei de tanta felicidade, já vivi de amor e fiz juras eternas “quebrei a

cara” muitas vezes!

Já chorei ouvindo músicas e vendo fotos, já liguei pra escutar uma voz, me

apaixonei por um sorriso, pensei que fosse morrer de tanta saudade, tive medo de

perder alguém especial e acabei perdendo!

Mas vivi! E ainda vivo! Não passo pela vida...

Evocê também não deveria passar!

Viva!!!

Bom mesmo é ir à luta com determinação, abraçar a vida e viver com paixão,

perder com classe e ganhar com ousadia, porque o mundo pertence a quem se

atreve e a vida é muito para ser insignificante!!!

Charlie Chaplin.

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Agradecimentos

AgradecimentosAgradecimentos

Agradecimentos

DEUS

Pela minha existência, porque nada nos é possível se não for de sua vontade.

FACULDADE DE ODONTOLOGIA DE ARAÇATUBA DA UNIVERSIDADE

ESTADUAL PAULISTA – UNESP

Na pessoa de seu atual diretor Prof. Dr. Paulo Roberto Botacin

Prof. Dr. Paulo Roberto BotacinProf. Dr. Paulo Roberto Botacin

Prof. Dr. Paulo Roberto Botacin pela

oportunidade de realização do curso de doutorado e pela disponibilidade de todas

as instalações a mim proporcionadas.

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM ODONTOLOGIA DA FACULDADE

DE ODONTOLOGIA DE ARAÇATUBA

Na pessoa do seu coordenador Prof. Dr. Wilson Roberto Poi

Prof. Dr. Wilson Roberto PoiProf. Dr. Wilson Roberto Poi

Prof. Dr. Wilson Roberto Poi e de todo o corpo

docente pelos ensinamentos transmitidos.

DEPARTAMENTO DE PATOLOGIA E PROPEDEUTICA CLÍNICA DA

FACULDADE DE ODONTOLOGIA DE ARAÇATUBA

A todas as pessoas do departamento especialmente, Prof.

Prof.Prof.

Prof.

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Dr.

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Ana Maria Pires

Ana Maria Pires Ana Maria Pires

Ana Maria Pires

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Soubhia, Prof. Dr.

Prof. Dr.Prof. Dr.

Prof. Dr.

Alvimar Lima de Castro, Prof

Alvimar Lima de Castro, ProfAlvimar Lima de Castro, Prof

Alvimar Lima de Castro, Prof. Dr.

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Gilberto Aparecido

Gilberto Aparecido Gilberto Aparecido

Gilberto Aparecido

Coclete,

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Prof. Dr.

Prof. Dr.Prof. Dr.

Prof. Dr.

Marcelo Macedo Crivelini

Marcelo Macedo CriveliniMarcelo Macedo Crivelini

Marcelo Macedo Crivelini, Prof. Dr. Norberto Perri Moraes

Prof. Dr. Norberto Perri MoraesProf. Dr. Norberto Perri Moraes

Prof. Dr. Norberto Perri Moraes,

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Prof. Dr. Eder Ricardo Biasoli

rof. Dr. Eder Ricardo Biasolirof. Dr. Eder Ricardo Biasoli

rof. Dr. Eder Ricardo Biasoli, Prof. Dr. Glauco Issamu Miyahara

Prof. Dr. Glauco Issamu MiyaharaProf. Dr. Glauco Issamu Miyahara

Prof. Dr. Glauco Issamu Miyahara, Prof. Dr.

Prof. Dr. Prof. Dr.

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Elerson Gaetti

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Elerson Gaetti Jardim

Jardim Jardim

Jardim Junior

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Junior, Prof.

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Leda Maria Pescinini Salzedas

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Leda Maria Pescinini Salzedas, Prof.

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Ana Cláudia Okamoto

Ana Cláudia Okamoto Ana Cláudia Okamoto

Ana Cláudia Okamoto, a Sr.

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Marli B. dos Santos

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Marli B. dos Santos, Sr.

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Miriam Regina

Miriam Regina Miriam Regina

Miriam Regina

Mouro Ferraz Lima

Mouro Ferraz LimaMouro Ferraz Lima

Mouro Ferraz Lima, Sr.

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Elai

Elai Elai

Elaine C.F. Ferreira

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ne C.F. Ferreira, Sr.

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Maria Aparecida

Maria Aparecida Maria Aparecida

Maria Aparecida M da Silva

M da Silva M da Silva

M da Silva,

Sr.

Sr.Sr.

Sr.

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Luzia M.O. Francischini

Luzia M.O. Francischini Luzia M.O. Francischini

Luzia M.O. Francischini, Sr.

Sr.Sr.

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Mariana

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Mariana, Sr.

Sr.Sr.

Sr.

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Edna,

Edna, Edna,

Edna, Sr.

Sr.Sr.

Sr.

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Cidinha

Cidinha Cidinha

Cidinha pelo apoio e

disponibilização de recursos pessoais e materiais para realização dos

procedimentos clínicos e laboratoriais que envolveram este projeto e

principalmente pela convivência carinhosa e atenciosa que me dispensam.

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AMIGOS

Ao José Marcelo Tramarim

José Marcelo TramarimJosé Marcelo Tramarim

José Marcelo Tramarim (Marcelinho) pela ajuda em todo processo

experimental desse trabalho, sempre com muita responsabilidade, atenção e acima

de tudo bom humor.

Aos amigso Sidney Sartor

Sidney SartorSidney Sartor

Sidney Sartori e Andréia Jordão

i e Andréia Jordãoi e Andréia Jordão

i e Andréia Jordão pelo apoio sincero, pela amizade e

pelo encorajamento ao meu engrandecimento pessoal e profissional. Minha estima

e admiração!

FUNCIONÁRIOS DA SEÇÃO DE PÓS-GRADUAÇÃO DA FACULDADE DE

ODONTOLOGIA DE ARAÇATUBA

Sr.

Sr.Sr.

Sr.

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Marina M.S

Marina M.SMarina M.S

Marina M.S. Kawagoe

KawagoeKawagoe

Kawagoe e Sr.

Sr.Sr.

Sr.

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Valéria Q.M. Zagatto

Valéria Q.M. Zagatto Valéria Q.M. Zagatto

Valéria Q.M. Zagatto pela presteza e

paciência nas corretas orientações.

BIBLIOTECA DA FACULDADE DE ODONTOLOGIA DE ARAÇATUBA

As funcionárias da Biblioteca do Campus de Araçatuba, Alexandra Bento

Alexandra BentoAlexandra Bento

Alexandra Bento, Ana

Ana Ana

Ana

Claudia M.G. Manzatti

Claudia M.G. ManzattiClaudia M.G. Manzatti

Claudia M.G. Manzatti, Claudia S. Frare

Claudia S. FrareClaudia S. Frare

Claudia S. Frare, Cláudio H. Matsumoto

Cláudio H. MatsumotoCláudio H. Matsumoto

Cláudio H. Matsumoto, Fátima

Fátima Fátima

Fátima

M.M. Bertolucci

M.M. BertolucciM.M. Bertolucci

M.M. Bertolucci, Isabel Pereira de Matos

Isabel Pereira de MatosIsabel Pereira de Matos

Isabel Pereira de Matos, Ivone R.L. Munhoz

Ivone R.L. MunhozIvone R.L. Munhoz

Ivone R.L. Munhoz, Izamar S.

Izamar S. Izamar S.

Izamar S.

Freitas

FreitasFreitas

Freitas, Luzia Anderlini

Luzia AnderliniLuzia Anderlini

Luzia Anderlini, Maria Claudia de C Benez

Maria Claudia de C BenezMaria Claudia de C Benez

Maria Claudia de C Benez, Marina A. Santos

Marina A. SantosMarina A. Santos

Marina A. Santos, pela

boa vontade e competência no atendimento ao público, além da amizade

consolidada nesses anos de convivência em que freqüentei a biblioteca.

AOS MAIS NOVOS AMIGOS

Lira Marcela Monti

Lira Marcela MontiLira Marcela Monti

Lira Marcela Monti, Diuria

DiuriaDiuria

Diurian

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nne Caroline

ne Carolinene Caroline

ne Caroline Campos

Campos Campos

Campos França

França França

França,Iracy

IracyIracy

Iracy Costa

Costa Costa

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HenriqueHenrique

Henrique

José

JoséJosé

José Baldo de Toledo

Baldo de Toledo Baldo de Toledo

Baldo de Toledo, Marceli Moço Silva

, Marceli Moço Silva, Marceli Moço Silva

, Marceli Moço Silva pela amizade, incentivo e colaboração

neste trabalho.

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COLEGAS DE PÓS GRADUAÇÃO

Aos colegas Cristiane F. Furuse, Cristiano Marinho Correia

Cristiane F. Furuse, Cristiano Marinho CorreiaCristiane F. Furuse, Cristiano Marinho Correia

Cristiane F. Furuse, Cristiano Marinho Correia,

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Leandro T.

Leandro T. Leandro T.

Leandro T.

Kawata

KawataKawata

Kawata, Daniel Galera Bernabé

Daniel Galera BernabéDaniel Galera Bernabé

Daniel Galera Bernabé, Eni Vaz Franco Lima de Castro

Eni Vaz Franco Lima de CastroEni Vaz Franco Lima de Castro

Eni Vaz Franco Lima de Castro, Ellen Greves

Ellen Greves Ellen Greves

Ellen Greves

Giovanini

GiovaniniGiovanini

Giovanini, Luciana Estevam Simonato

Luciana Estevam SimonatoLuciana Estevam Simonato

Luciana Estevam Simonato, pela oportunidade de convivência e pelos

sonhos compartilhados.

AOS MEUS ALUNOS DE GRADUAÇÃO

Aos meus alunos do Curso de Graduação em Odontologia do CESUMAR

CESUMAR CESUMAR

CESUMAR

Centro

Centro Centro

Centro

Universitário de Maringá

Universitário de MaringáUniversitário de Maringá

Universitário de Maringá, por representarem um estímulo constante ao meu

aperfeiçoamento profissional e um desafio para o aprimoramento de minhas

aptidões como educador.

A SUINOCULTURA ZEZOLÂNDIA

Pelos cuidados prestados ao nosso modelo de estudos.

AOS ANIMAIS

Cujas vidas foram sacrificadas em benefício do progresso da ciência, agradeço o

sacrifício maior, com a certeza de não ter sido em vão.

14

Que Deus não permita que eu perca o ROMANTISMO,

mesmo eu sabendo que as rosas não falam.

Que eu não perca o OTIMISMO,

mesmo sabendo que o futuro que nos espera não é assim tão alegre

Que eu não perca a VONTADE DE VIVER,

mesmo sabendo que a vida é, em muitos momentos, dolorosa...

Que eu não perca a vontade de TER GRANDES AMIGOS,

mesmo sabendo que, com as voltas do mundo, eles acabam indo embora de nossas

vidas...

Que eu não perca a vontade de AJUDAR AS PESSOAS,

mesmo sabendo que muitas delas são incapazes de ver, reconhecer e retribuir esta ajuda.

Que eu não perca o EQUILÍBRIO,

mesmo sabendo que inúmeras forças querem que eu caia

Que eu não perca a VONTADE DE AMAR,

mesmo sabendo que a pessoa que eu mais amo, pode não sentir o mesmo sentimento por

mim...

Que eu não perca a LUZ e o BRILHO NO OLHAR,

mesmo sabendo que muitas coisas que verei no mundo, escurecerão meus olhos...

Que eu não perca a GARRA,

mesmo sabendo que a derrota e a perda são dois adversários extremamente perigosos.

Que eu não perca a RAZÃO,

mesmo sabendo que as tentações da vida são inúmeras e deliciosas.

Que eu não perca o SENTIMENTO DE JUSTIÇA,

mesmo sabendo que o prejudicado possa ser eu.

Que eu não perca o meu FORTE ABRAÇO,

mesmo sabendo que um dia meus braços estarão fracos...

Que eu não perca a BELEZA e a ALEGRIA DE VER,

mesmo sabendo que muitas lágrimas brotarão dos meus olhos e escorrerão por minha

alma...

Que eu não perca o AMOR POR MINHA FAMÍLIA,

mesmo sabendo que ela muitas vezes me exigirá esforços incríveis para manter a sua

harmonia.

Que eu não perca a vontade de DOAR ESTE ENORME AMOR que existe em meu

coração, mesmo sabendo que muitas vezes ele será submetido e até rejeitado.

Que eu não perca a vontade de SER GRANDE,

mesmo sabendo que o mundo é pequeno...

E acima de tudo...

Que eu jamais me esqueça que Deus me ama infinitamente, que um pequeno

grão de alegria e esperança dentro de cada um é capaz de mudar e transformar qualquer

coisa, pois...

A VIDA É CONSTRUÍDA NOS SONHOS E CONCRETIZADA NO

AMOR!

Francisco

FranciscoFrancisco

Francisco Cândido Xavier

Cândido Xavier Cândido Xavier

Cândido Xavier

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TRENTO, C. L. Densitometria óssea em mandíbula de suínos submetidos a enxerto

ósseo autógeno, homógeno e heterógeno. 2006. 116 f. Tese (Doutorado) – Faculdade

de Odontologia, Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho, Araçatuba.

Resumo

Defeitos ósseos extensos na região maxilo-facial podem ser corrigidos com enxerto

autógeno, no entanto, as desvantagens desta modalidade terapêutica têm levado a

pesquisa por novos materiais para substituir esses enxertos. O objetivo deste estudo foi

avaliar densitometricamente a incorporação dos enxertos autógeno, homógeno e

heterógeno humano, sendo utilizado para isso dez suínos divididos em 4 grupos, com

tempo de sacrifício de 7, 30, 60 e 90 dias. Os animais foram acompanhados

clinicamente e a incorporação dos enxertos foi analisada densitometricamente através

do aparelho DEXA da Lunar. Os resultados mostraram que o enxerto heterógeno

humano apresentou menor reabsorção seguido pelo homógeno, que estatisticamente

comprovou existirem diferenças significativas tanto entre os suínos em relação ao

tempo de sacrifício quanto entre os tratamentos autógeno, homógeno e heterógeno

humano, podendo-se concluir que estes podem ser utilizados como alternativa viável na

substituição do osso de origem autógena.

Palavras-chave: Transplante autógeno. Transplante homólogo. Osso. Suínos.

Mandíbula. Densitometria.

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TRENTO, C. L. Bony Densitometry in jaw of swine submitted to autogenous,

homogenous and heterogenous bone graft. 2006. 116 f. Tese [Doutorado] –

Faculdade de Odontologia, Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho,

Araçatuba.

ABSTRAT

Extensive bony defects in the maxilofacial area can be corrected with autogenous graft,

however the disadvantages of this therapeutic modality have been taking to the research

for new materials to substitute those grafts. This study aimed to evaluate

densitometrically the incorporation of the autogenous, homogenous and heterogenous

human bone graft. Ten swines divided in 4 groups, with time of sacrifice of 7, 30, 60

and 90 days. The animals were accompanied clinically and the incorporation of the

grafts was analyzed densitometrically through the apparel DEXA of the Lunar. The

results showed that the heterogenous human graft presented smaller reabsorption

proceeded by the homogenous graft, that statistically proved to exist significant

differences so much among the swines in relation to the time of sacrifice as it enters the

autogenous, homogenous and heterogenous human treatments, could be concluded that

these can used as viable alternative in the substitution of the autogenous bone.

Keywords: Autogenous transplant. Homologous transplant. Bone. Swine. Jaw.

Densitometry

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LISTA DE FIGURAS/TABELAS

FIGURA 1 - Gráfico de médias da densitometria dos animais. 62

FIGURA 1a - Gráfico de médias da densitometria dos animais com intervalos de

95% de confiança.

62

FIGURA 2a - Gráfico de médias da densitometria para cada tratamento. 63

FIGURA 2b - Gráfico de médias da densitometria para cada tratamento com

intervalos de 95% de confiança.

64

FIGURA 2c - Médias da densitometria para cada interação de tratamento/animal

tratado.

65

FIGURA 2d - Gráfico de médias da densiometria para cada interação tratamento e

animal com intervalos de 95% de confiança.

65

FIGURA 3 - Gráfico de probabilidade normal dos resíduos. 66

FIGURA 4 - Peça retirada do fêmur de suíno em processo de preparação dos

blocos a serem congelados.

110

FIGURA 5 - Anel de fêmur após retirada dos tecido moles. 110

FIGURA 6 - Blocos em banho de soro fisiológico com antimicrobiano

vancomicina e polimixina.

111

FIGURA 7 – Blocos acondicionados em invólucro estéril prontos para

congelamento.

111

FIGURA 8 - Incisão de Risdon, divulsão e descolamento com acesso ao ramo e

corpo da mandíbula.

112

FIGURA 9 - Aparelho Dexa dpx da Lunar em processo de captura da imagem. 112

FIGURA 10 - Imagem após captura pronta para analise densitométrica. 113

FIGURA 11 – Área delimitada para análise da concentração mineral, na

seqüência

de autógeno homógeno e heterógeno, repectivamente.

113

FIGURA 12 - Análise manual com resultados das respectivas áreas. 114

21

LISTA DE FIGURAS/TABELAS

TABELA 1 – Análise de variância para as observações da densitometria.

TABELA 2 – Médias, erro padrão e intervalo de 95% de confiança para a densitometria

de cada porco

TABELA 3 – Médias, erro padrão e intervalo de 95% de confiança para a densitometria

de cada tratamento

TABELA 4 – Resultados dos testes de comparação de médias (duas a duas). O teste

utilizado foi o de Scheffé ao nível de 5% de significância.

TABELA 5 – Resultados dos testes de comparação de médias (duas a duas). O teste

utilizado foi o de Scheffé ao nível de 5% de significância.

FIGURA 13 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

60 dias.

FIGURA 14 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

60 dias.

FIGURA 15 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

7 dias.

FIGURA 16 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

7 dias.

FIGURA 17 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

30 dias.

FIGURA 18 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

30 dias.

FIGURA 19 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

90 dias.

FIGURA 20 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

90 dias.

FIGURA 21 - Valores reais de densitometria encontrados pelo aparelho DPX da Lunar

60 dias.

60

61

63

67

68

101

102

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22

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LL

L

LL

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AA

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SS

S

SS

S

23

LISTA DE ABREVIATURAS

ABO/RH = Exame de tipagem e fator sanguíneo

A-HIV I e II = Teste para detecção qualitativa de anticorpos de classe

IgGIgM contra o vírus da Imunodeficiência Humana

A-HCV = Exame anti hepatite B

A-HTLV-I = Teste para detecção qualitativa de anticorpos de

Classe IgGIgM contra o vírus linfotrófico humano

dos tipos I e II

BMPs = Proteína Óssea Morfogenética

BTME = Banco de tecidos músculo esquelético

Carbide = Tipo de broca

cm

2

= Área em centímetros

CNCDO = Central de Notificação Captação e Distribuição de

Órgãos

CFMV = Conselho Federal de Medicina Veterinária

º C = Graus Celsius

DFDB = osso liofilizado desmineralizado de origem humana

Digora = Sistema de imagem digital

DEXA = Absorciometria Por Raios-X De Dupla Energia

DPA = Absorciometria Por Fóton Duplo

Et al = et alii: e outros (geralmente autores e obras literárias)

g = Gramas

HA = Hidroxiapatita

HbsAg = Antígeno Austrália, é um determinante antigênico

encontrado na superfície do HBV

HE = Hematoxilina e Eosina

HIV = vírus da imunodeficiência adquirida

HBV = exame sorológico para hepatite B

24

HCV = exame sorológico para hepatite pós-transfusional

Hounsfield = unidade de densidade em tomografia

HU = Hospital Universitário

Kg = Quilograma

- = Menos

mg = Miligrama

ml = Mililitro

mm = Milímetros

nº = Número

PCR = reação em cadeia da polimerase, método efetivo

para detecção direta de vírus circulante.

Pvpi = polivinil pirrolidona iodo 10%

QCT = Tomografia Computadorizada Quantitativa

rpm = Rotações por minuto

SPA = Absorciometria Por Fóton Único

SNT = Sistema Nacional de Transplantes

% = Porcentagem

UI = Unidade Internacional

VDRL = Teste sorológico reagente para sífilis

25

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I

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OO

O

26

SUMÁRIO

1 INTRODUÇÃO

27

2 REVISÃO DE LITERATURA

32

2.1 SUÍNOS COMO MODELO BIOLÓGICO

33

2.2 BANCO DE OSSOS

35

2.3 ENXERTOS ÓSSEOS

37

2.4 DENSITOMETRIA ÓSSEA

404

3 PROPOSIÇÃO

43

4 MATERIAL E MÉTODO

45

5 RESULTADOS

59

6 DISCUSSÃO

69

7 CONSIDERAÇÕES FINAIS

80

8 REFERÊNCIAS

82

9 ANEXOS

99

9.1 ANEXO A

99

9.2 ANEXO B

110

9.3 ANEXO C

115

1

11

1

11

1

I

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I

II

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28

1 INTRODUÇÃO

A reconstrução de defeitos ósseos amplos representa um desafio para os

cirurgiões, fazendo com que os mesmos realizem pesquisas continuadas na natureza da

osteogênese e em métodos de controlá-la e estimulá-la. Os defeitos ósseos normalmente

são ocasionados por traumas, tumores, infecções, e anomalias de desenvolvimento, que

não reparam espontaneamente, prejudicando a forma e função do esqueleto facial.

Sob o ponto de vista da aceitação biológica, em função da superior

compatibilidade tecidual, o melhor material de enxerto ou transplante é o autógeno

(RIOS, 1995), quando são utilizados enxertos autógenos, existe a necessidade de ato

cirúrgico adicional para remoção do material, criando uma ferida cirúrgica cujo pós-

operatório pode ser mais desconfortável ao paciente do que a intervenção cirúrgica para

correção da deformidade (KLINGE et al., 1992; MEADOWS et al., 1993; OKAMOTO

et al., 1991; PURCHIO et al., 1992).

O osso de origem embriológica intramembranosa (fêmur, mandíbula,

calota craniana entre outros) apresenta índices superiores de integração, quando

comparado com o osso de origem embriológica endocondral (maxila, ilíaco, costelas

etc), quando utilizado para reconstruções na face (ALONSO, 1992; LA TRENTA et al.,

1989).

No entanto, à medida que as técnicas de cirurgia craniofacial se

aperfeiçoam, quantidades cada vez maiores de osso se fazem necessárias para suprirem

essas lacunas, tornando, às vezes, a obtenção do osso do tipo autógeno muito difícil ou

até mesmo impossível.

29

A busca de materiais que possam substituir o osso tem determinado a

fabricação, obtenção e pesquisa de inúmeros materiais que possam mimetizar a estrutura

óssea humana permitindo muitas vezes a formação de osso a partir da área receptora.

Nos enxertos homógenos, além da obtenção do enxerto, há a necessidade

de meios para sua conservação. Assim é que bancos de enxertos são criados para

viabilizar meios de conservação que venham facilitar o uso de tecidos em condições de

serem utilizados como enxertos biológicos.

As dificuldades acima citadas, não devem impedir a utilização de

enxertos autógenos, homógenos ou heterógenos, quando a sua aplicação estiver

indicada, lembrando sempre que as fontes de material autógeno são limitadas,

impossibilitando, muitas vezes, obter-se a quantidade de material necessária para

correções de grandes defeitos (OKAMOTO et al., 1991).

Assim, em pacientes onde não houver osso disponível em quantidade

suficiente, ou quando pequenas quantidades de material forem necessárias, enxertos

homógenos ou heterógenos complementares poderão ter sua indicação (RIOS, 1995).

Com a atual ênfase na síndrome da imunodeficiência adquirida, há, por

vezes, relutância do paciente em aceitar enxerto de material de origem humana

(CALLAN; ROHRER, 1993; PURCHIO et al., 1992).

A utilização de enxertos ósseos homógenos de cadáver, conservado em

bancos de ossos, tem se mostrado eficazes em inúmeras situações, principalmente na

ortopedia em grandes reconstruções para reparação de perdas ósseas extensas. Os

protocolos de retirada, conservação, esterilização e utilização destes materiais já estão

estabelecidos em muitos serviços especializados, com resultados satisfatórios que

justificam sua utilização. (BONFIGLIO et al., 1955; GARCIA et al., 1992; MALININ,

1992; PARRISH, 1966; TOMFORD et al., 1983; STEFANI et al., 1989).

30

A análise mineral do tecido ósseo por meios não invasivos, tornou-se possível

desde a descoberta dos raios X, o que proporcionou novos rumos para medicina e

odontologia. Considerando que as imagens radiográficas se formam a partir das

características do tecido ósseo, isso viabiliza avalia-lo por sua densidade. Hausmann et

al. (1982), confirmam que qualquer modificação no conteúdo mineral ósseo gera

modificações passíveis de mensuração em sua densidade.

A década de 1970 marcou importante incremento nas investigações da

osteoporose devido as novas técnicas de medição não invasiva da densidade óssea, de

maneira que a mandíbula tem sido envolvida nestas pesquisas.

A utilização de recursos radiográficos e imaginológicos para análise qualitativa e

quantitativa, atualmente tem ganho maior atenção por ter se tornado mais exeqüível

com o advento da informática, em especial com relação a densitometria que analisa

quantitativamente o teor mineral do tecido ósseo (SCARPARO, 1995), conseguindo-se,

dessa forma, contornar a subjetividade individual na análise e interpretação da imagem

radiográfica, bem como as limitações visuais, através da utilização de técnicas de

medida de densidade óptica (LOUZADA, 1988). Contudo, apesar das técnicas de

avaliações quantitativas e qualitativas do estado de mineralização óssea estarem

avançando de forma acentuada, seus graus de complexidade e de custo impedem, até

certo ponto, sua utilização de forma rotineira (LOUZADA, 1994).

A Densitometria Óssea é uma análise computadorizada da quantidade de

cálcio e outros minerais contidos nos ossos (densidade mineral óssea), esta se

estabeleceu como o método mais moderno, aprimorado, seguro, não-invasivo e inócuo

para se medir a densidade mineral óssea e, comparada, com padrões para idade e sexo,

tem a capacidade de aferir a massa óssea do local com grande eficácia.

31

Dentre os enxertos, os autógenos e homógenos oferecem melhores resultados,

muito embora no segundo caso, exista a necessidade de procedimento para a obtenção

do enxerto bem como um meio para sua conservação. Assim, bancos de ossos são

criados na tentativa de viabilizar meios de conservação que venham facilitar o uso de

tecidos em condições de serem utilizados como enxertos.

Com o crescente uso desses biomateriais na prática médica e odontológica,

torna-se cada vez mais importante o desenvolvimento e/ou implementação de testes

para a avaliação da biocompatibilidade destes.

Tendo em vista esses fatos, o objetivo deste trabalho foi estudar em mandíbula

de suínos as alterações de densidade óssea entre os enxertos autógenos, homógenos e

heterógenos.

32

2

22

2

22

2

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33

2 Revisão de literatura

Com o objetivo de direcionar e facilitar a compreensão do presente

estudo, foi realizada uma revisão dos conteúdos utilizando modelo biológico de suínos e

banco de ossos, abordando-se o assunto enxertos ósseos e generalidades sobre técnicas

de medição de densidade óssea.

2.1 SUÍNOS COMO MODELO BIOLÓGICO

Desde 1965, (ATKINSON) estudos procuram demonstrar a importância

em se utilizar suínos como modelo biológico na pesquisa experimental, sugerindo que

no homem, áreas de osso haversiano são reabsorvidas mais intensamente do que osso

lamelar intersticial, o mesmo podendo ocorrer no porco, e no que diz respeito a

diferenças morfológicas e histológicas ósseas, estes apresentam densidades e

metabolismo ósseo semelhantes (ATKINSON, 1965; CHRISTGAU et al., 1998b;

GLOWACKI et al., 2004; HALL, 1965; POWELL et al., 1973; TROULIS et al., 2000;

ZIMMERMANN et al., 2005).

No estudo da reparação óssea após osteotomias, alguns trabalhos

utilizaram suínos (ROBERTSON et al., 1980; SHARAWY et al., 2002), e esses têm

sido utilizados também como modelos para se estudar o remodelamento ósseo

(GLOWACKI et al., 2004; HOLZHAUER et al., 1998; THURMÜLLER et al., 2002;

ZIMMERMANN et al., 2004; ZIMMERMANN et al., 2005), no estudo de

densitometria óssea (ATKINSON et al., 1977; CHRISTGAU et al., 1998a; LEE et al.,

2004; MITCHELL et al., 2001; ROSE et al., 2005; ZHANG et al., 2001), e na avaliação

de radiografias digitais como método diagnóstico (CHRISTGAU et al., 1998b).

Marqueti (2003) estudou o desenvolvimento de lesão periapical induzida

34

experimentalmente, objetivando análise no desenvolvimento de reabsorções

cementodentinárias e ósseas, e tipo/gradação do infiltrado inflamatório, utilizando

suínos de grande porte da linhagem Large white.

Inui et al. (2004) demonstraram que o osso do porco adulto é mais

resistente que o humano e que a densidade mineral óssea em fêmea é maior do que em

machos.

Estudos recentes têm demonstrado que somente a articulação

temporomandibular de primatas superiores e de suínos parecem ter sistemas anatômicos

funcionalmente próximos ao humano (GLOWACKI et al., 2004; HERRING, 1995;

LANGENBACH et al., 2002; TROULIS et al., 2000; ZIMMERMANN et al., 2005).

Saka et al. (2002) realizaram um estudo comparando o suprimento

sanguíneo do córtex mandibular de miniporcos da raça Göttingen e do homem,

observando-se similaridade nos resultados de ambas espécies.

As pesquisas utilizando suínos não estão limitadas somente aos estudos

ósseos, mas também a vários outros experimentos nas mais diversas áreas da medicina,

aproveitando-se do animal desde o fornecimento de substâncias vitais para o homem até

a doação de órgãos, transformando-se em importante opção da medicina para aumentar

a sobrevivência das pessoas (ROPPA, 2005; SIMÕES, 2004).

35

2.2 BANCO DE OSSOS

Inclan (1942) fez a primeira tentativa convencional de armazenar ossos para uso

eletivo, a partir de então um grande número de técnicas tem sido proposta para

tratamento, conservação e utilização de enxertos ósseos visando conservar seu potencial

biológico.

Michaud e Drabu (1994) têm citado que inúmeros trabalhos de pesquisa vêm

demonstrando a eficácia e aplicação dos enxertos de osso homógeno, onde cerca de

30% de todas as artroplastias totais de quadril eletivas realizadas nos hospitais

britânicos necessitaram de revisão, requerendo freqüentemente substancial quantidade

de enxerto homógeno para substituição do osso autógeno devido a dificuldade de

obtenção deste.

Defino et al. (1991) descreveram a rotina do banco de ossos do hospital da

Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade Estadual de São Paulo, e do uso

desses ossos pelo serviço de ortopedia daquele hospital, concluindo que a temperatura

de conservação do osso deve se situar entre 70° e 80° C negativos, afirmando que

somente nestas temperaturas o sistema enzimático celular permanece em estado de

latência, evitando a ocorrência de autólise celular.

Feofiloff e Garcia (1996) realizaram estudos sobre várias técnicas de obtenção,

processamento, armazenamento e utilização de homoenxertos ósseos, e descreveram os

procedimentos adotados pelo banco de ossos do hospital de São Paulo, apresentando os

resultados da implantação de 45 homoenxertos ósseos, concluindo se tratar de um

procedimento simples, seguro e acessível a hospitais com poucos recursos.

Stefani et al. (1989), propuseram um método simplificado de armazenamento de

ossos homógenos, demonstrando que podem ser acondicionados em envólucros

36

plásticos contendo duas ampolas de gentamicina 80 mg cada, e mantidos congelados a

temperaturas abaixo de -18° C por um período de até quatro semanas, sem perder suas

propriedades biológicas, concluindo que a aplicabilidade dos enxertos de banco de

ossos é abrangente tanto em ossos corticais quanto esponjosos.

Russel et al. (1989) descreveram o protocolo utilizado por 60 bancos de ossos do

Canada, explicando todo mecanismo de seleção dos doadores, técnica de retirada destes

ossos e tecidos, todos os exames realizados para certificação de ausência de infecções,

apresentando ainda um questionário para o doador ou família deste, concluindo se tratar

de um mecanismo efetivo na captação de tecidos e ossos minimizando a probabilidade

de transmissões quando utilizada esta técnica.

Delloye et al. (1991) realizaram investigação sobre a organização e atividade dos

bancos de ossos da Bélgica, enfocando a obtenção, o tratamento e estocagem empregada

nos ossos de doadores, enfocando principalmente que a contaminação mais comum

seria por Stafilococos epidermidis em 62,3% dos casos.

Tomford et al. (1983) descreveram os procedimentos necessários para o

estabelecimento de um banco de ossos, discutindo os aspectos legais envolvidos na

autorização para doação e os aspectos logísticos para procura, localização e remoção

dos ossos, e referiram que a melhor forma encontrada foi o trabalho em conjunto com

bancos de órgãos já estabelecidos, concluindo que a esterilização secundária deve ser

excluída e que a melhor forma de captação é a de doadores sadios, com remoção dos

ossos sob condições estéreis.

37

2.3 ENXERTOS ÓSSEOS

Cypher e Grossman (1996) definiram enxertos e seus princípios

biológicos. Enxerto ósseo é o transplante de osso vivo de um sítio para outro,

transplante significa a transferência de células vivas, enquanto implante refere-se à

transferência de tecido não vivo ou de material aloplástico. Um enxerto pode ser

autógeno ou isógeno quando a transferência ocorre no mesmo indivíduo, ou entre

gêmeos homozigotos. O enxerto ósseo homógeno ou alógeno é a transferência de tecido

entre indivíduos da mesma espécie, enquanto o xenógeno ou heterógeno é o transplante

de tecido entre indivíduos de espécies diferentes.

Segundo (2000), avaliou inúmeros enxertos homólogos utilizados em

odontologia, concluindo que todos os materiais estudados (HA, tricálcio fostato, DFDB,

osso bovino e osso autógeno) podem ser utilizados para levantamento de seio maxilar,

com bons resultados.

Carvalho et. al. (2003) estudaram implante de matriz óssea humana

desmineralizada em forma de gel em cavidade óssea e tecido conjuntivo de ratos,

concluindo que o material no tecido conjuntivo levou a uma reação inflamatória de leve

a moderada enquanto que na cavidade óssea houve aceleração na formação de

trabéculas ósseas incorporadas às partículas do osso implantado.

Araujo et al. (2000) avaliaram histologicamente implante de osso bovino

liofilizado em mandíbula de cão, observando que presença de infiltrado inflamatório

com células gigantes de corpo estranho próximas ao material, indicando que este

apresentou determinada imunogenicidade, concluindo ainda que o material é

biocompatível.

38

Pinto et. al. (2003) avaliaram histologicamente o processo de reparo

ósseo em coelhos na presença de proteína morfogenética óssea bovina associada a

membrana de cortical óssea bovina liofilizada, onde os autores concluindo que na fase

inicial a reparação foi retardada na presença do material, porém à medida que foi

absorvido o processo de reparo ósseo desenvolveu-se rapidamente.

Braga et. al. (1999) demonstraram o processo de obtenção de matriz

mineral de osso bovino, sua viabilidade e biocompatibilidade como material de

preenchimento em cavidades ósseas, sendo este um material osteocondutor.

Herndon e Chase (1954), estudaram experimentalmente cães, utilizando a

articulação do joelho, transplante autógeno, homógeno fresco e homógeno conservado

em congelador a 20°C negativos. Os animais foram sacrificados para avaliação em

períodos que variaram de um dia a dois anos de pós-operatório. A comparação entre os

três tipos de transplantes revelou que o osso cortical tornou-se necrótico após a

tranferência em todos os casos, e a reorganização processou-se rapidamente no

transplante autógeno. Nos homógenos frescos e nos congelados muitas áreas de osso

necrótico foram observadas mesmo após dois anos. A união óssea entre os transplantes

e o osso do receptor ocorreu rapidamente em todos os transplantes, sendo toda nova

osteoformação óssea precedida de revascularização e desenvolvimento de medula óssea

normal.

Bonfiglio et al. (1955) realizaram enxertos ósseos autógenos, autógenos

congelados, homógenos frescos e homógenos congelados em coelhos, com períodos de

sacrifício que variaram de uma a doze semanas, avaliando a capacidade de reparação de

fraturas ósseas realizadas nos segmentos enxertados, verificando que houve

consolidação na maioria dos casos, a substituição do osso necrótico por osso

39

neoformado foi intensa nos transplantes autógenos frescos, e quase nula nos

homógenos. Os transplantes homógenos congelados apresentaram reação inflamatória.

Parrish (1966) concluiu que após recessões tumorais com conseqüente exérese

total ou parcial da articulação esta poderia ser substituída por enxertos de osso

homógeno congelados a 20°C negativos, sendo que a maioria dos pacientes apresentou

boa evolução pós-operatória, com recuperação da função do membro acometido.

Parrish (1973) apresentou sua experiência clínica de 11 anos com enxerto de

osso homógeno congelado em pacientes portados de tumores ósseos submetidos a

transplante homógeno osteocartilaginoso, indicando este procedimento para portadores

de tumores benignos ou de tumores malignos de baixo grau, no intuito de evitar

recidivas ou amputação do membro comprometido, os pacientes foram acompanhados

por um período 17 a 148 meses.

Marques et al. (1980) estudaram ossos conservados em glicerina à

temperatura ambiente por períodos que variaram de 25 a 600 dias e que foram utilizados

para reparar defeitos ósseos na calota craniana de cobaias. Os transplantes foram de

osso autógeno, homógeno fresco e homógeno conservado em glicerina, todos os grupos

apresentaram reparação após 360 dias, e embora a glicerina tenha sido utilizada com

propósito de diminuir a antigenicidade, o fato não foi confirmado neste estudo, pois

também o osso homógeno fresco apresentou reparação no período tardio.

Friedlander (1983) observou que vários métodos haviam sido

empregados para determinar a antigenicidade dos transplantes ósseos desde 1950,

alguns métodos de avaliação histológica assim como experimentos sobre rejeição

cutânea em ratos, revelavam que os ossos homógenos frescos eram altamente

antigênicos, e que a propriedade de sensibilização era bastante diminuída nos enxertos

submetidos a congelamento intenso, e mais ainda, nos ossos liofilizados.

40

La Trenta et. al. (1989) realizaram estudo experimental em cães para

avaliar a fixação rígida em relação a fixação não rigída na incorporação de enxertos

ósseos. Concluíram que os ossos fixados com mini-placas e parafusos apresentaram

volume final maior do que aqueles fixados com fio de aço, também observaram que os

fragmentos fixados com placas e parafusos exibiam união óssea com a área receptora,

enquanto os enxertos fixados com fios de aço apresentavam união predominantemente

fibrosa.

2.4 DENSITOMETRIA ÓSSEA

Pinto (1964) estudou a mineralização no processo de reparo em feridas

de extração dental em cães utilizando densitometria óptica radiográfica, comparando

esses resultados com os da microscopia de fluorescência. Outros estudos utilizando

várias técnicas e programas de densitometria foram realizados por diversos autores,

objetivando melhor entendimento do processo de reparo ósseo nas diversas áreas da

medicina e nos mais variados tipos de modelos biológicos (cães, gato, macaco, rato,

coelho, homem, porco), e quando comparados aos resultados histológicos e

radiográficos convencionais demonstraram ser um exame de grande eficácia (BODNER

et al., 1993; BOZZO et al., 2004; BRÄEGGER et al., 1987; CARVALHO et al., 1978,

1980; DUINKERKE et al., 1977; LOUZADA, 1988; MIYAHARA, 1987;

MORASOLLI, 2004; PELISSONI et al., 2003; ROSE et al., 2005; SIERASKI;

CORCORAN, 1984; VILLAREAL et al., 2000).

Estudos de avaliação densitométrica de processos fisiológicos normais e

situações que possam afetar a qualidade do osso sistemicamente também têm sido

realizados, relacionando idade cronológica com a densidade óssea (ATKINSON, 1965;

41

GARCIA, 1995), ação de medicamentos no metabolismo, alterações hormonais e

condições patológicas (BOZZO et al., 2004; LOUZADA et al., 2001; PELISSONI et

al., 2003; RAHAL et al., 2002; SCHNEIDER, 1984).

Scarparo (1995) referiu-se ao ultra-som, raios gama e raios X como

métodos disponíveis para a mensuração não invasiva da massa óssea, que vai desde

interpretações subjetivas radiográficas até métodos sofisticados como a ativação de

nêutrons.

Meurer (2000) e Meurer et al. (2003) analisaram a densidade na região

parassinfisária de mandíbulas humanas, comparando o sistema DIGORA com as

unidades de medidas de HOUNSFIELD, concluindo que é possível utilizar a escala

HOUNSFIELD para avaliação da densidade em mandíbulas humanas, bem como o

sistema digora com resultados estatisticamente iguais nas duas técnicas de medição.

A densitometria óssea tem sido referida como recurso útil no diagnóstico

e orientação terapêutica com vistas ao tratamento de doenças osteometabólicas, estudo

de reparações ósseas de fraturas e procedimentos cirúrgicos (FONSECA, 1999;

LOUZADA et al., 1998a, 1998b), bem como na avaliação da reparação de fraturas sob

os efeitos de medicamentos que interferem na reparação óssea (BOZZO et al. 2004)

Dentre as técnicas hoje disponíveis se tem a absorciometria por fóton

único, a absorciometria por fóton duplo e a tomografia computadorizada quantitativa,

cuja aplicação em mandíbula é considerada difícil, devido irregularidade morfológica

do osso (LOUZADA; MESQUITA FILHO, 1999; MEURER, 2000; RAHAL et al.,

2002).

Erros inerentes à não padronização radiográfica limitavam a utilização

do método densitométrico, mas que tais problemas poderiam ser superados quando do

uso de uma escada de alumínio, radiografada concomitantemente ao material de estudo,

42

passando, portanto, por todas as fases do processamento radiográfico (DUINKERKE et

al., 1977; SCHNEIDER, 1984; JEFFCOAT et al. 1984; LOUZADA, 1994).

43

3

33

3

33

3

P

PP

P

PP

P

R

RR

R

RR

R

O

OO

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OO

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OO

O

44

3 PROPOSIÇÃO

Perante o avanço da ciência odontológica e a presença de

questionamentos ainda sem respostas, o presente trabalho teve como objetivo avaliar

por meio da análise quantitativa da densidade óptica na imagem digital direta realizada

pelo aparelho Lunar dpx (DEXA), em períodos controlados, o processo de incorporação

óssea dos enxertos autógeno, homógeno e heterógeno humano em mandíbulas de

suínos, bem como, se após a obtenção, processamento e armazenamento dos ossos para

enxerto homógeno, os mesmos se encontravam estéreis.

45

4

44

4

44

4

M

MM

M

MM

M

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AA

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AA

A

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OO

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D

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D

O

OO

O

OO

O

46

4 MATERIAL E MÉTODO

Foram utilizados dez suínos da raça Large white (cinco machos castrados

e cinco fêmeas), com peso corporal em torno de 25 Kg inicialmente, constituindo-se três

grupos de dois animais cada e um grupo de três animais, respectivamente referentes aos

períodos de estudo de sete, trinta, sessenta e noventa dias, sendo um animal utilizado

como doador para o osso homógeno congelado, que foi retirado do fêmur, classificados

conforme esquema abaixo:

TEMPOS DE SACRIFÍCIO:

P3 – P4 : 7 DIAS

P5 – P6 : 30 DIAS

P1 – P2 – PA: 60 DIAS

P8 – P9: 90 DIAS

Para indução anestésica, foi utilizado Acepram 1% (Acepromazina

10mg/ml. Univet S.A.- Indústria Veterinária), na dose de 0,5 mg/kg associando-se

morfina 10 mg/ml (laboratório Cristália), também na dose de 0,5 mg/kg. Decorridos

vinte minutos, procedeu-se à anestesia com Cloridrato de Ketamina 1 g/10 ml, na dose

média de 20 mg/kg intramuscular, associando-se Diazepam 5 mg/ml, na proporção de

1mg/kg de massa corporal. Foi realizada suplementação anestésica local à base de

infiltração de cloridrato de mepivacaína 2% com adrenalina 0,03 UI/ml (Laboratório

DFL).

Após anestesia e antissepsia extra-oral com PVPI, para incisão na área

receptora, foi realizada infiltração de anestésico local à base de mepivacaína 2% com

adrenalina (DFL) sendo realizada uma incisão com bisturi número 3 e lâmina 15c,

extra-oral na altura do ângulo mandibular direito (incisão de Risdon), divulsão por

planos e descolamento subperiosteal para exposição do osso. A seguir, o osso

47

mandibular foi preparado com perfurações de brocas carbide número 702 para ponta

reta a 30.000 rpm sob irrigação constante de soro fisiológico a 0,9 %. Após foi

removido com o uso de serra reciprocante um bloco de osso autógeno do ângulo

mandibular com dimensão de aproximadamente 1 cm

2

, que após ser devidamente limpo

os tecidos moles como músculo e periósteo, foi fixado na porção mais posterior da

mandíbula com parafuso de titânio, autorosqueante, da marca “MDT”, seguido pela

fixação do bloco ósseo homógeno intermediário e mais anteriormente pelo bloco de

osso heterógeno humano congelado, o local foi irrigado com soro fisiológico a 0,9% em

abundância e o retalho colocado em posição, procedendo-se à sutura com fio vicryl 4-0

por planos e na pele nylon 4-0 com pontos interrompidos.

A conduta terapêutica pós-cirúrgica adotada foi aplicação via

intramuscular de 4 ml de fenilbutazona sódica uma hora após procedimento cirúrgico,

com a finalidade de controlar o quadro inflamatório local e diminuir a dor pós-

operatória, e Gentamicina 80 mg profilaticamente contra possível infecção, os animais

foram mantidos em baias individuais, com água e comida ad libitum.

Ao final do período experimental referente a cada grupo, os animais

foram sacrificados por injeção endovenosa com dose excessiva de Tiopental e cloreto de

potássio, e as mandíbulas removidas.

O material obtido foi analisado densitometricamente, pelo aparelho DPX

da “Lunar”, com as especificações do fabricante, após calibração padrão, sendo

programado para captar as imagens em todas as peças com:

- Aquisição: apendicular

- Tipo: osso 1

- Modo: alta resolução

- Tensão (Kv): 76

48

- Corrente (mA): 150

- Colimação: fino

- Tamanho da amostra: 0,15 X 0,3

- Intervalo da amostra: 1/64

- Largura do exame (mm): manual 40mm

- Comprimento do exame (mm): manual 50mm

O osso do tipo heterógeno humano congelado utilizado nesta pesquisa foi

adquirido do Hospital Universitário de Marília (UNIOSS). A técnica de obtenção,

retirada, processamento, armazenamento e distribuição do osso do tipo homógeno usado

neste trabalho seguiu rigorosamente as normas utilizadas por esse banco de tecidos

músculo-esquelético, onde para um melhor entendimento explicaremos abaixo esta

rotina:

MANUAL DE ROTINA DE PROCEDIMENTOS UTILIZADOS PELO BANCO

DE TECIDOS MÚSCULO-ESQUELÉTICO

1 PROTOCOLO DE TRIAGEM DO DOADOR

2 RETIRADA DO TECIDO

3 TRANSPORTE AO BANCO

4 PROCESSAMENTO

5 ARMAZENAMENTO

6 DISTRIBUIÇÃO

7 RASTREABILIDADE

8 FORMULÁRIOS

49

1 PROTOCOLO DE TRIAGEM

1.1 DOADOR:

1.1.1 CRITÉRIOS DE SELEÇÃO PARA DOADOR CADÁVER

A seleção inicial é realizada através da Central de Transplantes ou

pelo(a) técnico(a) de plantão. A decisão de aceitar ou rejeitar um doador é feita pelo

Diretor Médico do Banco de Tecido Músculo Esquelético. Os critérios a seguir são

considerados durante a decisão no processo de seleção:

TODOS OS CRITÉRIOS DE SELEÇÃO DO DOADOR ESTÃO

PUBLICADOS NO SITE OFICIAL DO MINISTÉRIO DA SAÚDE NA PORTARIA

1686 DE 18.09.2002. SITE: www.saude.gov.br/transplantes

Estocagem:

Após a retirada dos tecidos, estes podem ficar estocados em freezer a -

25

o

C ou -40

o

C, aguardando envio para o B.T.M.E. (Banco de Tecido Músculo

Esquelético) o que deve ocorrer o mais rápido possível. Os tecidos devem ser

transportados em gelo comum para tempo de transporte inferior a 6 horas e em gelo

seco para períodos de até 24 horas.

Sorologia:

Os exames sorológicos do doador devem possuir resultados negativos e

são fornecidos pelo SNT.

Histórico Médico: fatores de exclusão que consta na portaria 1686

50

1.1.2 TESTES REQUERIDOS PARA DOADORES:

Constam da portaria 1686

Testes sorológicos são realizados através das Centrais de Transplante ou

pelo B.T.M.E. O exame sorológico realizado pela Central de Transplante inclui:

Sífilis (VDRL)

Chagas – 2 testes que podem ser hemoaglutinação, Elisa ou Imunofluorescência.

- A-HIV I e II – 2 testes

- HbsAg

- A-HCV

- A-HTLV-I

- Tipagem ABO/Rh

O B.T.M.E. realiza exame sorológico inclusive para CMV (IgG e IgM) e Toxoplasmose

(IgG e IgM).

Os testes para PCR são realizados em laboratório conveniado ao B.T.M.E.

- HIV

- HBV

- HCV

- Cultura para fungos

- Cultura para bactérias aeróbias.

Os tecidos não são liberados para processamento antes do resultado

negativo para os testes sorológicos, PCR e culturas dos tecidos.

1. 1. 3 COLETA DE AMOSTRA DE SANGUE PARA PCR

51

1.1.4 COLETA DE AMOSTRA PARA CULTURA PARA BACTÉRIAS

AERÓBICAS

Seguindo normas assépticas, fazer um esfregaço de toda a extensão do

tecido e encaminhar ao laboratório de bacteriologia do Hospital Universitário de Marília

(HU).

1.1.5 COLETA DE AMOSTRA PARA CULTURA PARA FUNGOS

Seguindo normas assépticas, fazer um esfregaço de toda a extensão do

tecido e encaminhar ao laboratório de bacteriologia do HU.

O soro de um doador deve ser armazenado em congelador a 20

o

C

negativos, por um mínimo de 2 anos.

2 RETIRADA DOS TECIDOS

2.1 MATERIAIS QUE COMPÕEM A CAIXA DE COLETA:

2.2 MATERIAIS QUE COMPÕEM A CAIXA CIRÚRGICA:

2.3 PREPARAÇÃO DO DOADOR PARA COLETA:

A sala de cirurgia deve ser a mais limpa possível, apropriada para uma

cirurgia limpa de alto risco. Na sala deve estar, além do doador, a equipe de captação e

o material vindo do B.T.M.E.

52

2.3.1 PREPARO DO DOADOR:

O preparo do doador é de extrema importância. Para que os tecidos

retirados tenham qualidade para aplicação médica o doador deve estar devidamente

preparado com todos os rigores dos procedimentos cirúrgicos ortopédicos.

2.4 PROCEDIMENTO PARA A RETIRADA CIRÚRGICA DE TECIDOS:

As incisões só devem ser feitas sobre a pele intacta, qualquer sinal de

lesão deve ser evitado, como feridas ou abrasões. As lâminas dos bisturis devem ser

trocadas após a incisão da pele e periodicamente durante a retirada. A retirada deve ser

feita por cirurgião e materiais cirúrgicos distintos em cada lado do corpo, as luvas

devem ser trocadas com freqüência. As estruturas a serem retiradas devem ser

manipuladas o mínimo possível e sempre através de compressas.

TECIDOS RETIRADOS

1- TECIDOS MOLES: antes da retirada dos ossos, realiza-se a captação da fáscia lata

no terço médio da coxa, retirada do tendão tibial anterior.

2- TÍBIA:

3- FÍBULA:

4- TENDÃO CALCÂNEO

5- FÊMUR:

6- ÚMERO:

7- RÁDIO:

8- ULNA:

9- PÉLVIS:

53

2.5 PROCEDIMENTO PARA A EMBALAGEM DE TECIDOS PARA

TRANSPORTE E ESTOCAGEM.

O procedimento estabelecido para embalagem de tecidos é designado

para eliminar qualquer possibilidade de contaminação durante o transporte dos tecidos

coletados ao B.T.M.E. Este procedimento é realizado conforme os tecidos são retirados

do doador pelos cirurgiões.

Depois de colhidas as culturas, o tecido é inserido em um saco plástico e

fechado com abraçadeira; em seguida é colocado em um segundo saco plástico e

fechado com abraçadeira, identificado com as etiquetas estéreis definidas previamente;

este é inserido em outro saco plástico e também fechado com abraçadeira. Todos os

tecidos são colocados, depois de embalados, dentro de um único saco plástico e

colocados dentro da caixa de coleta, as identificações claramente indicam o tecido e o

código do doador.

O pacote é então colocado dentro da caixa de coleta com gelo reciclável e

encaminhamento ao B.T.M.E, onde os tecidos devem ser congelados o mais rápido

possível.

2.6 RECONSTRUÇÃO DO CADÁVER

A reconstrução do corpo é realizada somente após a retirada de todos os

tecidos e embalagem destes.

54

3 TRANSPORTE AO BANCO

Os tecidos embalados são colocados em caixa térmica, mantendo à

temperatura inferior a 4 graus Celsius para transporte sendo levado ao B.T.M.E.

acompanhado do termo de doação.

Os tecidos são congelados a 80°C negativos. Este congelador está

instalado na sala de armazenamento do BTME, localizada no subsolo 04 do Hospital

Universitário da Universidade de Marília, em área com gerador próprio evitando a falta

de energia por tempo prolongado (portaria 904 de 16 de agosto de 2000) onde

permanecerão congelados aguardando o resultado dos exames sorológicos pelo

Laboratório de Analises Clinicas do HU.

Após a liberação dos exames sorológicos com resultados negativos, os

tecidos ósseos serão encaminhados para a Radiologia em caixas térmicas apropriadas

contendo gelo comum ou reciclado, localizado no subsolo 02, onde serão realizadas

imagens para avaliação de qualidade dos tecidos antes de serem liberados para o

processamento.

4 PROCESSAMENTO

Todas as etapas de processamento que compreende desde o

descongelamento em temperatura ambiente, processamento propriamente dito e

embalagem são realizados dentro do centro cirúrgico de processamento (sala

climatizada, contendo fluxo laminar). Imediatamente antes do início do processamento

duas placas de Petri contendo agar sangue, são colocadas na sala, em cantos opostos,

para identificação de possíveis germes e após o processamento são encaminhadas para o

Laboratório de Analises Clinicas do HU para cultura.

55

Os ossos são submetidos a esqueletização, que consiste na remoção de

todas as partes moles na região das inserções capsulares e ligamentares (periósteo,

cartilagens, vasos etc) nele fixados que serão descartados, sendo osteotomizados, com

auxílio de serra oscilante em tamanhos preestabelecidos em peças, blocos e triturado.

OSSO TRITURADO

Os fragmentos ósseos são triturados e lavados em solução salina

aquecida (facilitando a remoção de gorduras).

O osso preparado permanece por 30 minutos em solução antibiótica a

base de vancomicina e polimixina, e posteriormente parcialmente desidratado por

pressão negativa para remover o excesso de umidade. São embalados em três sacos

plásticos de poliamida estéreis que receberão etiqueta (nº do lote, data do

processamento, validade e temperatura de armazenamento) especiais para suportarem o

congelamento.

OSSO EM FRAGMENTOS

Com auxílio de serra oscilante e cinzéis, são preparados fragmentos

ósseos predeterminados:

Os tamanhos serão variados, de acordo com a morfologia óssea, para

possibilitar melhor aproveitamento do segmento Após serem cortados permanecem por

15 minutos em solução salina aquecida soro fisiológico a 0,9% (facilitando a remoção

de gorduras) e a remoção do tecido mole intramedular. Os blocos de ossos preparados

permanecem por 30 minutos em solução antibiótica (vancomicina e polimixina) e

56

depois são parcialmente desidratados por pressão negativa para remover o excesso de

umidade.

São embalados em três sacos plásticos de poliamida estéril que receberá etiqueta (n.º do

lote, data do processamento, validade e temperatura de armazenamento) especial para

suportar o congelamento.

OSSO EM SEGMENTOS

Os ossos longos (fêmur, tíbia, úmero, ulna e rádio) são osteotomizados

produzindo-se peças compostas por:

- segmentos epífisio-metafisários proximais;

- segmentos diafisários;

- segmentos epífisio-metafisários distais.

Os ossos da pelve serão conservados com separação em:

- Ilíaco (bi-cortical, tri-cortical, medular e córtico-medular);

- acetábulo com porção do ilíaco e ísquio;

- púbis e ísquio conjuntos;

- cabeça femoral.

São embalados em três sacos plásticos de poliamida estéreis que

receberão etiqueta (nº do lote, data do processamento, validade e temperatura de

armazenamento) especiais para suportarem o congelamento, e todas as peças são

radiografadas com régua graduada para evitar posterior manipulação na escolha de

tamanho adequado para o receptor.

57

5 ARMAZENAMENTO

Os tecidos ósseos devem ser armazenados a temperatura igual ou inferior

a 80 graus Celsius negativos por um período máximo de cinco anos. Existe planilha

com checagem da temperatura dos congeladores duas vezes ao dia, com intervalo

máximo de 12 horas entre os registros. De cada lote processado é retirado um corpo de

prova que permanecerá armazenado caso haja necessidade de posterior comprovação de

qualidade. Após a liberação dos resultados dos exames bacteriológicos colhidos durante

o processamento, o material estará disponível para utilização.

6 DISTRIBUIÇÃO

Os tecidos liberados para utilização são encaminhados ao local de

solicitação em embalagens térmicas com controle da temperatura interna em 4 graus

Celsius negativos, respeitando-se inicialmente o provável período de tempo necessário

ao transporte:

São enviados ao destino:

- formulário com todos os dados do tecido encaminhado

- orientações quanto à utilização dos tecidos: tecidos disponibilizados.

7 RASTREABILIDADE

A equipe transplantadora deve notificar ao BTME, em prazo máximo de

48 horas após o transplante, todas as informações relativas ao receptor, e

posteriormente, quaisquer efeitos adversos que venham a ocorrer ao nestes.

É dever do B.T.M.E. anexar os dados do receptor ao registro e prontuário

do doador e comunicá-los a CNCDO (Central de Notificação Captação e Distribuição

de Órgãos) em relatórios mensais.

58

8 FORMULÁRIOS

Formulário de Anamnese do doador

• Termo de avaliação do doador

• Termo de Processamento

• Etiqueta que acompanha o tecido

• Documento de Solicitação de tecidos

• Documento de Conformidade

• Cadastro e autorização do receptor

59

5

55

5

55

5

R

RR

R

RR

R

E

EE

E

EE

E

S

SS

S

SS

S

U

UU

U

UU

U

L

LL

L

LL

L

T

TT

T

TT

T

A

AA

A

AA

A

D

DD

D

DD

D

O

OO

O

OO

O

S

SS

S

SS

S

60

5 RESULTADOS

Após o sacrifício dos animais nos tempos de P3 – P4: 7 dias, P5 – P6: 30 dias, P1 – P2 –

PA : 60 dias e P8 – P9: 90 dias.

Foi realizada, inicialmente, análise de variância para testar as seguintes hipóteses:

- Todas as médias da densitometria dos animais são iguais;

- Todas as médias da densitometria dos tratamentos são iguais;

- As médias das interações animal*Tratamento são iguais.

Em seguida foram calculadas as médias da densitometria para cada animal e para cada

um dos tratamentos.

Tabela 1 – Análise de variância para as observações da densitometria.

Causas de variação

Graus de

liberdade

Somas de

Quadrados

Médios

F p-valor

Animal

Tratamento

Animal*Tratamento

Resíduo

8

2

16

108

3,487

1,901

1,983

1,732

0,436

0,951

0,124

0,016

27,174

59,262

7,726

0,00000

Total Corrigido 134 9,103

Pela Tabela 1 nota-se que os p-valores são todos menores que 1%, ou 5% ,

portanto, todas as hipóteses foram rejeitadas aos níveis de 1% e de 5%. Concluindo-se

que existem diferenças significativas tanto entre os animais quanto entre os enxertos

61

(autógeno, homógeno, heterógeno) e que os animais reagem de forma diferente em cada

tratamento.

Na tabela 2 é apresentado a média, erro padrão e intervalo de 95% de confiança

da média da densitometria para cada animal. O gráfico a seguir demonstra o

comportamento das médias individualmente.

Tabela 2 – Médias, erro padrão e intervalo de 95% de confiança para a

densitometria de cada animal.

Animal

Número de

observações

Média da

Densitometria

Erro padrão

da média

Intervalo de 95% de

confiança

P1

15

0,582733

0,032703

( 0,517910; 0,647556)

P2

15

0,316333

0,032703

( 0,251510; 0,381156)

P3

15

0,482800

0,032703

( 0,417977; 0,547623)

P4

15

0,433267

0,032703

( 0,368444; 0,498090)

P5

15

0,813800

0,032703

( 0,748977; 0,878623)

P6

15

0,532000

0,032703

( 0,467177; 0,596823)

P9

15

0,250933

0,032703

( 0,186110; 0,315756)

P8

15

0,636200

0,032703

( 0,571377; 0,701023)

PA

15

0,414867

0,032703

( 0,350044; 0,479690)

62

P1 P2 P3 P4 P5 P6 P9 P8 PA

Porco

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

0.8

0.9

Densiometria

FIGURA 1 - Gráfico de Médias da densitometria dos animais.

P1 P2 P3 P4 P5 P6 P9 P8 PA

Porco

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

0.8

0.9

1.0

Densiometria

FIGURA 1a - Gráfico de Médias da densitometria dos animais com intervalos de

95% de confiança.

63

Na tabela 3 é apresentada média, erro padrão e intervalo de 95% de confiança na

média da densitometria para cada tratamento. O gráfico a seguir demonstra o

comportamento das médias de cada um dos tratamentos.

Tabela 3 – Médias, erro padrão e intervalo de 95% de confiança para a

densitometria de cada animal tratado.

Tipo de

enxerto

Número de

observações

Média da

Densiometria

Erro padrão

da média

Intervalo de 95% de

confiança

Autógeno

45

0,334333

0,018881

(0,296908; 0,371759)

Homógeno

45

0,537244

0,018881

(0,499819; 0,574670)

Heterógeno

45

0,616067

0,018881

(0,578641; 0,653492)

Autógeno Homógeno Heterógeno

Tratamento

0.30

0.35

0.40

0.45

0.50

0.55

0.60

0.65

Densiometria

FIGURA 2a - Gráfico de médias da densitometria para cada tratamento.

64

Autógeno Homógeno Heterógeno

Tratamento

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

Densiometria

FIGURA 2b - Gráfico de médias da densitometria para cada tratamento com

intervalos de 95% de confiança.

Aqui observou crescimento na média sendo que o tratamento heterógeno

apresentou maior média.

O gráfico abaixo demonstra o comportamento da média da densitometria de cada animal

em cada um dos tratamentos.

65

Autógeno

Homógeno

Heterógeno

P1 P2 P3 P4 P5 P6 P9 P8 PA

Porco

0.0

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

0.8

0.9

1.0

1.1

1.2

Densiometria

FIGURA 2c - Médias da densitometria para cada interação de tratamento/animal

tratado.

Autógeno

Homógeno

Heterógeno

P1 P2 P3 P4 P5 P6 P9 P8 PA

Porco

-0.2

0.0

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

1.2

1.4

Densiometria

FIGURA 2d - Gráfico de médias da densiometria para cada interação tratamento e

animal com intervalos de 95% de confiança.

Nesses gráficos se observou como cada animal reagiu ao tratamento, a exemplo

66

do animal P9 cujas médias foram quase iguais em cada tratamento. Já o animal P5

apresentou influência do tratamento. É também possível analisar as trocas, por exemplo,

a maioria dos animais apresentou médias maiores para o tratamento do enxerto

heterógeno enquanto que para o animal P8 foi o de menor média.

Na análise notou-se que os resíduos seguem aproximadamente uma distribuição

normal, logo a análise de variância (ANOVA) é válida (Fig. 3).

-4 -3 -2 -1 0 1 2 3

Resíduo

-4

-3

-2

-1

0

1

2

3

4

Valores Esperados da distribuição Normal

.01

.05

.15

.35

.65

.85

.95

.99

FIGURA 3 – Gráfico de probabilidade normal dos resíduos

Nas tabelas 4 e 5 estão os resultados dos testes de comparação de médias (duas a

duas).

O teste utilizado foi o de Scheffé ao nível de 5% de significância.

67

Tabela 4 – P-valores do Teste de Scheffé para os pares de médias da

densitometria de cada animal.

Animal (média)

Animal

P1

(0,583)

P2

(0,316)

P3

(0,483)

P4

(0,433)

P5

(0,814)

P6

(0,532)

P9

(0,251)

P8

(0,636)

PA

(0,414)

P1

0,0002 0,7894 0,2484 0,0032 0,9963 0,0000 0,9947 0,1200

P2

0,0002 0,1275 0,6046 0,0000 0,0090 0,9798 0,0000 0,8025

P3

0,7894 0,1275 0,9969 0,0000 0,9970 0,0031 0,2155 0,9744

P4

0,2484 0,6046 0,9969 0,0000 0,8007 0,0607 0,0197 0,9999

P5

0,0032 0,0000 0,0000 0,0000 0,0000 0,0000 0,0767 0,0000

P6

0,9963 0,0090 0,9970 0,8007 0,0000 0,0000 0,7471 0,6022

P9

0,0000 0,9798 0,0031 0,0607 0,0000 0,0000 0,0000 0,1420

P8

0,9947 0,0000 0,2155 0,0197 0,0767 0,7471 0,0000 0,0063

PA

0,1200 0,8025 0,9744 0,999 0,0000 0,6022 0,1420 0,0063

Valores inferiores a 5% indicam que há diferença entre o par de médias.

Por exemplo, a média do animal P2 é diferente da média do animal P1 (p-valor =

0,0002).

68

Tabela 5 – P-valores do Teste de Scheffé para os pares de médias da densitometria para

cada tratamento. Valores inferiores a 5% indicam que há diferença entre o

par de médias.

Tratamento (médias) Tipos de

enxerto

Autógeno Homógeno Heterógeno

Autógeno - 0,000000 0,000000

Homógeno 0,000000 0,015145

Heterógeno 0,000000 0,015145 -

Valores inferiores a 5% indicam que há diferença entre o par de médias.

Pela Tabela 5, as médias de todos os pares de tratamentos são diferentes ao nível de

significância de 5%.

69

6

66

6

66

6

D

DD

D

DD

D

I

II

I

II

I

S

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S

SS

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C

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SS

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SS

S

SS

S

Ã

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O

OO

O

OO

O

70

6 DISCUSSÃO

Neste trabalho, o preparo do leito receptor foi realizado de acordo com

os preceitos cirúrgicos comumente utilizados na realização de enxertos ósseos, e as

decorticalizações ou perfurações, foram realizadas com o objetivo de aproximar o

enxerto à medula óssea da área receptora, que é fonte de vasos sangüíneos e células

osteogênicas (ALBERIUS et al., 1996; CARVALHO; VASCONCELOS, 2000;

GORDH et al., 1997; PALECKIS, 2004). Este procedimento é um cuidado mais recente

dos investigadores, onde trabalhos mais antigos descreviam a simples colocação do

enxerto sobre o leito, sem outro preparo cirúrgico além do desnudamento muco-

periosteal (FONSECA et al., 1980; THOMPSON; CASSON, 1970; WILKES et al.,

1985).

O sucesso em se evitar problemas de infecção associados aos

procedimentos cirúrgicos é maior com o isolamento da cavidade bucal, haja vista a

impossibilidade de adequada higiene bucal dos animais na fase pós-operatória, por esta

razão, foi escolhida no presente trabalho a via de acesso extrabucal, na área

submandibular. A profilaxia antibiótica também contribuiu nesse aspecto.

No que diz respeito a diferenças morfológicas e histológicas ósseas entre

o porco e o humano, Atkinson (1965), Powell et al. (1973) e Troulis et al. (2000)

relatam que suas densidades e metabolismo ósseo são semelhantes, fato que estimulou a

realização de outros estudos de tecido ósseo em suínos, como os trabalhos Zhang et al.

(2001) que analisaram a densidade óssea por meio da tomografia computadorizada,

assim como Marqueti (2003); Monti (2005); Saka et al. (2002); Toledo (2004), que

corroboraram a eficácia da utilização dos suínos como modelos experimentais viáveis.

71

Os estudos nas áreas odontológica e médica têm sido concentrados na

investigação da dinâmica de formação do tecido ósseo e nas características mecânicas

do osso neoformado (JIHUA et al., 2002; MEYER et al., 2001; NOVAES et al., 2004).

O objetivo dos estudos clínicos, na sua maioria, tem sido determinar e

avaliar se o tecido ósseo neoformado possui propriedades mecânicas suficientes para

resistir aos esforços aos quais será submetido sem se fraturar (HYATT, 1960). Frente à

necessidade de se avaliar a qualidade do tecido ósseo neoformado, estudos com

densitometria óssea e suas aplicações na Odontologia tem sido cada vez mais freqüentes

(LANDIN et al., 2002; MANSINI, 2000; SIMÕES et al., 2003).

A avaliação da qualidade do tecido ósseo por meio de densitometria é

largamente utilizada na Medicina, principalmente no diagnóstico e acompanhamento em

ossos longos da osteoporose. Em estudos que utilizaram aparelho de raios X (LANDIN

et al., 2002; LODDER et al., 2004; MANSINI, 2000; SIMÕES et al., 2003)

odontológico, há discussões sobre as possíveis variações no tempo de exposição, Kvp e

Ma em diferentes tomadas radiográficas, mesmo quando realizadas em um mesmo

aparelho com as mesmas calibrações. Essas variações poderiam afetar os resultados

finais da densidade óssea, o que evidentemente não acontece nos aparelhos Dexa.

Durante os últimos 20 anos, algumas técnicas de imagem têm sido

desenvolvidas para quantificar, de maneira mais sensível a massa óssea. São elas a

tomografia computadorizada quantitativa (QCT), absorciometria por fóton único (SPA),

a absorciometria por fóton duplo (DPA), a absorciometria por raios-X de dupla energia

(DEXA) e finalmente a ultra-sonometria óssea. A QCT é um método que consegue

medir separadamente osso trabecular e osso cortical em nível de coluna, sendo

excelente na definição das pequenas alterações que ocorrem inicialmente em osso

trabecular. Mais recentemente, foi desenvolvida a QCT periférica em ossos do esqueleto

72

apendicular, porém a quantidade de radiação gerada pelos tomógrafos e o seu alto custo,

são fatores limitantes ao seu uso rotineiro.

Os parâmetros comparativos avaliados pelos diversos métodos de

imagem englobam a acurácia ou exatidão, a precisão ou reprodutibilidade, a

sensibilidade e especificidade diagnóstica, a relação custo/benefício, a segurança

relacionada à dose de radiação, a comodidade ou praticidade e por fim a rapidez do

método empregado. Ao analisarmos os resultados das medidas de massa óssea

realizadas pelos diferentes métodos de imagem, devemos levar em consideração a

variabilidade intra e inter paciente, intra e inter-operador e intra e inter-equipamento. A

densitometria por absorção de raios-X de dupla energia DEXA, é atualmente

considerada a melhor técnica para a medida da massa óssea, em função da sua precisão,

duração, segurança e custo.

A densidade óssea medida por esses aparelhos é definida pela equação:

Y = I - (a1t1 + a2t2 + a3t3), onde:

Y = densidade óssea por área ou gramas por cm2;

I = pico de massa óssea;

a1 = fatores relacionados a senilidade;

a2 = fatores relacionados ao hipogonadismo;

a3 = fatores relacionados às doenças ósteometabólicas secundárias;

t = tempo.

No que diz respeito a diferenças morfológicas e histológicas ósseas entre

o porco e o humano, Atkinson (1965), Powell et al. (1973) e Troulis et al. (2000)

relatam que suas densidades e metabolismo ósseo são semelhantes, fato que estimulou a

realização de outros estudos de densidade óssea em suínos, como os trabalhos de

73

Robertson et al. (1980), que avaliaram densitometricamente o processo de reparo em

ramo de mandíbula após osteotomia. Christgau et al. (1998a, 1998b) utilizaram as

radiografias de subtração digital quantitativa para descobrir alterações nas densidades e

mudanças na massa de cálcio em mandíbulas, Holzhauer et al. (1998) estudaram

radiograficamente a densidade óssea dos defeitos de distração osteogênica, Zhang et al.

(2001) analisaram a densidade óssea por meio da tomografia computadorizada. No

presente trabalho, a densitometria foi a técnica de avaliação escolhida, ela tem sido

utilizada na determinação da densidade óssea por Louzada e Mesquita Filho (1999),

Vilarreal et al. (2000), Jeffcoat et al. (1984), Lee et al. (2004) e Morasolli (2004), onde

nos últimos anos ganhou novo impulso com o advento das imagens digitais, e dos

aparelhos específicos para esse fim como DEXA.

Para as reconstruções cirúrgicas das perdas ósseas ocasionadas por

fraturas, traumas, patologias ou ainda pela atrofia fisiológica do rebordo alveolar

decorrente de perdas dentárias que é progressiva e irreversível do esqueleto humano

(AMLER, 1969; PINTO et al., 2000), podemos utilizar implantes aloplásticos, enxertos

homógenos ou autógenos (BROWINIG, 1967; FONSECA, et al., 1997; HYATT, 1960).

Dentre os materiais aloplásticos é comum o uso de silicone, polifluoretano, polietileno -

Medpore e a hidroxiapatita (ELLIS III et al., 1985, OKAMOTO et al., 1998). Os

enxertos homógenos são também indicados e apresentam certo sucesso clínico, muito

embora os cuidados com o controle de infecção cruzada torna-se a maior desvantagem

destes. Dentre os mais comuns e citados, destacam-se a dura-máter, o osso liofilizado,

congelado ou fresco, e a cartilagem conservada (GARCIA JUNIOR, 1997; HYATT,

1960).

Estes tecidos surgiram como a opção mais próxima ao enxerto autógeno

e atualmente são submetidos a processamento laboratorial, a exemplo dos enxertos aqui

74

estudados, a fim de diminuir as respostas imunológicas e eliminar o risco das possíveis

infecções cruzadas. Este protocolo tenta manter a capacidade osteogênica do tecido,

muito embora não evidente em muitos trabalhos.

As dificuldades citadas não devem impedir a utilização de enxertos

autógenos, homógenos ou heterógenos, quando a sua aplicação estiver indicada,

lembrando sempre que as fontes de material autógeno são limitadas, impossibilitando,

muitas vezes, obter-se a quantidade de material necessária para correções de grandes

defeitos (OKAMOTO et al., 1991). Assim em pacientes onde não houver osso

disponível em quantidade suficiente, ou quando pequenas quantidades de material

forem necessárias, enxertos homógenos ou heterógenos complementares poderão ter sua

indicação (RIOS, 1995).

Considerando-se tais fatos, a utilização do osso homógeno congelado como

material alternativo tem adquirido grande importância, uma vez que é facilmente

encontrado no mercado nacional, na quantidade desejada e por um preço bastante

acessível em comparação a outras terapias, como a que emprega o osso autógeno. O

aspecto arquitetural tridimensional presente no osso homógeno congelado permite a

viabilização de um meio de compartimentalização de defeitos ósseos extensos de

maneira idêntica ao osso autógeno humano.

Os enxertos homógenos são utilizados há muito tempo desde que Bauer

(1910) iniciou pesquisas em cães demonstrando que boa parte do periósteo manteve-se

estável, embora o enxertos sofressem necrose na maioria dos casos, com a evolução,

muito tem se aprendido quanto a utilização desses enxertos, bem como, dos

mecanismos de conservação destes, a utilização dos tecidos de banco de ossos é uma

técnica utilizada no mundo todo desde a década de 40 (INCLAN, 1942; WILSON,

75

1951), existindo grandes vantagens na utilização destes enxertos, dentre elas evitar uma

segunda área cirúrgica (NATHER, 1991).

Com a atual ênfase na síndrome da imunodeficiência adquirida, há, por

vezes, relutância do paciente em aceitar enxerto de material de origem humana

(CALLAN; ROHRER, 1993; PURCHIO et al., 1992).

Por outro lado, deve-se levar em consideração que há anos, a utilização

de enxertos ósseos homógenos de cadáver, conservado em bancos de ossos, tem se

mostrado eficazes em inúmeras situações, principalmente na ortopedia em grandes

reconstruções para reparação de perdas ósseas extensas. Os protocolos de retirada,

conservação, esterilização e utilização destes materiais já estão estabelecidos em muitos

serviços de reconhecida experiência, com resultados muitas vezes satisfatórios que

justificam sua utilização em casos indicados. (BONFIGLIO et al., 1955; GARCIA et al.,

1992; MALININ, 1992; PARRISH, 1966; TOMFORD et al., 1983; STEFANI et al.,

1989).

Segundo Mizutami et al. (1990); Solomon (1991) e Ellis III; Sinn, (1993)

o homoenxerto em razão de ser congelado mantém sua capacidade de ser osteoindutor e

osteocondutor, associando-se ainda a as vantagens do tratamento por congelamento

trazer benefícios diminuindo sua antigenicidade (HART et al., 1986), tanto que não são

necessários medicamentos imunossupressores nestes tratamentos. Esta observação

também foi notada por Heiple et al. (1963), que verificou que nos enxertos do tipo

liofilizados a capacidade de reparação era ainda menor que nos enxertos congelados

devido ao processo de retirada de água deste e de esterilização por radiação que

diminuem suas propriedades biológicas em 50% (GOCLAWSKA, 1991).

Inúmeros são os tratamentos realizados por bancos de ossos na tentativa

de diminuir a antigenicidade destes, bem como, influenciarem positivamente o processo

76

de reparação ósseo, a desmineralização é largamente utilizada como tratamento, já que

as proteínas osteoindutoras (BMPs), encontradas na matriz óssea, apresentam grande

atividade quando o osso é submetido a descalcificação pelo ácido clorídrico (COLEN et

al., 1986; GOLDBERG; STEVENSON, 1987; GUO, et al., 1991). A liofilização para

armazenamento do osso consiste no resfriamento do osso a 70

o

C negativos por um

período após o qual o material é colocado em um liofilizador. Esse aparelho forma um

vácuo enquanto a temperatura é mantida a 35

o

C negativos, retirando até 95% de água

(REIS, 1989). Porém, tanto a liofilização quanto a desmineralização altera a força

mecânica do osso, impedindo seu uso em locais do esqueleto que necessitem de grande

suporte (HOBAR; BYRD, 1990; KHOURI et al., 1992). Existem ainda outras formas,

como: desproteinização, irradiação, ossos preservados em substâncias químicas como

álcool, glicerina, solução de beta-propiolactone e mertiolate, enxertos submetidos à

esterilização com gás de óxido de etileno (BANG, 1972; MEHRA et al., 1993), e até

mesmo o osso conservado em mel (AMENDOLA et al., 2003), esses processos, o qual é

submetido o enxerto, ajuda a melhorar em longo prazo a aceitação biológica do tecido

ósseo ao enxerto homógeno. Já o tratamento utilizado pela maioria dos bancos de ossos

do mundo consiste basicamente de limpeza dos tecidos moles aderidos ao osso como

periósteo, restos musculares e vasos, lavagem desses com substâncias que eliminam a

gordura e restos celulares em meio às trabéculas, banhos em substâncias

antimicrobianas, congelamento a aproximadamente 80º C negativos e

acondicionamento em embalagens que mantenham suas propriedades biológicas e de

esterilidade. Friedlander (1987) observou que os enxertos homógenos frescos eram

altamente antigênicos, e que os ossos submetidos a frio intensos, assim como os

liofilizados e congelados dos bancos de ossos, possuíam baixa antigenicidade.

77

Em nosso trabalho pudemos notar que existem diferenças significativas

tanto entre os porcos quanto entre os tratamentos (autógeno, homógeno e heterógeno

humano) e que os porcos reagem de forma diferente em cada tratamento, haja vista a

variância para as observações da densitometria quando comparados entre os porcos

(tabela 1).

De acordo com a tabela 3 e figura 2, podemos notar que o enxerto

autógeno obteve média densitométrica de 0,334333, seguido pelo enxerto homógeno

com média de 0,537244, e o enxerto heterógeno humano com 0,616067, uma vez que

todos os enxertos possuíam tamanho compatíveis podemos verificar que o enxerto do

tipo autógeno foi mais rapidamente reabsorvido que o homógeno que por sua vez foi

mais reabsorvido que o heterógeno humano, isso poderia ser explicado uma vez que a

origem destes enxertos são diferentes, bem como seu grau de corticalização.

Atualmente, sabemos que a densitometria representa um método muito

eficaz para verificação da massa óssea de determinada região, e de acordo com a figura

2a, podemos afirmar que o enxerto de osso heterógeno humano mostrou-se menos

suscetível a reabsorções, mantendo sua densidade óssea quase inalterada em todos os

animais, e nos tempos pós-operatórios utilizados neste experimento.

Como a densitometria é um método de medição de massa óssea

altamente confiável, e os valores encontrados em cada par de suínos foi ligeiramente

diferente em todos os tempos pós-operatórios, podemos citar que para cada enxerto

realizado temos um diferencial de reparação/absorção variável, podendo ser explicado

como uma predisposição individual de cada cobaia (P-valores do Teste de Scheffé para

78

os pares de médias da densiometria para cada tratamento, onde valores inferiores a 5%

indicam que há diferença entre o par de médias ver tabela 5).

Considerando-se os artigos analisados, os aspectos clínicos e histológicos

dos vários tipos de enxertos e tecidos utilizados nos procedimentos cirúrgicos atuais,

salientamos a importância das indicações e dos vários quadros clínicos que

naturalmente selecionam o tipo de enxerto utilizado. Evidentemente, que a semelhança

dos tecidos autógenos e homógenos com os dos receptores induzem a um resultado

melhor que os produtos sintéticos, desde que os princípios de obtenção, conservação e

manipulação destes materiais sejam obedecidos.

Considerando-se o incontestável valor da cirurgia experimental, seria

impossível compreender as respostas biológicas no ser humano sem as avaliações

realizadas em animais. A praticidade e o menor custo nos experimentos com pequenos

animais, como roedores, têm como inconveniente o fato de que, nestes, a reparação

óssea é facilitada e muito mais rápida do que em seres humanos e, portanto, pode não

ser predictiva ou similar (SCHIMITZ; HOLLINGER, 1986). A relação custo-beneficio

de um estudo em mamíferos maiores justifica a escolha do cão como o animal ideal

(OKLUND et al., 1986), porém mais recentemente verificamos essas mesmas

qualidades na escolha dos suínos.

Acreditamos que, dentre os enxertos disponíveis, a escolha deva sempre

que possível recair sobre o osso autógeno, pois este fornece ao leito receptor, células

com capacidade de neoformação óssea, fatores de crescimento e um arcabouço ósseo

imunologicamente idêntico ao leito receptor (BLOCK; KENT, 1993; BOYNE; JAMES,

1980; KLINGE et al., 1992; MEADOWS et al., 1993; MOY et al., 1993), a

reconstrução óssea utilizando enxertos ósseos autógenos desencadeia uma série de

eventos notáveis que culminam na sua incorporação e remodelação, onde os princípios

79

de ostegênese, osteoindução e osteocondução regem o processo e se expressam de

acordo com a natureza estrutural do enxerto. No entanto sabemos, que enxertos

autógenos requerem duas áreas operatórios, implicações psicológicas, maior risco

cirúrgico e, associado, ainda está o fator econômico.

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77

7

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7 CONSIDERAÇÕES FINAIS

Com base nos resultados encontrados e nas condições experimentais

deste trabalho, foi possível concluir que:

- O método de medição da densidade óssea pelo equipamento Dexa DPX da Lunar se

mostrou eficiente, com resultados que decresceram ao longo dos períodos de avaliação,

nos três grupos de enxerto.

- Em todas as fases do experimento os índices densitométricos evidenciaram que o osso

do tipo autógeno apresentou menor densidade óssea, seguido pelo osso do tipo

homógeno e por último pelo osso heterógeno humano, demonstrando menor reabsorção

deste.

- O processo utilizado para obtenção, processamento e armazenamento dos ossos

utilizados permitiu trabalhar com ossos estéreis.

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S

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S

83

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99

9

99

9

99

9

A

AA

A

AA

A

N

NN

N

NN

N

E

EE

E

EE

E

X

XX

X

XX

X

O

OO

O

OO

O

S

SS

S

SS

S

100

9 ANEXOS

9.1 ANEXO A

Os quadros abaixo demonstram os valores reais de densitometria encontrados

pelo aparelho DPX da Lunar, considerando-se a área analisada como sendo imutável

com 0,033 cm

2

e em número de cinco para cada enxerto, modificando apenas os valores

reais da densidade óssea, evidenciando-se uma diferença da concentração mineral óssea

real entre os enxertos realizados.

TEMPOS DE SACRIFÍCIO:

P3 – P4 : 7 DIAS

P5 – P6 : 30 DIAS

P1 – P2 – PA: 60 DIAS

P8 – P9: 90 DIAS

101

Animal P – 1

Tipos de enxerto

Áreas

analisadas

*CMO - gramas

ÁREA - cm

2

DENSITOMETRIA

g/cm

2

Osso autógeno A 0,019 0,033 0,573

B 0,015 0,033 0,461

C 0,014 0,033 0,416

D 0,010 0,033 0,311

E 0,011 0,033 0,350

Osso Homógeno A 0,019 0,033 0,580

B 0,022 0,033 0,659

C 0,022 0,033 0,677

D 0,017 0,033 0,523

E 0,011 0,033 0,332

Osso Heterógeno A 0,022 0,033 0,672

B 0,021 0,033 0,626

C 0,027 0,033 0,837

D 0,028 0,033 0,859

E 0,028 0,033 0,856

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 13 – Quadro do animal P1

102

Animal P – 2

Tipos de enxerto

Áreas

analisadas

*CMO – gramas

ÁREA - cm

2

DENSITOMETRIA

g/cm

2

Osso autógeno A 0,011 0,033 0,351

B 0,006 0,033 0,186

C 0,004 0,033 0,121

D 0,001 0,033 0,039

E 0,003 0,033 0,083

Osso Homógeno A 0,012 0,033 0,361

B 0,014 0,033 0,432

C 0,017 0,033 0,508

D 0,017 0,033 0,530

E 0,011 0,033 0,322

Osso Heterógeno A 0,014 0,033 0,418

B 0,017 0,033 0,511

C 0,011 0,033 0,333

D 0,010 0,033 0,314

E 0,008 0,033 0,236

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 14 – Quadro do animal P2

103

Animal P – 3

Tipos de enxerto

Áreas

analisadas

CMO – gramas ÁREA - cm

2

DENSITOMETRIA

g/cm

2

Osso autógeno A 0,005 0,033 0,164

B 0,007 0,033 0,222

C 0,008 0,033 0,236

D 0,004 0,033 0,277

E 0,007 0,033 0,225

Osso Homógeno A 0,020 0,033 0,615

B 0,020 0,033 0,600

C 0,014 0,033 0,442

D 0,008 0,033 0,259

E 0,013 0,033 0,388

Osso Heterógeno A 0,025 0,033 0,752

B 0,024 0,033 0,740

C 0,025 0,033 0,754

D 0,026 0,033 0,797

E 0,025 0,033 0,774

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 15 – Quadro do animal P3

104

Animal P – 4

Tipos de enxerto

Áreas

analisadas

CMO – gramas ÁREA - cm

2

DENSITOMETRIA

g/cm

2

Osso autógeno A 0,003 0,033 0,098

B 0,005 0,033 0,140

C 0,007 0,033 0,224

D 0,013 0,033 0,393

E 0,005 0,033 0,166

Osso Homógeno A 0,015 0,033 0,473

B 0,016 0,033 0,482

C 0,014 0,033 0,430

D 0,014 0,033 0,422

E 0,016 0,033 0,483

Osso Heterógeno A 0,025 0,033 0,770

B 0,024 0,033 0,736

C 0,018 0,033 0,550

D 0,014 0,033 0,432

E 0,023 0,033 0,700

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 16 – Quadro do animal P4

105

Animal P – 5

Tipos de enxerto

Áreas

analisadas

*CMO – gramas ÁREA - cm

2

DENSITOMETRIA

g/cm

2

Osso autógeno A 0,016 0,033 0,486

B 0,013 0,033 0,397

C 0,013 0,033 0,391

D 0,016 0,033 0,488

E 0,017 0,033 0,519

Osso Homógeno A 0,033 0,033 1,020

B 0,033 0,033 0,996

C 0,025 0,033 0,754

D 0,031 0,033 0,934

E 0,030 0,033 0,909

Osso Heterógeno A 0,040 0,033 1,233

B 0,041 0,033 1,252

C 0,031 0,033 0,937

D 0,037 0,033 1,122

E 0,028 0,033 0,869

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 17 – Quadro do animal P5

106

Animal P – 6

Tipos de enxerto

Áreas

analisadas

*CMO – gramas ÁREA – cm

2

DENSITOMETRIA g/cm

2

Osso autógeno A 0,013 0,033 0,411

B 0,015 0,033 0,453

C 0,013 0,033 0,405

D 0,013 0,033 0,400

E 0,013 0,033 0,388

Osso Homógeno A 0,022 0,033 0,684

B 0,019 0,033 0,591

C 0,018 0,033 0,539

D 0,019 0,033 0,567

E 0,019 0,033 0,590

Osso Heterógeno A 0,022 0,033 0,673

B 0,019 0,033 0,590

C 0,017 0,033 0,508

D 0,019 0,033 0,568

E 0,020 0,033 0,613

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 18 – Quadro do animal P6

107

Animal P – 8

Tipos de enxerto

Áreas

analisadas

*CMO – gramas ÁREA – cm

2

DENSITOMETRIA g/cm

2

Osso autógeno A 0,020 0,033 0,598

B 0,018 0,033 0,542

C 0,022 0,033 0,667

D 0,026 0,033 0,792

E 0,030 0,033 0,928

Osso Homógeno A 0,016 0,033 0,478

B 0,021 0,033 0,629

C 0,029 0,033 0,876

D 0,034 0,033 1,037

E 0,030 0,033 0,932

Osso Heterógeno A 0,012 0,033 0,352

B 0,012 0,033 0,376

C 0,011 0,033 0,340

D 0,017 0,033 0,510

E 0,018 0,033 0,536

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 19 – Quadro do animal P8

108

Animal P – 9

Tipos de enxerto

Áreas

analisadas

*CMO – gramas ÁREA - cm

2

DENSITOMETRIA g/cm

2

Osso autógeno A 0,002 0,033 0,067

B 0,009 0,033 0,282

C 0,008 0,033 0,229

D 0,010 0,033 0,304

E 0,006 0,033 0,184

Osso Homógeno A 0,011 0,033 0,343

B 0,013 0,033 0,387

C 0,013 0,033 0,391

D 0,001 0,033 0,017

E 0,013 0,033 0,382

Osso Heterógeno A 0,007 0,033 0,204

B 0,007 0,033 0,202

C 0,007 0,033 0,223

D 0,011 0,033 0,339

E 0,007 0,033 0,210

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 20 – Quadro do animal P9

109

Animal PA

Áreas

analisadas

CMO - gramas ÁREA - cm

2

DENSITOMETRIA g/cm

2

Osso autógeno A 0,008 0,033 0,243

B 0,009 0,033 0,263

C 0,010 0,033 0,290

D 0,010 0,033 0,302

E 0,004 0,033 0,130

Osso Homógeno A 0,012 0,033 0,355

B 0,013 0,033 0,390

C 0,017 0,033 0,512

D 0,008 0,033 0,257

E 0,003 0,033 0,082

Osso Heterógeno A 0,031 0,033 0,944

B 0,014 0,033 0,432

C 0,031 0,033 0,949

D 0,025 0,033 0,777

E 0,010 0,033 0,297

*CMO – concentração mineral óssea

Figura 21 – Quadro do animal PA

110

9.2 Anexo B

FIGURA 4 – Peça retirada do fêmur de suíno em processo de preparação dos blocos a

serem congelados.

FIGURA 5 – Anel de fêmur após retirada dos tecido moles.

111

FIGURA 6 – Blocos em banho de soro fisiológico com antimicrobiano vancomicina e

polimixina.

FIGURA 7 – Blocos acondicionados em invólucro estéril prontos para congelamento.

112

FIGURA 8 – Incisão de Risdon, divulsão e descolamento com acesso ao ramo e corpo

da mandíbula.

FIGURA 9 – Aparelho Dpx Dexa da Lunar em processo de captura da imagem.

113

FIGURA 10 – Imagem após captura pronta para analise densitométrica.

FIGURA 11 – Delimitação da área para análise da concentração mineral óssea

subdividida em A, B, C, D, E, na seqüência de autógeno homógeno e heterógeno,

repectivamente.

Área A

Área B

Área C

Área D

Área E

114

FIGURA 12 – Análise manual com resultados das respectivas áreas.

115

9.3 Anexo C

116

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