( PDF ) Biologia: manual de orientação

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MEC/SESG/SETC

Manual de Orientação

BIOLOGIA

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Direitos autorais exclusivos do

Ministério da Educação

Impresso no Brasil

Depósito legal na Biblioteca Nacional, conforme Decreto n.° 1.825, de 20 de dezembro de 1907.

Esta edição foi publicada pela

FAE — Fundação de Assistência ao Estudante, sendo

Presidente da República Federativa do Brasil

José Sarney

Ministro de Estado da Educação

Jorge Bornhausen

Secretário-Geral

Aloísio de Guimarães Sotero

Secretário de Ensino de 2.° Grau

Zeli Isabel Roesler

Presidente da FAE

Carlos Pereira de Carvalho e Silva

B615 Biologia: Manual de orientação/MEC, SESG. - Rio de Janeiro: FAE,

1987.

86 p.: il.; 28 cm. - (Série Ensino agrotécnico; 3)

Bibliografia.

ISBN 85-222-0207-9 Geral

ISBN 85-222-0210-9 Biologia

1. Biologia. I. Brasil. Secretaria de Ensino de 2º Grau. II. Fundação

de Assistência ao Estudante, Rio de Janeiro, ed. III. Série.

87-019 MEC/FAE/RJ CDD - 574

Coordenação-Geral

• Elizabeth Borges de Oliveira — SESG/SETC

• Eva de Araújo Galvão — SESG/SETC

Elaboração

• Antônio José Sampaio — EAF de Belo Jardim — PE

• Alberto Aciole Bonfim — EAF de São Cristóvão — SE

• Francisco Cláudio Martins — SESG/SETC

• Luciano Esteves Peluzio — SESG/SETC

• Nair Colussi — EAF de Sertão — RS

Colaboração

• Alberto Antônio de H. Ferreira — EAF de Satuba — AL

• Alenice Barbosa de Araújo Gadelha — EAF de Sousa — PB

• Amalia Xavier Dipe — EAF de Muzambinho — MG

• Ana Josilene dos Santos — EAF de Satuba — AL

• Antônio Rafael Daconti — EAF de Salinas — MG

• Aristóteles Ottoni Cardoso — EAF de Rio Pomba — MG

• Athos Hilário Wilke Boratto — EAF de Barbacena — MG

• Celso Gomes dos Santos — EAF de Manaus — AM

• Deronice Freitas Bastos — EAF de Rio Verde — GO

• Desirré Teixeira Gonçalves — EAF de Alegre — ES

• Dores Anton Ayroso — EAF de Concórdia — SC

• Edivan de Souza — EAF de Crato — CE

• Edson Ângelo de Sales e Silva — EAF de Barreiros — PE

• Edson Fosse Filho — EAF de Cáceres — MT

• Elaine Monteiro Pereira Bicalho — EAF de São João Evangelista — MG

• Élcio Oliveira da Silva — EAF de Concórdia — SC

• Elisa Maria Campos Minassa — EAF de Colatina — ES

• Erba Maria Chavasco Alves — EAF de Inconfidentes — MG

• Geovar Alves da Cunha — EAF de Castanhal — PA

• Israel Campos Gonçalves — EAF de Machado — MG

• Ivolando Marques Ferreira — EAF de Uberlândia — MG

• Jacimar Berti Boti — EAF de Santa Teresa — ES

• Jair Crisóstomo de Souza — EAF de Manaus — AM

• João Carlos Selbach — EAF de Bento Gonçalves — RS

• Jorge Danilo Veiga Santana — EAF de Catu — BA

• José Nivaldo de Rezende — EAF de Urutaí — GO

• Lúcia Helena Pulchério de Medeiros — EAF de São Luís — MA

• Marconiedson Alves Fanaia — EAF de Cuiabá — MT

• Maria Alice do Monte Ramos — EAF de Satuba — AL

• Maria Carmem Neiva Mesquita de Melo — EAF de Vitória de S. Antão — PE

• Raimundo Batista Vieira — EAF de Iguatu — CE

• Sebastião Moreira de Oliveira — EAF de Uberaba — MG

• Terezita Pereira Braga — EAF de Januária — MG

Revisão

• Mirna Saad Vieira — SESG/SETC

• Therezinha de Oliveira — SESG/SETC

SUMÁRIO

APRESENTAÇÃO 5

PROGRAMA DE ENSINO 7

Objetivos de Biologia 9

Programa de Biologia 11

Equipamento 15

Lista dos Componentes 17

FOLHAS DE ORIENTAÇÃO 1 A 42 19

BIBLIOGRAFIA 85

APRESENTAÇÃO

Procurando contribuir para a melhoria da qualidade do ensino profissio-

nalizante das Escolas Agrotécnicas Federais a partir da sistematização dos

conteúdos Programáticos e da implementação das aulas teórico-práticas,

técnicos do Ministério da Educação, juntamente com professores das EAFs,

vêm produzindo material didático das disciplinas que compõem o currículo

dos cursos Técnico em Agropecuária e Técnico em Economia Doméstica.

Assim, os manuais que integram a Série Ensino Agrotécnico apresentam

não só uma proposta de conteúdo programático das disciplinas dos mencio-

nados cursos, como também sugestões de atividades, contidas em folhas de

orientação, que podem ser utilizadas como roteiro para o professor e mate-

rial de consulta para o aluno.

Para a utilização dos manuais, os professores poderão lançar mão de sua

experiência e criatividade, adaptando as práticas às peculiaridades locais, à

realidade dos alunos e aos recursos disponíveis.

Zeli Isabel Roesler

Secretária de Ensino de 2.° Grau

OBJETIVOS DE BIOLOGIA

1 — Introdução

Fornecer embasamento introdutório para que o aluno possa adotar

procedimentos científicos ao estudar fenômenos biológicos.

2 — Citologia

Fornecer subsídios ao estudo das bases fundamentais que estruturam

os seres vivos, bem como a sua perpetuação.

Reconhecer a importância da célula como unidade morfofisiológica da

estrutura dos seres vivos.

Compreender a importância da divisão celular na reprodução dos seres

unicelulares e crescimento dos pluricelulares.

3 — Reprodução e desenvolvimento dos seres vivos

Proporcionar ao educando situações adequadas à vivência do método

científico e de suas aplicações, através da análise dos tipos de reprodu-

ção como forma de perpetuação das espécies.

4 — Genética

Interpretar as leis da hereditariedade e variabilidade, reconhecendo a

importância e aplicações práticas no melhoramento das espécies.

5 — Botânica

Fornecer subsídios ao aluno para o desenvolvimento das atividades

agrícolas e levá-lo a reconhecer a importância do vegetal na manuten-

ção e equilíbrio de um ecossistema.

Identificar as principais características dos grandes grupos vegetais, en-

fatizando os aspectos morfofisiológicos, anatômicos e fisiológicos.

Conhecer e reconhecer os vegetais como elementos indispensáveis à

vida e aplicar estes conhecimentos para a melhoria da agricultura com

aumento de produção e produtividade.

6 — Zoologia

Identificar os diferentes tipos de tecidos, bem como as principais carac-

terísticas morfofisiológicas dos grandes grupos de animais, com a res-

pectiva aplicação à manutenção e crescimento da agropecuária, sob o

ponto de vista ecológico e econômico.

7 — Evolução

Conhecer as hipóteses e teorias da origem das espécies e evolução hu-

mana.

Desenvolver no educando o senso crítico referente ao dinamismo evo-

lutivo das espécies.

8 — Ecologia

Reconhecer as interações que se realizam entre os seres vivos e o meio

ambiente, enfatizando a importância dos prejuízos da poluição e a pre-

servação da natureza.

Utilizar os conhecimentos da ecologia, como forma de defesa do meio

ambiente, adquirindo conhecimentos e atitudes básicas para a vida co-

tidiana.

PROGRAMA DE BIOLOGIA

CONHECIMENTOS

1. Introdução

• Ciência como investigação

• Conceito e divisão da Biologia

• Caracteres fundamentais dos

seres vivos

• Distinção entre seres vivos brutos

e formas intermediárias

• Distinção entre animais e vegetais

• Formas de vida

• Composição química dos

seres vivos

• Microscopia

2. Citologia

• Histórico

• Teoria celular

• Método de estudo das células

• Distinção entre células

procarióticas e eucarióticas

• Componentes de uma célula

eucariótica

• Estudo da membrana

• Estudo de citoplasma

• Estudo do núcleo

• Distinção entre células animais e

vegetais

• Divisão celular

— Conceito, generalidades

e tipos

— Ciclo de vida celular

— Amitose

— Mitose: fases e características

— Meiose: fases e características

3. Reprodução e desenvolvimento dos

seres vivos

• Conceito e tipos de reprodução

SUGESTÕES DE ATIVIDADES

1. Observação das reações da planta

sensitiva

2. Análise qualitativa de substâncias

orgânicas

3. Determinação qualitativa de pH

4. Identificação e manejo do

microscópio

5. Preparação de lâminas

6. Observação microscópica de

células mortas e vivas

7. Observação da permeabilidade

celular

8. Observação dos fenômenos da

plasmólise e desplasmólise

9. Observação do movimento

intracelular (ciclose)

10. Observação dos diferentes tipos de

plastos

11. Observação dos condriomas em

células vivas

12. Observação da mitose em raiz de

cebola

13. Observação de regeneração em

planárias

(continua)

FOLHA DE

ORIENTAÇÃO

7,8,9

PROGRAMA DE BIOLOGIA

(continua)

CONHECIMENTOS

• Reprodução assexuada e

particularidades

• Reprodução sexuada e

particularidades

• Cametogêneses: conceito e tipos

• Fecundação: conceito e tipos

• Embriologia: conceito e fases

4. Genética

• Histórico e conceitos

fundamentais

• Leis de Mendel e suas respectivas

aplicações

• Genealogia e probabilidade

• Genética pós-mendeliana

• Aberrações cromossômicas

• Determinação cromossômica

do sexo

• Herança ligada ao sexo

• Herança e meio ambiente

5. Botânica

• Sistemática botânica

• Histologia vegetal

• Morfologia, anatomia e fisiologia

dos órgãos vegetativos e

reprodutivos

• Germinação

• Regulação hormonal nos vegetais

• Fotoperiodismo

• Fotossíntese

• Respiração

• Transpiração

SUGESTÕES DE ATIVIDADES

14. Observação da reprodução

assexuada

15. Determinação dos grupos

sangüíneos no sistema ABO

16. Determinação dos grupos

sangüíneos no sistema Rh

17. Observação morfológica da raiz

18. Observação da estrutura interna do

caule

19. Dissecação de uma flor

20. Observação das estruturas em

sementes maduras

21. Extração dos pigmentos

fotossintéticos

22. Observação da transpiração

nos vegetais

23. Observação do desprendimento de

oxigênio durante a fotossíntese

24. Observação da germinação do

grão de pólen

25. Observação da germinação da

semente

26. Observação do processo de

transporte da seiva bruta

FOLHA DE

ORIENTAÇÃO

PROGRAMA DE BIOLOGIA

(conclusão)

CONHECIMENTOS

6. Zoologia

• Histologia animal

• Nomenclatura zoológica

• Sistemática zoológica

• Protozoários: conceito, classes e

suas características

• Metazoários: características

gerais dos:

— Poríferos

— Cnidários

— Moluscos

— Equinodermas

• Metazoários: características

gerais, morfologia e fisiologia dos:

— Platelmintos

— Nematelmintos

— Anelídeos

— Artrópodes

— Cordados

7. Evolução

• Teorias da origem das espécies

• Teoria da evolução

• Evolução humana

8. Ecologia

• Conceitos e formas de estudo

• Ecossistema

• Ciclos biogeoquímicos

• Fatores bióticos e abióticos

• Interações ecológicas

• Cadeias tróficas

• Fluxo de energia

• Equilíbrio e preservação

da natureza

SUGESTÕES DE ATIVIDADES

27. Observação dos movimentos dos

vegetais

28. Observação macroscópica de

plantas angióspermas

29. Utilização de uma chave de

classificação

30. Montagem da cultura de

protozoários no feno

31. Observação de protozoários

32. Observação de anelídeos

33. Dissecação de moluscos

34. Observação da morfologia dos

insetos

35. Observação das estruturas

externas dos peixes teleósteos

36. Dissecação de um anfíbio

37. Observação da estrutura externa

dos ofídios

38. Observação da reação entre a

saliva e o amido

39. Cálculo da densidade populacional

40. Observação das relações produtor/

consumidor

FOLHA DE

ORIENTAÇÃO

LISTA DOS COMPONENTES

O equipamento listado neste capítulo será utilizado pelo professor no laboratório de Biologia, para atender

a classes de 20 alunos.

Componentes do equipamento Quant.

Agulha de Bensaude 2

Álcool etílico 96% (litro) 20

Alfinete entomológico (caixa) 10

Algodão hidrófilo (pacote) 20

Almofariz 2

Anil (caixa) 1

Aquário (metal e vidro) 1

Azul de bromotimol (50ml) 1

Azul de metileno (50ml) 10

Balde plástico (capacidade para 5 litros) 2

Barbante fino (rolo) 2

Bastão de vidro (20cm x 6mmØ) 10

Béquer (50ml) 15

Béquer (100ml) 10

Béquer (200ml) 15

Béquer (250ml) 10

Béquer (500ml) 10

Béquer (1000ml) 10

Bico de Bunsen 10

Botijão de gás com registro (2kg) 1

Centrífuga 1

Conta-gotas 15

Cuba de dissecação 11

Cuba de vidro 10

Erlenmayer (250ml) 10

Erlenmayer (300ml) 10

Espátula de porcelana (10cm x 1cm) 10

Estante para tubos 11

Estojo de dissecação contendo: pinça, estilete, bisturi, tesoura, etc. 11

Estufa 1

Etiqueta grande — 2cm x 4cm (rolo) 2

Etiqueta pequena (rolo) 2

Fenolftaleína (50ml) 1

Funil de vidro de haste longa 15

Furador de rolha (conjunto) 1

Glicose (frasco de 500ml) 1

Guardanapos de papel (pacote) 2

Lâmina de corte (caixa) 2

Lâmina de vidro (3cm x 1") 100

Lamínula 200

Lamparina a álcool 10

LISTA DOS COMPONENTES

Lugol (frasco de 50ml)

Lupa manual

Microscópio óptico com conjunto de objetivas completo

Micrótomo

Orceína acética (frasco de 50ml)

Papel celofane incolor (folha)

Papel de filtro (folha)

Papel indicador universal (caixa)

Parafina (kg)

Pinça de madeira (para tubos de ensaio)

Pincel fino pequeno (pêlo de marta)

Pipeta graduada (2ml)

Pipeta graduada (10ml)

Pistilo

Placa de Petri (10cm)

Reagente de Benedict (frasco de 50ml)

Refrigerador pequeno

Régua plástica milimetrada (30cm)

Rolha de cortiça c/tamanhos diversos (caixa)

Rolhas de borracha (caixa c/n.°s 03, 22, 24)

Soro anti-A (frasco de 10ml)

Soro anti-B (frasco de 10ml)

Soro anti-Rh (frasco de 10ml)

Tela de amianto

Tripé de ferro

Tubo de ensaio (15mm x 150mm)

Vela (caixa)

Verde-janus (50ml)

Vermelho neutro (50ml)

200

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 1. Introdução ao Estudo da Biologia

ATIVIDADE: 1. Observação das Reações da Planta Sensitiva

OBJETIVO(S): Identificar as reações apresentadas por uma planta

aos diferentes estímulos recebidos do meio externo

DURAÇÃO: 50 minutos

rolha de

Orientação

Página 1/1

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Álcool etílico 96% (litro)

Algodão (pacote)

Bastão de vidro

Cuba de vidro

Planta sensitiva (Mimosa pudica) em vaso

Vela

Quant.

variável

Procedimento:

1.°) Teste as reações da planta aos estímulos: mecânico, tocando-a com bastão térmico, acendendo a vela e

colocando-a próxima à planta.

2.°) Coloque a planta no interior da cuba de vidro com a abertura voltada para baixo, juntamente com algodão

embebido em álcool, para se verificar o estímulo químico.

Comentário

Algumas plantas, inclusive certas gramíneas, leguminosas e em especial a Mimosa pudica, comum nos pas-

tos, reagem ao choque mecânico, ao calor, às substâncias químicas e a outros estímulos, fechando os seus folio-

los e dando a impressão de murchar.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 1. Introdução ao Estudo da Biologia

ATIVIDADE: 2. Análise Qualitativa de Substâncias Orgânicas

OBJETIVO(S): Identificar substâncias orgânicas

DURAÇÃO: 100 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Ácido nítrico concentrado

Água

Bastão de vidro

Béquer de 100ml

Bico de Bunsen

Clara de ovo

Conta-gotas

Estante para tubo de ensaio

Farinha de trigo

Gordura (banha, azeite)

Papel ofício (folha)

Pinça de madeira

Reagente de Benedict

Solução de glicose

Solução de lugol ou iodo

Tubo de ensaio

Vitamina C

Quant.

variável

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Identificação de proteínas

1.°) Coloque uma clara de ovo em um béquer, mexendo-a com o auxílio de um bastão de vidro.

2.°) Passe um pouco desta substância para dois tubos de ensaio bem secos e acrescente algumas gotas de ácido

nítrico concentrado.

3.°) Aqueça ligeiramente apenas um dos tubos.

4.°) Observe e anote os resultados.

Identificação do amido

1.°) Coloque uma pequena quantidade de farinha de trigo em um tubo de ensaio e acrescente um pouco de

água, agitando-o em seguida.

2.°) Acrescente algumas gotas de solução de lugol.

3.°) Observe e anote os resultados.

Identificação de lipídios

1.°) Passe gordura em um papel.

2.°) Observe contra a luz e anote os resultados.

Identificação de carboidratos

1.°) Ponha, em um tubo de ensaio, uma solução diluída de glicose.

2.°) Acrescente algumas gotas do reagente de Benedict.

3.°) Ferva, observe e anote os resultados.

Identificação da vitamina C

1.°) Encha com água um tubo de ensaio e derrame-a no béquer.

2.°) Coloque no interior do béquer uma pequena quantidade de farinha de trigo, misturando-a.

3.°) Aqueça o béquer com a mistura, agitando-o para melhor homogeneização.

4.°) Acrescente à mistura três gotas de lugol.

5.°) Divida a mistura em dois tubos de ensaio; coloque-os na estante e acrescente a um deles dez gotas da solu-

ção de vitamina C.

6.°) Observe e anote os resultados.

Observação

Como medida de precaução, a abertura do tubo de ensaio não deverá ser direcionada para pessoas durante

o fervimento.

Folha de

Orientação

Página 2/2

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 1. Introdução ao Estudo da Biologia

ATIVIDADE: 3. Determinação Qualitativa de pH

OBJETIVO(S): Identificar qualitativamente o pH de soluções biológicas

DURAÇÃO: 1 hora

Folha de

Orientação

Página 1/2

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Béquer de 50ml

Estante para tubo de ensaio

Etiqueta (pequena)

Papel indicador universal

Pinça

Soluções: sangue, leite, ovo, saliva,

Tubo de ensaio (15mm x 150mm)

vinagre e suco

limão

Quant.

2ml

Folha de

DISCIPLINA: Biologia Orientação

PROCEDIMENTO

Página 2/2

1.°) Etiquete e numere cinco tubos de ensaio.

2.°) Coloque 2 mi nos tubos de 1 a 5 das respectivas soluções: sangue, leite, ovo, saliva, vinagre e suco de limão.

3.°) Teste cada solução, utilizando uma pinça com um pedaço de papel indicador universal.

4.°) Compare a cor obtida em cada papel que foi imerso nas soluções com a escala da tabela que acompanha o

invólucro do papel indicador.

Observação

Na realização do teste com sangue humano, deve-se usar material esterilizado. Com estilete, perfura-se um

dos dedos da mão do indivíduo e, em seguida, coloca-se o sangue em contato com o papel indicador de pH

Deve-se ter o cuidado na leitura do pH, para não confundir a cor da solução testada com a cor obtida no

papel indicador. Para se evitar tal problema, deve-se deixar o papel indicador secar durante algum tempo, após

ter sido mergulhado na solução.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 1. Introdução ao Estudo da Biologia

ATIVIDADE: 4. Identificação e Manejo do Microscópio

OBJETIVOS(S): Utilizar corretamente o microscópio

Identificar os fenômenos de inversão e rebatimento da imagem

fornecida pelo microscópio

DURAÇÃO: 40 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água variável

2 Conta-gotas 1

3 Lâmina de vidro 1

4 Lamínula 1

5 Microscópio 1

6 Papel de filtro 1

7 Papel ofício fino (folha) 1

8 Régua milimetrada de 30cm 1

9 Tesoura 1

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

1.°) Desenhe quatro quadrinhos de 1 cm de lado numa folha de papel ofício fino. Dentro de cada quadrinho,

desenhe, em tamanho bem pequeno, as letras maiúsculas O, A, E e F. Recorte os quadrinhos.

2.°) Coloque o quadrinho com a letra O no centro da lâmina e pingue sobre ele uma gota d'água, cobrindo-os

com a lamínula.

3.°) Levante o canhão até onde for possível, com o auxílio do parafuso macrométrico, e coloque a objetiva de

menor aumento em posição de uso.

4.°) Observe através da ocular, verificando se o campo do microscópio está uniformemente iluminado.

5.°) Coloque a preparação sobre a platina e, olhando por fora, aproxime o mais que puder a objetiva da lâmina,

tendo o cuidado de não deixar que se toquem.

6.°) Observe através da ocular, levantando lentamente a objetiva até que a letra se torne visível.

7.°) Use o parafuso micrométrico, movimentando-o para a frente ou para trás, até obter uma imagem bem níti-

da.

8.°) Observe e anote a posição da letra O.

9.°) Mova a preparação para a esquerda, para a direita, para frente e para trás, anotando o que observou.

10.°) Repita os procedimentos do segundo ao nono para as letras A, E e F.

11.°) Observe uma das letras em todas as objetivas, sucessivamente, a partir da de menor aumento.

Observação

O material a ser examinado ao microscópio deverá ser colocado entre a lâmina e a lamínula, bem limpas.

Para limpá-las, mergulhe-as em água e enxugue-as com papel de filtro. Tomar especial cuidado com as lamínu-

las, que são muito frágeis. Deixar a lâmina e a lamínula sobre o papel de filtro seco.

Os conhecimentos adquiridos serão de real importância em Agricultura e Zootecnia, para a observação e

análise de estrutura e patogenicidade em animais e plantas.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 1. Introdução ao Estudo da Biologia

ATIVIDADE: 5. Preparação de Lâminas

OBJETIVOS(S): Montar corretamente uma lâmina para observação ao microscópio

DURAÇÃO: 30 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Água

Conta-gotas

Lâmina de vidro

Lamínula

Papel de filtro

Pinça

Quant.

variável

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

l.°) Coloque, com o conta-gotas, sobre uma lâmina de vidro, uma gota de água.

2.°) Pegue uma lamínula e encoste um dos seus lados na lâmina, bem próximo da gota, de modo que o líquido

se espalhe em toda a extensão da lamínula.

3.°) Baixe a lamínula vagarosamente, só soltando-a quando o ângulo formado pela lâmina e lamínula for o me-

nor possível, para evitar a formação de bolhas de ar.

4.°) Utilize o papel de filtro para absorver o excesso de água, quando presente sobre a lâmina ou sob a lamínula.

Comentário

Tenha bastante cuidado ao trabalhar com lamínulas, pois as mesmas são frágeis e a qualquer descuido po-

derão ser quebradas. Lâminas e lamínulas deverão estar limpas e desengorduradas.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 2. Citologia

ATIVIDADE: 6. Observação Microscópica de Células Mortas e Vivas

OBJETIVO(S): Diferenciar uma célula viva de uma célula morta

DURAÇÃO: 50 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

CONTA-GOTAS

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água variável

2 Azul de metileno variável

3 Célula da mucosa bucal variável

4 Conta-gotas 1

5 Espátula de madeira ou palito 1

6 Lâmina de corte 1

7 Lâmina de vidro 2

8 Lamínula 1

9 Microscópio 1

10 Papel de filtro variável

11 Pinça 1

12 Rolha de cortiça j 1

13 Solução de iodo ou lugol variável

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

1.°) Utilize lâmina de corte para retirar uma fatia delgada de uma rolha de cortiça.

2.°) Prepare uma lâmina com este material.

3.°) Leve o material preparado ao microscópio, observando-o com a objetiva de menor aumento.

4.°) Faça um esquema do material observado.

5.°) Retire células da mucosa bucal, fazendo raspagem com espátula de madeira ou palito.

6.°) Espalhe, cuidadosamente, o material obtido sobre a lâmina e deixe-o secar.

7.°) Pingue uma gota de lugol e outra de azul de metileno sobre o material, cobrindo-o com a lamínula.

8.°) Faça absorção do excesso de corante após quinze segundos, utilizando o papel de filtro.

9.°) Leve o material preparado ao microscópio, examinando-o com a objetiva de menor aumento.

10.°) Faça um esquema do material observado.

11.°) Compare os esquemas dos materiais observados.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 2. Citologia

ATIVIDADE: 7. Observação da Permeabilidade Celular

OB)ETIVO(S): Verificar o processo de difusão

DURAÇÃO: 40 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água variável

2 Béquer de 200ml 1

3 Pedra de anil 1

Procedimento

1.°) Adicione água no béquer até atingir a metade da altura.

2.°) Coloque no fundo do béquer um quarto da pedra de anil.

3.°) Deixe em repouso, por um período máximo de vinte minutos.

4.°) Observe e anote o que acontece.

Comentário

O anil vai se espalhando (difundindo-se) lentamente pela água, que se torna colorida.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 2. Citologia

ATIVIDADE: 7. Observação da Permeabilidade Celular

OBJETIVO(S): Verificar o processo de osmose

DURAÇÃO: 40 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água variável

2 Barbante fino variável

3 Béquer de 200ml 1

4 Papel celofane incolor (folha) 1

5 Pedra de anil 1

6 Vareta de madeira (100mm x 2mm x 2mm) 1

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

1.°) Corte um papel celofane medindo 20 cm x 20 cm e coloque no seu centro um quarto da pedra de anil.

2.°) Prenda as pontas do papel com um pedaço de barbante e, em seguida, amarre o saquinho na vareta de ma-

deira.

3.°) Preencha com água o béquer até a metade.

4.°) Coloque a vareta apoiada nos bordos do béquer de modo que o saquinho fique suspenso e mergulhado na

água.

5.°) Observe durante quarenta minutos.

6.°) Faça nova observação após vinte e quatro horas.

Comentário

O papel celofane tem poros suficientemente grandes para deixar passar as moléculas de água, mas não

para deixar passar as partículas de anil, que são maiores que as da água; portanto, a água penetra no interior do

saquinho, mas o anil não sai deste.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 2. Citologia

ATIVIDADE: 7. Observação da Permeabilidade Celular

OBJETIVO(S): Identificar a passagem de substâncias através de uma membrana

DURAÇÃO: 40 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Água

Álcool (I)

Barbante fino (rolo)

Béquer de 200ml

Conta-gotas

Espátula de porcelana

Estante para tubo de ensaio

Farinha de trigo (50g)

Glicose (frasco de 50ml)

Lamparina a álcool

Lugol ou iodo (frasco de 50ml)

Papel celofane incolor (folha)

Pinça de madeira

Pipeta (10ml)

Placa de Petri

Reagente de Benedict (frasco de 50ml)

Tubo de ensaio (15mm x 150mm)

Vareta de madeira (100mm x 2mm x 2mm)

Quant.

variável

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

1.°) Corte um papel celofane medindo 20cm x 20cm e coloque 10ml de glicose e 10g de amido (farinha de trigo)

sobre o mesmo.

2.°) Amarre as extremidades do papel celofane para obter um saquinho e prenda-o na vareta de madeira.

3.°) Coloque o saquinho dentro de um béquer, com água até o meio, apoiando a vareta sobre os bordos do

mesmo. Deixe-o em repouso durante quarenta minutos.

4.°) Pipete 2ml de água do béquer, após quarenta minutos, e coloque-a na placa de Petri, adicionando cinco go-

tas de lugol. Em outra placa de Petri, coloque 2ml de água da torneira e cinco gotas de lugol. Compare e

anote os resultados.

5.°) Pipete 2ml de água do béquer e coloque-a dentro de um tubo de ensaio. Adicione cinco gotas do reagente

de Benedict. Em outro tubo de ensaio, coloque 2ml de água de torneira e cinco gotas do reagente de Bene-

dict.

6.°) Segure os tubos de ensaio com a pinça de madeira e aqueça-os na lamparina até que sejam fervidas as solu-

ções. Retire da chama e observe as colorações dos dois tubos.

7.°) Deixe o béquer com o saquinho em repouso até o dia seguinte e repita os testes.

Comentário

O teste para identificação da glicose, aplicado ao líquido do béquer, dá positivo, enquanto o teste para

identificação do amido dá resultado negativo. Isso porque tanto a água como a glicose passam através dos poros

da membrana de celofane. As moléculas de amido são consideravelmente maiores do que as de glicose e não

passam através da membrana. Este processo ocorre de maneira semelhante ao da membrana citoplasmática.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 2. Citologia

ATIVIDADE: 8. Observação dos Fenômenos da Plasmólise e Desplasmólise

OBJETIVO(S): Identificar a dependência vital da célula em função do equilíbrio

intra e extracelular

Descrever o que acontece quando as células são mergulhadas em

solução hipertônica e hipotônica

DURAÇÃO: 90 minutos

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água destilada (50ml) 1

2 Béquer de 100ml 3

3 Cebola 1

4 Lâminas 4

5 Lamínulas 4

6 Microscópio 1

7 Pinça de ponta fina 1

8 Solução de sacarose a 0,8M (50ml) 1

9 Solução de vermelho neutro a 0,025% (50ml) 1

Procedimento

1.°) Retire, das escamas internas da cebola, dois pedaços de epiderme e coloque num béquer com solução de

vermelho neutro (antes da experimentação).

2.°) Deixe-as em repouso durante uma hora, para que as células sejam coradas.

3.°) Retire da solução um dos pedaços da epiderme da cebola e prepare uma lâmina.

4.°) Leve o material preparado ao microscópio e observe em todas as objetivas sucessivamente, esquemati-

zando as estruturas vistas.

5.°) Retire a lamínula da preparação e, com uma pinça, mergulhe o pedaço de epiderme na solução de sacaro-

se, durante vinte minutos.

6.°) Retire a epiderme da solução de sacarose e prepare uma nova lâmina.

7.°) Leve o material preparado ao microscópio, observe-o em todas as objetivas sucessivamente, anotando as

possíveis alterações sofridas para fazer o esquema.

8.°) Retire a lamínula do material preparado e, com a pinça, mergulhe o pedaço de epiderme em água destila-

da, durante vinte minutos.

9.°) Retire a epiderme da água destilada e prepare uma nova lâmina.

10.°) Leve o material preparado ao microscópio, observando em todas as objetivas sucessivamente, e anote

possíveis alterações sofridas, esquematizando-as.

11.°) Faça estudo comparativo entre os dois esquemas.

Folha de

Orientação

Página 1/1

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 2. Citologia

ATIVIDADE: 9. Observação do Movimento Intracelular (ciclose)

OBJETIVO(S): Identificar o movimento dos cloroplastos no interior do hialoplasma

DURAÇÃO: 50 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Água

Anacharis canadensis (elódea)

Conta-gotas

Lâmina de vidro

Lamínula

Lâmpada elétrica

Microscópio

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Retire uma folha inteira de elódea bem verde e prepare a lâmina.

2.°) Aqueça a preparação ao calor de uma lâmpada elétrica, a uma distância de aproximadamente 10cm, du rante

uns quinze minutos.

3.°) Leve a preparação ao microscópio e observe em todas as objetivas o movimento dos cloroplastos.

DISCIPLINA:

UNIDADE:

ATIVIDADE:

OBJETIVO(S):

DURAÇÃO:

Biologia

2. Citologia

10. Observação dos Diferentes Tipos de Plastos

Identificar os plastos das células vegetais e a diferença

de cores entre dois pigmentos fotossintéticos

Esquematizar a estrutura de um amiloplasto

90 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

Cloroplastos

Lâmina de elódea

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Água

Béquer de 50ml

Cenoura ou tomate

Conta-gotas

Feijão ou arroz (grão)

Folha de elódea

Lâmina de corte

Lâmina de vidro

Lamínula

Microscópio

Pincel fino

Solução de iodo ou lugol (frasco de 50ml)

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Coloque uma folha de elódea em uma lâmina e adicione uma gota de água. Cubra-a com uma lamínula.

2.°) Leve a preparação ao microscópio e observe a posição e forma dos clorosplastos em todas as objetivas su-

cessivamente.

3.°) Faça um esquema do material observado.

4.°) Faça vários cortes transversais na cenoura ou tomate, colocando-os num béquer com água.

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

5.°) Escolha o corte mais delgado e com o pincel coloque-o sobre a lâmina.

6.°) Coloque uma gota de água sobre o corte e cubra-o com a lamínula.

7.°) Leve a preparação ao microscópio e observe a forma e cor dos cromoplastos, em todas as objetivas suces-

sivamente.

8.°) Faça um esquema do material observado.

9.°) Raspe a semente do feijão ou arroz com a ponta da lâmina de corte sobre uma lâmina de vidro.

10.°) Coloque sobre este material uma gota de água e uma de lugol.

11.°) Leve a preparação ao microscópio e observe a forma e cor dos amiloplastos em todas as objetivas sucessi-

vamente.

12.°) Faça esquema do material observado.

Comentário

Os grãos de amido aparecem em cor violeta-escuro devido à reação típica entre os mesmos e o lugol, ou se-

ja, esta coloração tomada pelos grãos na presença do lugol indica efetivamente presença do amido no material

observado.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 2. Citologia

ATIVIDADE: 11. Observação do Condrioma em Células Vivas

OBJETIVO(S): Identificar o condrioma

DURAÇÃO: 30 minutos

Item

Denominação, tipo e capacidade

Água destilada (I)

Agulha de Bensaude ou descartável

Álcool ou éter

Algodão (pacote)

Cloreto de sódio (g)

Conta-gotas

Lâmina de vidro

Lamínula

Microscópio com objetiva de imersão

Sangue a ser examinado

Solução verde-janus (1:10000)

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Prepare uma solução de 8g de NaCI em 1.000cc de água destilada, adicionando uma gota de corante verde-

janus.

2.°) Umedeça um pouco de algodão hidrófilo em álcool, desinfete a extremidade do dedo anular e, após esteri-

lizar a agulha, dê uma pequena picada no mesmo.

3.°) Coloque uma gota do sangue extraído na lâmina.

4.°) Pingue uma gota da solução preparada sobre a gota de sangue e cubra com a lamínula.

5.°) Leve a preparação ao microscópio, observando-a em todas as objetivas, sucessivamente.

6.°) Faça o esquema do material visualizado.

Comentário

O condrioma é observado nos glóbulos vermelhos do sangue.

Folha de

Orientação

Página 1/1

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 2. Citologia

ATIVIDADE: 12. Observação da Mitose em Raiz de Cebola

OBJETIVO(S): Identificar as fases que constituem a mitose

Observar as diferentes posições dos cromossomos,

de acordo com a fase de divisão

DURAÇÃO: 45 minutos

Prófase Telófase

MITOSE

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

i Água variável

2 Béquer de 50ml 1

3 Bico de Bunsen 1

4 Cebola (Allium cepa) 1

5 Conta-gotas 1

6 Lâmina de corte 1

7 Lâmina de vidro 1

8 Lamínula 1

9 Microscópio 1

10 Orceína acética 1% variável

11 Pinça de madeira 1

12 Placa de Petri 1

13 Tubo de ensaio de 15mm x 150mm 1

Procedimento

1.°) Corte as raízes velhas da cebola.

2.°) Coloque a cebola em um béquer com água, apoiando-a nos bordos com o sistema radicular mergulhado

na água.

3.°) Retire as novas raízes após quatro ou cinco dias e coloque-as em um tubo de ensaio com orceína acéticd a

1%.

Folha de

Orientação

Página 1/2

Cebola

Béquer com água

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

4.°) Aqueça o tubo à chama do bico de Bunsen, deixando-a ferver duas ou três vezes.

5.°) Despeje o conteúdo em uma placa de Petri, após a fervura.

6.°) Selecione uma raiz, corte a pontinha (2mm ou 3mm) da extremidade inferior e coloque-a sobre a lâmina de

vidro.

7.°) Coloque sobre a raiz uma gota de orceína acética a 1% fria e cubra-a com uma lamínula.

8.°) Espere por um período mínimo de cinco minutos e, em seguida, coloque a raiz entre a lâmina e a lamínula,

apertando-as para esmagá-la.

9.°) Leve a preparação ao microscópio e observe-a em todas as objetivas, identificando as várias fases da mitose.

Comentário

Tenha muito cuidado, durante a fervura da orceína acética, pois o líquido facilmente se extravasa. Cada vez

que isto acontecer, afaste o tubo de ensaio da chama.

Para esmagar a raiz da cebola, aperte a lamínula com muito cuidado para não quebrá-la, pois é muito frágil.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 3. Reprodução dos Seres Vivos

ATIVIDADE: 13. Observação de Regeneração em Planárias

OBJETIVO(S): Demonstrar que a regeneração constitui um tipo de reprodução

DURAÇÃO: 30 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

POSSÍVEIS PLANOS DE CORTE

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Cubo de gelo 1

2 Etiqueta (1cm x 2cm) ou pedaços de esparadrapo 4

3 Lâmina de corte 1

4 Lâmina de vidro 1

5 Lupa 1

6 Pincel fino 1

7 Placas de Petri 4

8 Planárias 5

Procedimento

1.°) Coloque uma gota de água numa lâmina e, em seguida, com o auxílio do pincel, adicione uma planaria so-

bre a gota. Se o animal estiver muito ativo, deposite a lâmina sobre um cubo de gelo, o que retardará seus

movimentos.

2.°) Corte a planaria ao meio, no sentido transversal, com a lâmina de corte.

3.°) Transfira cada uma das metades para as placas de Petri, etiquetadas da seguinte maneira: nome, data, me-

tade anterior; nome, data, metade posterior. Tampe as placas e mantenha-as em lugar escuro e fresco.

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

4.°) Corte a outra planaria, no sentido longitudinal, transferindo os pedaços para novas placas conveniente-

mente etiquetadas.

5.°) Examine as placas diariamente ou de dois em dois dias, observando e anotando o que acontece; faça es-

quemas das modificações que forem ocorrendo. Se encontrar pedaços mortos nas placas, retire-os.

Comentário

Não alimente as planárias uma semana antes e uma semana depois de serem operadas. Alimente as outras

normalmente, para comparar os resultados.

As planárias vivem em tanques, lagos ou rios de pouca correnteza, sob pedras ou toras submersas. Uma das

maneiras de capturá-las consiste em amarrar um pedaço de carne (de preferência, fígado de boi) num fio de linha

e mergulhá-lo na água. Depois de algum tempo, ao retirar a linha, você poderá encontrar alguns exemplares

aderidos.

No laboratório, mantenha-as em ambiente escuro, em frascos de vidro e na própria água do local em que

foram coletadas.

Alimente-as, duas vezes por semana, com pedacinhos de fígado cru.

Realize a troca de água quando ela se apresentar turva ou cheia de resíduos.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 3. Reprodução e Desenvolvimento dos Seres Vivos

ATIVIDADE: 14. Observação da Reprodução Assexuada

OB)ETIVO(S): Identificar reprodução assexuada por brotamento

DURAÇÃO: 20 minutos

BROTAMENTO DO SACCHAROMYCES

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Açúcar variável

2 Água variável

3 Béquer de 50ml 1

4 Conta-gotas 1

5 Fermento ou levedo de cerveja variável

6 Lâmina de vidro 1

7 Lamínula 1

8 Microscópio 1

Procedimento

1.°) Prepare uma mistura, no béquer, de fermento (usado em pão) e água.

2.°) Acrescente um pouco de açúcar à mistura, agite e deixe-a em repouso por um período mínimo de três ho-

ras.

3.°) Retire com um conta-gotas um pouco da mistura, coloque uma gota numa lâmina de vidro e cubra com a

lamínula.

4.°) Leve a preparação ao microscópio e observe-a em todas as objetivas.

Comentário

O tempo para o início da divisão das células é variável. Por isso, é aconselhável fazer-se observações de uma

em uma hora. Nesta experiência, pode ser utilizado o levedo da cerveja, Saccharomyces cerevisae, em lugar do

fermento.

Folha de

Orientação

Página 1/1

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 4. Genética

ATIVIDADE: 15. Determinação dos Grupos Sangüíneos no Sistema ABO

OBJETIVO(S): Determinar o grupo sangüíneo, mediante a reação de aglutinação

DURAÇÃO: 45 minutos

Folha de

Orientação

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PRESENÇA DE

AGLUTINAÇÃO

AUSÊNCIA DE

AGLUTINAÇÃO

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Agulha de Bensaude ou descartável

Álcool etílico 96% (I)

Algodão hidrótilo (pacote)

Bastão de vidro

Lâmina de vidro

Sangue a ser examinado (gota)

Soro anti-A e anti-B (frasco de 10 ml cada)

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Coloque uma gota de soro anti-A numa extremidade da lâmina de vidro e uma gota de soro anti-B na outra

extremidade.

2.°) Umedeça um pouco de algodão hidrófilo em álcool, desinfete a extremidade do dedo anular e, após esteri-

lizar a agulha, dê uma pequena picada no mesmo.

3.°) Coloque uma gota de sangue a ser examinado sobre o soro anti-A e outra gota sobre o soro anti-B, que es-

tão em diferentes extremidades da lâmina de vidro.

4.°) Misture o sangue ao soro com o bastão de vidro e aguarde mais ou menos um minuto. Verifique se houve

aglutinação das hemácias em um soro, nos dois ou em nenhum deles.

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Comentário

A técnica de reconhecimento dos grupos sangüíneos baseia-se na aglutinação ou não das hemácias,

quando misturadas ao soro anti-A ou anti-B. As pessoas do grupo sangüíneo A têm em suas hemácias o aglutino-

gênio A; as do grupo B têm aglutinogènio S; as do grupo AB tèm os aglutinogênios A e B; e, finalmente, as pes-

soas do grupo O não possuem nenhum dos dois aglutinogênios.

Folha de

Orientação

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DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 4. Genética

ATIVIDADE: 16. Determinação dos Grupos Sangüíneos no Sistema Rh

OBJETIVO(S): Determinar o fator Rh, mediante reação de aglutinação

DURAÇÃO: 30 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

PRESENÇA DE

AGLUTINAÇÃO

RH +

AUSÊNCIA DE

AGLUTINAÇÃO

RH -

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Agulha de Bensaude ou descartável 1

2 Álcool etílico 96% (I) variável

3 Algodão hidrófilo (pacote) variável

4 Bastão de vidro 1

5 Lâmina de vidro 1

6 Sangue a ser examinado (gota) 1

7 Soro anti-Rh (frasco) 1

Procedimento

1.°) Coloque uma gota de soro anti-Rh em uma lâmina de vidro.

2.°) Umedeça um pouco de algodão hidrófilo em álcool, desinfete a extremidade do dedo anular e, após esteri-

lizar a agulha, dê uma pequena picada no mesmo.

3.°) Coloque uma gota de sangue a ser examinado sobre o soro anti-Rh e realize a mistura com o bastão de vi-

dro.

4.°) Verifique, após um minuto, se houve aglutinação das hemácias.

Comentário

A técnica de reconhecimento dos grupos sangüíneos em relação ao fator Rh baseia-se na aglutinação ou não

das hemácias, quando misturadas ao soro anti-Rh. As pessoas de fator positivo terão suas hemácias aglutinadas,

ocorrendo o contrário para as pessoas de Rh negativo.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 17. Observação da Morfologia da Raiz

OBJETIVO(S): Identificar os diferentes tipos de raízes subterrâneas e as várias

regiões de uma raiz

DURAÇÃO: 50 minutos

Folha de

Orientação

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RAIZ PRINCIPAL

RAÍZES SECUNDÁRIAS

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Lupa

Raízes: axial, fasciculada e tuberosa

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Observe cada uma das raízes e classifique-as segundo suas características.

2.°) Escolha uma das raízes e identifique suas regiões, com auxílio da lupa.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 18. Observação da Estrutura Interna do Caule

OBJETIVO(S): Identificar e esquematizar a anatomia do caule

DURAÇÃO: 50 minutos

CÂMBIO

EPIDERME

CORTEX

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade Quant.

Água variável

Caule de uma gramínea 1

Conta-gotas 1

Lâmina de corte 1

Lâmina de vidro 1

Lamínula 1

Microscópio 1

Procedimento

1.°) Corte, transversalmente, uma camada delgada do caule, utilizando a lâmina de corte.

2.°) Prepare uma lâmina.

3.°) Leve a preparação ao microscópio, observando em todas as objetivas sucessivamente.

4.°) Identifique e esquematize as estruturas visualizadas no microscópio.

Folha de

Orientação

Página 1/1

FLOEMA

XILEMA

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 19. Dissecação de Uma Flor

OBJETIVO(S): Identificar as partes de uma flor completa

Distinguir os verticilos florais e seus constituintes

DURAÇÃO: 50 minutos

Folha de

Orientação

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antera

grão de

pólen

filete

sépala

receptáculo

pedúnculo

Esquema de uma flor completa em corte longitudinal

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Estilete

Flor

Lâmina de corte

Lupa

Pinça

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Observe a flor, procurando identificar as suas partes constituintes.

2.°) Separe todos os verticilos florais, deixando sobre o receptáculo apenas o gineceu.

3.°) Pegue um estame, observe sua antera e os grãos de pólen, utilizando-se da lupa.

4.°) Observe o gineceu, identificando suas partes constituintes.

5.°) Corte o ovário transversalmente, observando a presença dos óvulos no seu interior, com o auxílio da lupa.

Comentário

Durante a observação da antera, caso não se consiga visualizar a presença dos grãos de pólen, certamente

os mesmos já terão sido eliminados.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 20. Observação das Estruturas em Sementes Maduras

OB|ETIVO(S): Identificar as partes constituintes de uma semente

Distinguir uma planta monocotiledônea de uma dicotiledônea

em função dos cotilédones

DURAÇÃO: 45 minutos

Folha de

Orientação

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MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Lâmina de corte

Lupa

Pinça

Sementes de milho, arroz, feijão e mamona

Quant.

variável

1.°) Observe os quatro tipos de sementes externamente; em seguida, com a lâmina, corte-as ao meio, no sen-

tido longitudinal, e retire o tegumento.

2.°) Separe as partes cortadas de cada semente com a pinça.

3.°) Identifique as estruturas de cada uma. Para melhor observação, usar uma lupa.

4.°) Preencha a tabela abaixo, distinguindo as plantas monocotiledôneas das dicotiledôneas.

SEMENTES

N.° de cotilédones

Tipo de cotilédones (foliáceo ou carnoso)

Endosperma (presente ou ausente)

MILHO

ARROZ

FEIJÃO

MAMONA

Comentário

O embrião desenvolve-se de um óvulo fecundado no ovário da flor. Mais tarde, o ovário se transforma em

fruto. O embrião de uma semente madura é composto de três partes: um, dois ou mais cotilédones, caulículo

(epicótilo e hipocótilo), radícula e gèmula. Além do embrião, uma semente madura possui um tegumento e

pode ou não apresentar endosperma. No caso do milho, o grão é o fruto. O envoltório da semente é colado à

parede do fruto (pericarpo), que é seca e dura.

Folha de

Orientação

Página 2/2

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 21. Extração dos Pigmentos Fotossintéticos.

OBJETIVO(S): Identificar os tipos de pigmentos existentes nas folhas.

DURAÇÃO: 90 minutos

Folha de

Orientação

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Tubo de ensaio com folhas

Béquer com água

PAPEL DE FILTRO

PIGMENTOS

PLACA DE PETRI

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Álcool etílico 96% (I)

Almofariz

Béquer de 500ml

Bico de Bunsen

Folhas de diversas cores

Papel de filtro

Pistilo

Placa de Petri

Tela de amianto

Tripé de ferro

Tubo de ensaio (15mm x

150mm)

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Pegue algumas folhas de colorido variado, triture e coloque-as em um tubo de ensaio.

2.°) Anote as cores existentes.

3.°) Ponha, no tubo de ensaio contendo as folhas, álcool até a metade do mesmo.

4.°) Coloque esta mistura em banho-maria até as folhas perderem a coloração.

5.°) Retire o tubo e coloque a solução na placa de Petri.

6.°) Espere cinco minutos para que a solução possa esfriar e coloque o papel de filtro, anotando os resultados.

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

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Comentário

As diferentes colorações que você observou no papel de filtro são devidas aos diversos pigmentos existen-

tes nas folhas. A faixa verde é proveniente da presença da clorofila; a amarela se deve à xantofila; e a faixa alaran-

jada é produzida por um pigmento denominado eritrofila. O processo de banho-maria será feito utilizando-se o

béquer de 500ml, no qual será colocado o tubo de ensaio do terceiro procedimento.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 22. Observação da Transpiração nos Vegetais

OBJETIVO(S): Verificar o processo de transpiração da planta

DURAÇÃO: 20 minutos

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Água

Barbante fino ou similar (rolo)

Folha de celofane claro

Vaso com gerânio

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Molhe um gerânio plantado em vaso.

2.°) Deixe o vaso em repouso até que toda a água seja absorvida pelo solo e não haja água gotejando pelo orifí-

cio no fundo do vaso.

3.°) Cubra a planta com uma folha de papel celofane e embrulhe-a prendendo o papel na base do vaso por meio

de um barbante.

4.°) Coloque a planta dessa forma sob a luz do sol.

5.°) Observe a montagem por cinco dias e anote os resultados.

Folha de

Orientação

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DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 23. Observação do Desprendimento de Oxigênio Durante a

Fotossíntese

OBJETIVO(S): Verificar que durante a fotossíntese há desprendimento de um

gás (oxigênio)

Observar que a luz é um fator essencial para a realização da

fotossíntese

DURAÇÃO: 70 minutos

Folha de

Orientação

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MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água variável

2 Balde (de 5 litros) 1

3 Béquer de 1.000ml 4

4 Bicarbonato de sódio (40g) 1

5 Caixa de papelão de tamanho suficiente para cobrir a preparação 1

6 Funil de vidro de haste longa 4

7 Ramos de elódea variável

8 Tesoura 1

9 Tubo de ensaio (15mm x 150mm) 4

Procedimento

1.°) Dissolva 40g de bicarbonato de sódio em 4 litros de água.

2.°) Encha quase completamente os quatro béqueres com essa solução.

3.°) Coloque dentro de dois béqueres uma boa quantidade de ramos de elódea, a maior quantidade que seja

possível, e cubra com os funis, cortando os ramos já dentro da solução.

4.°) Coloque os outros dois funis no interior dos béqueres sem os ramos.

5.°) Encha com a solução de bicarbonato de sódio cada tubo de ensaio até transbordar, tampando-o com o

dedo.

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

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6.°) Emborque cada tubo no béquer sobre a haste do funil, retirando o dedo sem deixar entrar ar no tubo.

7.°) Desça cada tubo de ensaio até que fique apoiado sobre o funil.

8.°) Conserve uma montagem com elódeae outra sem elódeabem iluminadas, de preferência expostas ao sol.

Se o dia estiver encoberto, ilumine-as com luz artificial, colocadas à distância de 30cm, aproximadamente.

9.°) Cubra as outras duas montagens com a caixa, para mantê-las no escuro ou guardá-las dentro de um armário.

10.°) Observe as montagens iluminadas e as não iluminadas ao fim de quinze a trinta minutos, anotando os re-

sultados.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 24. Observação da Germinação do Grão de Pólen

OBJETIVO(S): Identificar a formação do tubo polínico

DURAÇÃO: 90 minutos

Item

Denominação, tipo e capacidade

Açúcar

Água

Béquer de 100ml

Conta-gotas

Flores com bastante pólen

Lâmina de vidro

Lamínuia

Microscópio

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Escolha uma flor com bastante pólen (pozinho amarelo) e bata levemente com as anteras sobre a lâmina de

vidro.

2.°) Prepare, no béquer, uma solução bem concentrada de água e açúcar e, com o conta-gotas, pingue uma ou

duas gotas da mesma sobre os grãos de pólen.

3.°) Espere trinta minutos e coloque uma lamínuia sobre o material.

4.°) Leve a preparação ao microscópio e observe em todas as objetivas sucessivamente.

Folha de

Orientação

Página 1/1

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 25. Observação da Germinação da Semente

OBJETIVO(S): Descrever o processo da germinação de uma semente

DURAÇÃO: 30 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

CASCA

VISTA EXTERNA

CASCA

COTILÉDONE

EMBRIÃO

HIPOCÚTILO

GERMINAÇÃO DO FEIJÃO

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Água

Béquer de 250ml

Erlenmayer de 250ml

Grãos de feijão

Guardanapos de papel

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Encha o erlenmayer com água até a metade.

2.°) Coloque trinta grãos de feijão no seu interior.

3.°) Deixe os grãos de molho cerca de vinte quatro horas.

4.°) Coloque um guardanapo de papel no fundo dos béqueres.

5.°) Ponha dez grãos de feijão, dos que ficaram de molho, em cada um dos béqueres.

6.°) Coloque água em um dos béqueres até a metade; em outro, umedeça o guardanapo de papel; e, no último,

deixe seco o guardanapo.

7.°) Examine os recipientes todos os dias, durante cerca de cinco a seis dias.

8.°) Observe e anote, diariamente, as modificações ocorridas.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 26. Observação do Processo de Transporte da Seiva Bruta

OBJETIVO(S): Identificar os vasos lenhosos como elementos transportadores

de seiva bruta nos vegetais vasculares

DURAÇÃO: 60 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

PLACA DE PETRI

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água variável

2 Béquer de 200ml 2

3 Lâmina de corte 1

4 Lâminas de vidro 3

5 Lamínulas 3

6 Microscópio 1

7 Placa de Petri 1

8 Ramos de plantas com flores da coloração branca variável

9 Solução de corante (anilina) ou azul de metileno (20ml) 1

10 Tesoura 1

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

1.°) Coloque água nos béqueres até cerca da metade da altura, acrescentando, aos poucos, o corante, até que a

água adquira uma coloração bem forte.

2.°) Mergulhe o pedúnculo das flores na água e, mantendo-os imersos, corte dois centímetros da sua extremi-

dade.

3.°) Deixe as flores nos béqueres durante um período de vinte e quatro horas.

4.°) Observe se as pétalas adquiriram a coloração da solução na qual se encontram mergulhadas. Caso isto não

ocorra, descasque o pedúnculo da flor, observando onde se encontra o corante.

5.°) Faça cortes longitudinais e transversais no local do pedúnculo onde foi encontrado o corante e prepare uma

lâmina.

6.°) Leve a preparação ao microscópio. Observe e anote as conclusões, utilizando-se a objetiva de menor au-

mento.

Comentário

A realização do corte do pedúnculo no interior da solução contida no béquer visa evitar a entrada de bo-

lhas de ar nos vasos condutores, o que bloquearia a subida, impedindo ou dificultando o transporte da solução.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 27. Observação dos Movimentos dos Vegetais

OBJETIVO(S): Identificar o geotropismo e fototropismo nos vegetais

DURAÇÃO: 30 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água variável

2 Filodendro plantado no vaso variável

3 Lâmina de corte 1

4 Parafina variável

5 Plantinha de feijão 1

6 Rolha de borracha com um orifício 1

7 Tubo de ensaio (15mm x 150mm) 1

Procedimento

1.°) Fenda a rolha de borracha no sentido vertical, da extremidade ao orifício.

2.°) Introduza uma plantinha de feijão bem formada através da fenda e dentro do orifício.

3.°) Encha o tubo de ensaio com água e insira a rolha de borracha, de modo que as raízes da plantinha apontem

para baixo.

4.°) Derreta um pouco de parafina e pingue-a no orifício, ao redor da planta.

5.°) Inverta o tubo de ensaio e deixe-o permanecer nesta posição por alguns dias.

6.°) Observe e anote as modificações ocorridas na planta.

7.°) Coloque o filodendro na janela por alguns dias.

8.°) Observe e anote o que ocorreu com a planta.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 5. Botânica

ATIVIDADE: 28. Observação Macroscópica de Plantas Angiospermas

OBJETIVO(S): Identificar as características de uma planta angiosperma

Diferenciar macroscopicamente uma planta monocotiledônea

de uma dicotiledônea

DURAÇÃO: 60 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

Musa paradisíaca (bananeira)

MONOCOTILEDÔNEA

Coffea arábica (cafeeiro)

DICOTILEDÔNEA

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Estilete 1

2 Lâmina de corte 1

3 Pinça 1

4 Planta dicotiledônea 1

5 Planta monocotiledônea 1

Procedimento

1.°) Observe uma planta monocotiledônea previamente escolhida pelo professor e anote as características

morfológicas da raiz, caule e folha.

2.°) Retire uma flor da planta monocotiledônea e separe os verticilos florais, utilizando-se de uma pinça.

3.°) Observe uma planta dicotiledônea previamente escolhida pelo professor e anote as características morfo-

lógicas da raiz, caule e folhas.

4.°) Retire uma flor da planta dicotiledônea e separe os verticilos florais, utilizando-se de uma pinça.

5.°) Faça um quadro comparativo, anotando as principais diferenças entre plantas angiospermas monocotile-

dôneas e dicotiledôneas.

Comentário

Sugerimos a utilização de plantas monocotiledôneas da família das gramíneas e dicotiledôneas da família

das leguminosas, pois são encontradas com facilidade.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 6. Zoologia

ATIVIDADE: 29. Utilização de uma Chave de Classificação

OB)ETIVO(S): Utilizar corretamente uma chave dicotômica, classificando

alguns invertebrados

DURAÇÃO: 50 minutos

MATERIAL

ITEM Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Exemplares de invertebrados: variável

— aranha

— borboleta

— caracol

— caranguejo

— lacraia

— minhoca

— piolho-de-cobra

— etc.

Procedimento

1.°) Forneça a cada grupo um conjunto dos espécimes mencionados na relação do material, devidamente iden-

tificados por meio de letras ou números.

2.°) Observe cada animal, relacionando as suas principais características.

3.°) Utilize a chave dicotômica, classificando cada animal observado.

Folha de

Orientação

Página 1/2

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

CHAVE DICOTÔMICA PARA FILO DE INVERTEBRADOS

1. a) Corpo com simetria radial 2

b) Corpo sem simetria radial 3

2. a) Corpo mole, com tentáculos Filo dos celenterados

b) Corpo duro e áspero, sem tentáculos Filo dos equinodermas

3. a) Com exoesqueleto 4

b) Sem exoesqueleto 5

4. a) Com apêndices articulados Filo dos artrópodes

b) Sem apêndices articulados Filo dos moluscos

5. a) Corpo segmentado Filo dos anelídeos

b) Corpo não segmentado Filo dos platelmintos

Observação

Os exemplares mencionados podem ser substituídos por outros espécimes disponíveis. Se isto não for pos-

sível, providencie figuras esquemáticas e detalhadas para uso em classe.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 6. Zoologia

ATIVIDADE: 30. Montagem da Cultura de Protozoários no Feno

OBJETIVO(S): Cultivar protozoários para estudo sob o microscópio

DURAÇÃO: 10 minutos

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água destilada (250ml) 1

2 Algodão absorvente (pacote) 1

3 Erlenmayer de 300ml 1

4 Feno 1

Procedimento

1.°) Ponha um punhado de feno dentro do erlenmayer.

2.°) Despeje água destilada dentro do erlenmayer e agite-o.

3.°) Faça um chumaço de algodão absorvente e insira-o na boca do erlenmayer.

4.°) Coloque o frasco em lugar quente e escuro por três dias.

Folha de

Orientação

Página 1/1

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 6. Zoologia

ATIVIDADE: 31. Observação de Protozoários

OBJETIVO(S): Identificar as classes de protozoários e as estruturas de locomoção

DURAÇÃO: 90 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

endopiasma

ectoplasma

pseudópodos

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Conta-gotas 1

2 Lâmina de vidro 3

3 Lamínula 3

4 Meio de cultura variável

5 Microscópio 1

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

1.°) Retire três gotas do meio de cultura, sendo uma do lado, outra da superfície e a última do fundo do reci-

piente, preparando três lâminas respectivamente.

2.°) Leve cada uma das preparações ao microscópio, observe, identifique e esquematize cada animal visuali-

zado.

3.°) Identifique as estruturas de locomoção dos animais visualizados.

Comentário

A Euglena é comumente encontrada em lagos e regatos de fluxo lento. Ela necessita de sol e, portanto, pode

ser encontrada com maior abundância na espuma verde, na superfície de água parada.

A ameba é encontrada nos fundos dos lagos, de regatos de fluxo lento, ou sobre a superfície das folhas de

plantas aquáticas.

Os Paramécios são encontrados em lagos tranqüilos ou estagnados, onde se forma espuma.

DISCIPLINA: Biologia Folha de

UNIDADE: 6. Zoologia Orientação

ATIVIDADE: 32. Observação de um anelídeo

OBJETIVO(S): Identificar as regiões do corpo de uma minhoca e as principais 34

estruturas internas de um anelídeo

DURAÇÃO: 60 minutos Página 1/2

Esquema de um corte longitudinal-mediano da região anterior de uma minhoca do gênero Pherentima.

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Álcool etílico a 10% (I)

Alfinetes

Cuba de dissecação

Estojo de dissecação

Lupa

Minhoca (Pherentima)

Placa de Petri

Quant.

Procedimento

1.°) Coloque, em uma placa de Petri, álcool a 10% e mergulhe as minhocas durante dez minutos.

2.°) Retire um animal e coloque-o estendido na cuba de dissecação.

3.°) Fixe com alfinete a extremidade anterior (boca), mantendo para cima o lado dorsal, distendendo levemente

o corpo do animal e fixando com alfinete a extremidade posterior, próxima ao ânus.

4.°) Faça uma incisão superficial, seguindo a linha mediano-dorsal, desde a região posterior até a anterior, utili-

zando uma tesoura de ponta fina ou bisturi, tendo o cuidado de cortar apenas a parede do corpo, sem dani-

ficar os órgãos internos.

5.°) Observe mais detalhadamente as estruturas internas, colocando o animal dissecado sob a lupa.

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

Comentário

As minhocas são animais que vivem em grande número, em solos úmidos e ricos em húmus, sendo raros em

solos arenosos e secos. As minhocas são de grande importância para a agricultura, pois promovem o arejamento

do solo, construindo galerias em seu interior, como também fazem a decomposição de materiais orgânicos, faci-

litando a formação do húmus.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 6. Zoologia

ATIVIDADE: 33. Dissecação de Moluscos

OBJETIVO(S): Identificar as regiões do corpo de um molusco

Descrever as estruturas interna e externa de um molusco

e suas respectivas funções

DURAÇÃO: 60 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

Intestino

Pulmão

Cavidade do

manto

Faringe

Glândula digestiva

Rim

Boca

Estômago

Coração

Rádula

Glândula

salivar

MATERIAL

Ânus

Item

Denominação, tipo e capacidade

Cuba de dissecação

Estojo de dissecação

Gastrópode (caramujo, caracol, etc.)

Lupa

Placa de Petri

Quant.

Procedimento

1.°) Coloque o animal sobre a cuba de dissecação e observe suas partes externas.

2.°) Quebre a valva (concha), tendo cuidado para não danificar as partes internas.

3.°) Observe o tipo de aparelho respiratório apresentado pelo animal.

4.°) Observe o aparelho locomotor, coração, rim e demais estruturas internas, a olho nu e através da lupa.

Observação

Se possível, ter um gastrópode aquático e um terrestre, fazer a comparação entre os aparelhos respiratórios

dos mesmos.

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 1/1

Procedimento

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Cuba de dissecação 1

2 Estilete 1

3 Exemplares de insetos variável

4 Lupa 1

5 Pinça 1

1.°) Coloque o inseto na cuba de dissecação.

2.°) Observe e identifique as regiões do corpo do animal.

3.°) Identifique as estruturas encontradas em cada região.

4.°) Leve o inseto à lupa, observe e identifique o tipo de aparelho bucal, relacionando-o ao seu hábito alimentar.

Observação

O trabalho deve ser realizado preferencialmente com os insetos considerados pragas das culturas regio-

nais.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 6. Zoologia

ATIVIDADE: 35. Observação das Estruturas Externas dos Peixes Teleósteos

OBJETIVO(S): Identificar as características físicas externas de um peixe teleósteo

DURAÇÃO: 90 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

Esquema do aspecto geral externo de um peixe ósseo.

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Cuba de dissecação 1

2 Lupa 1

3 Peixe fresco ou preservado (perca) 1

4 Peixe vivo em aquário 1

5 Pinça 1

Procedimento

1.°) Deite o peixe na cuba de dissecação com a cabeça voltada para você. Observe a forma geral do mesmo.

2.°) Observe o peixe, identificando os olhos, boca, quatro narinas, escamas, cabeça, abdômen e cauda. Ele

apresenta também barbatanas ósseas que se projetam das regiões dorsal e ventral. A cabeça é coberta com

placas em lugar de escamas, as quais cobrem o restante do corpo.

3.°) Observe o peixe vivo dentro do aquário, identificando as partes principais do seu corpo e maneira de loco-

moção.

4.°) Compare o peixe do aquário com o que está na cuba e observe na cabeça os dois pares de narinas à frente

de cada olho. Estas narinas são usadas somente para o olfato. Em cada lado da cabeça existe um olho sim-

ples que não apresenta pálpebras e possui as pupilas grandes, de modo a admitir a máxima quantidade de

luz. Localizada em cada lado da cabeça, você encontra uma placa dura, que cobre a câmara da guelra. Estas

coberturas são chamadas opérculos, as quais protegem as frágeis guelras abaixo.

5.°) Observe agora as nadadeiras: no lado dorsal do corpo estão duas grandes nadadeiras ou barbatanas; são a

dorsal anterior e a posterior, as quais servem de quilha, a fim de manter o peixe na posição ereta dentro

da água. No lado ventral, encontra-se uma nadadeira isolada, chamada anal e que tem a mesma função das

dorsais. Dois diferentes pares de barbatanas se localizam na direção da extremidade anterior. Um par está

situado bem próximo à cabeça, do lado ventral, são as peitorais e correspondem às patas dianteiras dos

animais tetrápodes. Um pouco atrás das peitorais encontra-se o outro par de nadadeiras, são as pélvicas e

correspondem às patas traseiras dos tetrápodes. Elas funcionam como remos. Na cauda do peixe encon-

tra-se a nadadeira caudal — esta orienta o deslocamento do peixe na água.

6.°) Examine os lados do peixe que está na cuba e observe uma fileira de escamas perfuradas, que vai da cabeça

à nadadeira caudal. Esta é a linha lateral. Nela existem terminais nervosos, sendo um órgão sensorial. Por

meio desta linha, o peixe percebe as vibrações da água.

Folha de

Orientação

Página 2/2

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 6. Zoologia

ATIVIDADE: 36. Dissecação de um Anfíbio

OBJETIVO(S): Identificar e localizar as estruturas internas de um sapo

DURAÇÃO: 100 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Agulhas de dissecação

Alfinetes retos

Bisturi

Cuba de dissecação

Pinça

Sapo conservado

Tesoura

Quant.

Procedimento

1.°) Coloque o sapo, com o lado ventral para cima, na cuba de dissecação.

2.°) Faça uma incisão, com a ponta da tesoura, através da pele, imediatamente acima da abertura anal, esten-

dendo-a até à mandíbula inferior.

3.°) Corte ao redor dos lados do corpo e remova a pele solta.

4.°) Identifique a estrutura dos músculos abdominais.

5.°) Corte, longitudinalmente, os músculos abdominais até a altura do esterno, seccionando-o.

6.°) Afaste os músculos abdominais, expondo os órgãos internos, localizando-os e identificando-os.

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 6. Zoologia

ATIVIDADE: 37. Observação das Estruturas Externas dos Ofídios

OBJETIVO(S): Identificar a forma e as principais partes componentes do corpo

dos ofídios. Relacionar as características que diferenciam os

ofídios peçonhentos e não peçonhentos

DURAÇÃO: 50 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

CAUDA

OLHOS

DENTES

CABEÇA

FOSSETA

LACRIMAL

NÃO-PEÇONHENTAS

PEÇONHENTAS

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Cuba de dissecação

Lupa

Ofídios em conservação (peçonhentos e não peçonhentos)

Pinça

Quant.

1.°) Retire os of ídios do recipiente de conservação, utilizando uma pinça, e coloque-os na cuba de dissecação.

2.°) Observe a forma do corpo, cabeça, pupila, cauda, a presença de dentes inoculadores, narinas, fosseta la-

crimal e o tamanho dos olhos.

3.°) Evidencie a ausência de membros anteriores e posteriores.

4.°) Localize a cloaca, examinando os tipos de escamas que cobrem o corpo do animal.

5.°) Esquematize as características observadas, diferenciando animais peçonhentos de não peçonhentos.

Folha de

Orientação

Página 2/2

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 6. Zoologia

ATIVIDADE: 38. Observação da Reação Entre a Saliva e o Amido

OBJETIVO(S): Verificar a ação enzimática da saliva sobre o amido

Identificar altas temperaturas como um agente inativador enzimático

DURAÇÃO: 45 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/2

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Água

Béquer de 200ml

Conta-gotas

Etiqueta

Farinha de trigo (50g)

Lamparina a álcool

Lugol ou iodo (frasco de 50ml)

Saliva

Tubo de ensaio (15mm x 150mm)

Quant.

variável

Procedimento

1.°) Prepare uma goma e amido dissolvendo em um béquer 20g de farinha de trigo, em 50ml de água.

2.°) Numere os tubos de ensaio de um a três, colocando 5ml da solução de amido nos tubos um e dois.

3.°) Acrescente nos tubos um e dois, duas ou três gotas de lugol.

4.°) Recolher no tubo três a maior quantidade de saliva possível.

5.°) Passe um pouco de saliva do tubo três para o tubo um.

6.°) Ferva o restante da saliva do tubo três, na chama da lamparina.

7.°) Coloque no tubo dois um pouco da saliva fervida.

8.°) Espere cinco minutos, observe e anote as modificações que ocorrem nos tubos.

Comentário

A saliva, substância produzida pelas glândulas salivares, contém uma enzima, a ptialina, que é responsável

pela digestão do amido. À medida que ele é digerido, a coloração desaparece. Esta experiência comprova que as

enzimas não resistem a altas temperaturas. Isto explica por que não ocorreu mudança na coloração no tubo

dois.

DISCIPLINA: Biologia

PROCEDIMENTO

Folha de

Orientação

Página 2/2

MATERIAL

Item

Denominação, tipo e capacidade

Caixas de tamanhos diferentes (de sapatos ou outras

quaisquer) forradas com papel quadriculado

Papel quadriculado (folha)

Régua milimetrada de 30cm

Sementes ou botões, bolinhas, etc.

Quant.

de 40 a 50

Procedimento

1.°) Forre o fundo das caixas com papel quadriculado.

2.°) Espalhe uma quantidade de sementes na caixa maior.

3.°) Conte e anote o número de indivíduos.

4.°) Coloque o mesmo número de sementes na caixa menor.

5.°) Calcule a área do fundo das caixas.

6.°) Divida o número de sementes contidas em cada caixa pela área correspondente, obtendo assim a densi-

dade populacional.

7.°) Coloque os dados obtidos em uma tabela, como a seguinte, comparando-os:

CAIXA GRANDE

N.° de sementes

Área

(cm

)

Densidade

N.° de sementes/cm'

CAIXA PEQUENA

N.° de sementes

Área

(cm

)

Densidade

N.° de sementes/cm

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 8. Ecologia

ATIVIDADE: 39. Cálculo da Densidade Populacional

OBJETIVO(S): Comentar a densidade populacional

Calcular corretamente a densidade de uma população

DURAÇÃO: 40 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

DISCIPLINA: Biologia

UNIDADE: 8. Ecologia

ATIVIDADE: 40. Observação das Relações Produtor/Consumidor

OBJETIVO(S): Identificar a eliminação de Ch pelas plantas e CO

pelos animais

Descrever a interdependência existente entre vegetais e animais

DURAÇÃO: 30 minutos

Folha de

Orientação

Página 1/1

MATERIAL

Item Denominação, tipo e capacidade Quant.

1 Água do nicho ecológico variável

2 Água pura variável

3 Animais aquáticos (girinos, peixes) 4

4 Azul de bromotimol (frasco de 50ml) 1

5 Etiqueta 4

6 Frasco de boca larga de 250ml 4

7 Lamparina 1

8 Parafina variável

9 Ramos de elódea 2

10 Rolha de borracha 4

Procedimento

1.°) Numere os frascos de um a quatro com as etiquetas.

2.°) Coloque água pura no primeiro frasco; coloque nos outros três a água de onde foram retirados os animais

deixando 3cm vazio junto à abertura dos frascos.

3.°) Coloque algumas gotas de indicador em cada um dos frascos, dando coloração levemente azulada.

4.°) Coloque nos frascos um, três e quatro os animais e no dois e três coloque a elódea.

5.°) Feche os frascos com as rolhas e lacre com parafina, verificando se há vazamento, invertendo-os.

6.°) Leve os frascos para onde possam receber luz e fazer duas observações diárias, anotando as alterações veri

ficadas na cor do indicador e no estado dos animais e plantas, durante cinco dias.

7.°) Utilize uma tabela do tipo abaixo para as anotações das observações:

DATA

HORÁRIO FRASCO 1

FRASCO 2

FRASCO 3 FRASCO 4

BIBLIOGRAFIA

AMABIS, J.M.; Martho, G.R.; MIZUGUCHI, Y. Biologia. São Paulo, Ed. Moderna, 1974.

BAKER, J.J.W. & ALLEN, CE. Estudo de biologia. São Paulo, EDUSP, 1972.

BIOLOGICAL Sciences Curriculum Study — BSCS: versão verde. São Paulo, EDART, 1976. v. 3

CURTIS, H. Biologia. Rio de Janeiro, Guanabara Koogan, 1977.

FERRI, M.G. Fisiologia vegetal. São Paulo, USP, 1974.

FUNDAÇÃO BRASILEIRA PARA O DESENVOLVIMENTO DO ENSINO DE CIÊNCIAS. Laboratório básico polivalente de ciências para o 1.º grau;

manual do professor. Rio de Janeiro, FENAME, 1976.

HENNING, G.C.F. Biologia geral. 9.ed. Porto Alegre; Mercado Aberto, Ed. Porto Alegre, 1981.

MELLO, P. Quintanilha Nobre de. Ciências físicas e biológicas. Rio de Janeiro, FENAME, 1974.

MORAES, W.T. de. Biociências. São Paulo, Ed. Nacional, 1978.

PORTO, D.P. Biologia geral. São Paulo, Ática, 1975.

SILVA JÚNIOR, César. Biologia dos seres vivos. São Paulo, Atual, 1978.

UNIVERSIDADE DE PASSO FUNDO. Departamento de Biologia. Práticas de histologia, botânica e zoologia. Passo Fundo, 1977.

UNIVERSIDADE FEDERAL DE SERGIPE. Instituto de biologia. Apostilas. Aracaju, 1967.

DIRETORIA DE APOIO

DIDÁTICO-PEDAGÓGICO

Egberto da Costa Gaia

Chefe do Departamento

de Produção

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Gerente Editorial

Didático-pedagógica

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Gerente de Produção

Editorial-Gráfica

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Preparo de originais

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Catalogação na fonte

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Revisão de originais

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Revisão de provas

Anir Machado Guerra Rego

Maria Thereza Pessoa da Costa

Norma de Magalhães C. Vasconcellos

Acompanhamento gráfico

Benedito César dos S. Nunes

Arte-final das ilustrações

Roberto Moura da Silva

Capa

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Esta obra foi impressa pela

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