( PDF ) B-NADH diminui a sensibilidade da sucinato desidrogenase a inibição por ácido metilmalônico

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE SANTA MARIA

CENTRO DE CIÊNCIAS NATURAIS E EXATAS

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM BIOQUÍMICA

TOXICOLÓGICA

β-NADH DIMINUI A SENSIBILIDADE DA SUCINATO

DESIDROGENASE A INIBIÇÃO POR ÁCIDO

METILMALÔNICO

DISSERTAÇÃO DE MESTRADO

Aledson Rosa Torres

Santa Maria, RS, Brasil

2007

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β-NADH DIMINUI A SENSIBILIDADE DA SUCINATO

DESIDROGENASE A INIBIÇÃO POR ÁCIDO

METILMALÔNICO

por

Aledson Rosa Torres

Dissertação apresentada ao Programa de Pós-graduação em

Bioquímica Toxicológica da Universidade Federal de Santa Maria,

como requisito parcial para a obtenção de grau de

Mestre em Bioquímica Toxicológica

Orientador: Carlos Fernando de Mello

Santa Maria, RS, Brasil

2007

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE SANTA MARIA

CENTRO DE CIÊNCIAS NATURAIS E EXATAS

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM BIOQUÍMICA

TOXICOLÓGICA

A comissão examinadora, abaixo assinada,

aprova a Dissertação de Mestrado

β-NADH DIMINUI A SENSIBILIDADE DA SUCINATO

DESIDROGENASE A INIBIÇÃO POR ÁCIDO METILMALÔNICO

elaborada por

Aledson Rosa Torres

como requisito parcial para obtenção do grau de

Mestre em Bioquímica Toxicológica

COMISSÃO EXAMINADORA

____________________________________

Carlos Fernando de Mello

(Orientador)

____________________________________

Maria Ester Pereira

(Examinadora)

____________________________________

Adriana Coitinho

(Examinadora)

Santa Maria, 04 de Maio de 2007

DEDICATÓRIA

Dedico a Deus por tudo que me destes, grato pela vida e família que me

concedeste. Pela Sua infinita sabedoria, e pelas oportunidades que me

proporcionou.

A minha esposa Cris e ao Mateus, meu filho amado, que pacientemente

suportaram minha ausência. Pela sua compreensão, pelo exemplo de luta e

dignidade, pelo amor, companheirismo, atenção, dedicação e paciência em todos

estes anos. Obrigado por estar sempre ao meu lado e suportar as viagens semanais

do trecho Tapejara – Santa Maria.

AGRADECIMENTOS

Ao Prof. Carlos Mello, por ter me concedido a oportunidade de trabalhar sob sua

orientação, oferecendo uma oportunidade única, e também por sua ajuda, dedicação

e principalmente pela sua amizade e experiência.

Ao Nando, parceiro de longa data, e a Michele, pela disponibilidade que

demonstraram em me auxiliar sempre que precisei.

À Ana Flávia, Mauro, e a Natasha, pela amizade, pelos momentos de descontração,

mas principalmente um especial agradecimento pelo fato de manterem as condições

de funcionalidade deste laboratório na ausência do Carlos.

Ao grupo da pirexia: Ju, Ana, Vivi e André, que “moram” neste laboratório, e nos

finais de semanas e horários mais improváveis que escolhia para desenvolver meu

trabalho, sempre me faziam companhia.

Ao André, IC emprestado, que auxiliou no desenvolvimento da parte prática deste

trabalho, por compartilhar as alegrias e as tristezas, sem nunca desistir, obrigado

pelo seu empenho.

À Flávia e a Lia, as primeiras criaturas que encontrei quando vim prestar a prova de

seleção, pelo carinho, amizade e companheirismo.

Agradeço a Universidade Federal de Santa Maria pela oportunidade e a CAPES,

pelo apoio financeiro.

RESUMO

Dissertação de Mestrado

Programa de Pós-Graduação em Bioquímica Toxicológica

Universidade Federal de Santa Maria, RS, Brasil

β-NADH

DIMINUI A SENSIBILIDADE DA SUCINATO

DESIDROGENASE A INIBIÇÃO POR ÁCIDO METILMALÔNICO

Autor: Aledson Rosa Torres

Orientador: Carlos Fernando de Mello

Data e Local da Defesa: Santa Maria, 04 de maio 2007.

A acidemia metilmalônica, uma das mais frequentes acidemias orgânicas, é causada pela

deficiência da enzima metilmalonil-CoA mutase, ocasionando acumulação tecidual de ácido

L-metilmalônico (MMA). Os indivíduos afetados apresentam letargia, coma, vômito,

hipotonia muscular, episódios recorrentes de acidose metabólica e encefalopatia

progressiva. Em decorrência do acúmulo de MMA ocorre inibição da sucinato desidrogenase

(SDH), E.C.

5.5.99.2,

diminuição da produção de ATP, aumento dos níveis de lactato e

dano excitotóxico. No presente estudo confirmamos que o MMA inibe a SDH

competitivamente e investigamos se a presença de uma agente redutor no meio enzimático

alteraria a atividade da SDH, ou sua inibição por MMA. A atividade da SDH em córtex

cerebral de ratos foi determinada usando o 2-(p-iodofenil)-3-(p-nitrofenil)-5-feniltetrazólio

(INT), como aceptor de elétrons. A pré-incubação com β-NADH (160 µM) preveniu a inibição

da SDH causada por 5 mM de MMA [F(1,5)=9,31; p=0,028]. Posteriormente, foi determinado

os parâmetros cinéticos (K

e V

max

) da SDH pré-incubada na presença e ausência de β-

NADH. O K

da SDH pré-incubada com β-NADH (K

=0,216 nmol INT) é menor que o K

da SDH pré-incubada na ausência de β-NADH (K

=0,272nmol INT), [T(2)=10,375; p=0,009].

Por outro lado a pré-incubação da enzima com β-NADH não alterou a V

max

(4,72 ± 0,28.10

-8

mol INT/mg proteína/min) [T(2)=-1,0; p=0,423]. A constante de inibição (K

) do MMA para a

SDH pré-incubada com β-NADH (K

=20,05 mM) foi maior que o Ki do MMA para a SDH pré-

incubada sem β-NADH (Ki=11,60 mM) [T(2)=18,806; p=0,003]. Os dados mostram que a

presença de β-NADH diminui a sensibilidade da sucinato desidrogenase a inibição por ácido

metilmalônico.

ABSTRACT

Msc. Program in Toxicological Biochemistry

Federal University of Santa Maria, RS, Brazil

β-NADH REDUCES SUCCINATE DEHYDROGENASE SENSITIVITY TO THE

COMPETITIVE INHIBITOR METHYLMALONIC ACID IN CEREBRAL CORTEX OF RATS

Author: Aledson Rosa Torres

Advisor: Prof. Dr. Carlos Fernando de Mello

Place and date: Santa Maria, May 04th, 2007.

Methylmalonic acidemia, one of the most frequent organic acidemias, is caused by

deficiency of the methylmalonyl CoA mutase, leading to tissue accumulation of L-

methylmalolonic acid (MMA). Affects individuals present lethargy, coma, vomiting, muscular

hypotonia, recurrent episodes of metabolic acidosis and progressive encephalopathy. In this

context, it has been proposed that MMA inhibits succinate dehydrogenase (SDH) and leads

to ATP depletion, lactate accumulation and excitotoxic damage. In the present study we

confirmed that MMA competitively inhibits of SDH, and later were investigated the enzymatic

medium reduction alters the activity of SDH or its inhibition by MMA. SDH activity was

determined in cerebral cortex homogenates, using 2-(p-iodophenyl)-3-(p-nitrophenyl)-5-

phenyltetrazolium chloride (INT), as the electorn acceptor. The reduction enzymatic medium

was promoted by preincubation with β-NADH (160 µM). The preincubation of β-NADH

prevented the inhibition of the activity of SDH induzed by 5mM of the MMA [F(1,5)=9.31;

p=0.028]. In addition, was determined of the kinetic parameters (K

and V

max

) and inhition

constant (K

) of SDH preincubated in the presence and absence of β-NADH. The K

of SDH

preincubated with β-NADH (K

=0.216 nmol INT) was different of the K

of SDH preincubated

in the absence of the β-NADH (K

=0.272nmol INT) [T(2)=10.375; p=0.009]. The presence of

β-NADH in the incubation medium did not alter V

max

= 4.72 ± 0.28.10

-8

mol INT/mg

protein/min) [T(2)=-1.0; p=0.423]. The K

of the MMA by SDH activity in presence of the β-

NADH (K

=20.05 mM) is increased that of K

of the MMA by SDH activity in absence of the

β-NADH (K

=11.60 mM), [T(2)=18.806; p=0.003]. In conclusion, we showed that, in the

presence of β-NADH, SDH is less sensitive to the inhibition by MMA.

LISTA DE FIGURAS

Figura 1 – Participação dos ácidos orgânicos no metabolismo intermediário.....18

Figura 2 – Metabolismo do metilmalonil-COA... .................................................19

Figura 3 – Alterações induzidas pela presença de MMA - Falência energética .22

Figura 4 – Estrutura da SDH de E. coli .. ...........................................................27

Figura 5 – Interconversão de succinato à fumarato.. .........................................28

Figura 6 – Efeito do MMA sobre a atividade da SDH..........................................44

Figura 7 – Determinação da concentração de β-NADH sem efeito per se......... 45

Figura 8 – Efeito da pré-incubação do meio enzimático com β-NADH sobre a

atividade da SDH e sua inibição por MMA........................................46

Figura 9 – Determinação do K

e V

máx

para SDH pré-incubada na presença e

ausência de β-NADH.........................................................................48

Figura 10 – Determinação do Ki do MMA para SDH pré-incubada na presença e

ausência de β-NADH – Método gráfico: K

ap vs [MMA]................ ...50

Figura 11 – (A) Determinação do Ki do MMA para SDH pré-incubada com

β-NADH – Método gráfico de Dixon...................................................51

(B) Determinação do Ki do MMA para SDH pré-incubada sem

β-NADH – Método gráfico de Dixon...................................................51

LISTA DE TABELAS

Tabela 1 – Dados clínicos que, na ausência de uma causa definida, sugerem

EIM......................................................................................................................17

Tabela 2 – Potencial de redução dos centros redox da SQR da E. coli.....................28

Tabela 3 – Valores de Ki obtido através de diferentes gráficos.................................49

LISTA DE ABREVIATURAS

3-NPA – Ácido 3-nitropropiônico

ANOVA – Análise de variância

ATP – Adenosina trifosfato

CR – Cadeia respiratória

DCIP – Diclorofenol-indofenol

FAD – Flavina adenina dinucleotídio

GSH – Glutationa reduzida

GSH-Px – Glutationa peroxidase

INT – Cloreto de 2-[4-iodofenil]-3-[4-nitrofenil]-5-feniltetrazólio

mg – miligrama

mM – milimolar

MMA – Ácido metilmalônico

NaCl – Cloreto de sódio

NAD+ – Nicotinamina adenina dinucleotídio oxidada

NADH – Nicotinamida adenina dinucleotídeo reduzida

NMDA – N-metil-D-aspartato

– Oxigênio molecular

OAA – Oxalacetato

– Tampão fosfato

RLs – Radicais livres

ROS – Espécies reativas de oxigênio

SDH – Sucinato desidrogenase

SNC – Sistema nervoso central

SUMÁRIO

1 INTRODUÇÃO................................................................................................ 12

2 REVISÃO BIBLIOGRÁFICA.......................................................................... 15

2.1 Erros inatos do metabolismo.................................................................16

2.2 Acidemia Metilmalônica......................................................................... 19

2.2.1 Tratamento da Acidemia Metimalônica............................................. 25

2.3 Sucinato desidrogenase....................................................................... 26

2.3.1 Estrutura da sucinato desidrogenase................................................ 26

2.3.2 Atividade da sucinato desidrogenase................................................ 30

3 OBJETIVOS................................................................................................... 33

3.1 Objetivo Geral......................................................................................... 34

3.2 Objetivos Específicos............................................................................. 34

4 MATERIAIS E METÓDOS.............................................................................. 35

4.1 Reagentes................................................................................................ 36

4.2 Equipamentos......................................................................................... 37

4.3 Preparo das soluções............................................................................. 38

4.3.1 Solução de Homogeneização............................................................ 38

4.3.2 Solução salina-sacarose.................................................................... 38

4.3.3 Tampão fosfato de potássio.............................................................. 38

4.3.4 Solução azida sódica......................................................................... 38

4.3.5 Solução cianeto de potássio.............................................................. 39

4.3.6 Solução de INT.................................................................................. 39

4.3.7 Solução de ácido metilmalônico........................................................ 39

4.3.8 Solução de sucinato sódico............................................................... 39

4.3.9 Solução de β-NADH.......................................................................... 39

4.3.10 Reagente de Coomassie................................................................. 40

4.4 Animais.................................................................................................... 40

4.5 Preparação da fração enriquecida em mitocôndrias.......................... 40

4.6 Determinação da atividade da SDH....................................................... 41

4.7 Influência do meio reacional sobre a SDH e sua inibição por MMA.. 42

4.8 Análise estatística................................................................................... 42

5 RESULTADOS............................................................................................... 43

5.1 Determinação do efeito do MMA sobre atividade da SDH................ 44

5.2 Determinação da concentração da β-NADH sem efeito per se.......... 45

5.3 Efeito de pré-incubação com β-NADH sobre inibição da SDH

por MMA................................................................................................. 46

5.4 Estudo dos parâmetros cinéticos......................................................... 47

5.4.1 Determinação do K

e V

max

da SDH pré-incubada na ausência

e presença de β-NADH...................................................................... 47

5.4.2 Determinção do Ki do MMA para a SDH pré-incubada na ausência

e presença de β-NADH........................................................................ 49

6 DISCUSSÃO................................................................................................... 52

7 CONCLUSÕES............................................................................................... 58

8 REFERÊNCIAS.............................................................................................. 60

___________________________________________________________________

1 INTRODUÇÃO

Introdução

1. INTRODUÇÃO

Os erros inatos do metabolismo (EIM) são distúrbios hereditários, resultado

de deficiências em atividades enzimáticas, o que ocasiona um bloqueio de diversas

rotas metabólicas. Esse bloqueio, além de induzir um acúmulo de substâncias

tóxicas e/ou a falta de substâncias essenciais, gera distúrbios no desenvolvimento

físico e mental (Oberholzer et al., 1967). Atualmente, o termo EIM se aplica a um

grupo de doenças geneticamente determinadas, decorrente de deficiência em

alguma via metabólica que está envolvida na síntese (anabolismo), degradação

(catabolismo), transporte ou armazenamento de uma substância (Benson e Fenson,

1985).

Apesar de serem eventos raros, os EIM representam importante problema de

saúde e seu diagnóstico, freqüentemente, se constitui em um desafio para o clínico,

uma vez que, a maioria dos sinais e sintomas que acompanham os EIM são comuns

a outras doenças mais freqüentes. Em algumas populações e grupos étnicos

isolados, certos erros do metabolismo, bastante raros na população geral, podem

ser extremamente freqüentes. Como exemplos, temos as doenças de Tay-Sachs e

Gaucher entre os judeus originários do Leste europeu, conhecidos como

Ashquenazim, e a tirosinemia tipo I nos canadenses de ascendência francesa

(Fenton et al., 2001).

Tem sido observado, entre os EIM, uma prevalência maior de acidemias

orgânicas do que aminoacipatias. De fato, em função dos progressos feitos no

campo do diagnóstico dos erros inatos do metabolismo, evidenciou-se que as

acidemias orgânicas são, realmente, os erros inatos mais freqüentes na população

brasileira ( Wajner et al., 2002).

Introdução

A acidemia metilmalônica, um erro inato do metabolismo autossômico

recessivo, é causado por inibição ou pouca atividade da enzima L-metilmalonil-CoA

mutase (EC.5.5.99.2), resultando em acúmulo de ácido metilmalônico e de outros

metabólitos secundários (Fenton et al., 2001).

Os sinais e sintomas da doença variam em gravidade, de acordo com a idade

que se instala o distúrbio metabólico. Quando o quadro se instala precocemente (até

21 dias) o paciente geralmente vai a óbito (Fernandes et al., 1990).

Os pacientes que sobrevivem (menos de 15 %) apresentam convulsões,

retardo mental e psicomotor, além de alterações comportamentais e

neuropsiquiátricas, tais como déficit de atenção, quadros de agressividade e

comportamento autista (Hoffmann et al., 1993).

2 REVISÃO BIBLIOGRÁFICA

Revisão Bibliográfica

2. REVISÃO BIBLIOGRÁFICA

2.1. Erros inatos do metabolismo

O termo “erro inato do metabolismo” foi sugerido por Garrod, em 1908, para

caracterizar quatro situações clínicas que estudava (alcaptonúria, albinismo,

pentosúria e cistinúria). Garrod achava que essas doenças eram devidas a um

bloqueio metabólico. Reunindo suas observações com o fato de os casos ocorrerem

mais freqüentemente em irmãos, filhos de pais consangüíneos, estabeleceu uma

relação com as recém redescobertas leis de Mendel (Giugliani, 1988).

Conceitualmente, erros inatos do metabolismo (EIM) são distúrbios

hereditários transmitidos, em sua maioria, de maneira autossômica recessiva e

resultam da deficiência de atividades enzimáticas, o que ocasiona um bloqueio de

diversas rotas metabólicas. Esse bloqueio, além de induzir um acúmulo de

substâncias tóxicas e/ou falta de substâncias essenciais, pode gerar distúrbios no

desenvolvimento físico e mental (Fenton e Rosemberg, 1995).

Os EIM compreendem mais de 500 distúrbios

(Scriver, 2001), a maioria deles

envolvendo processos de síntese, degradação, transporte e armazenamento de

moléculas no organismo (Benson e Fensom, 1985).

Embora individualmente raros, os EIM são relativamente freqüentes em seu

conjunto, estimando-se que possam ocorrer em até 1 em cada 1000 recém nascidos

vivos (Giugliani et al., 1988). Estudos realizados em grupos considerados de alto

risco indicam uma freqüência de EIM mais de 100 vezes maior nesses indivíduos,

em relação à população em geral (Wannmacher et al., 1982).

Em estudo realizado nas unidades pediátricas de tratamento intensivo em

Porto Alegre (Brasil), a freqüência dos EIM encontrada em pacientes selecionados

Revisão Bibliográfica

através de sintomas e sinais sugestivos foi de 1:15 (Wajner et al., 2002). Coelho et al

(1997) realizaram estudos no Serviço de Genética Médica do Hospital de Clínicas de

Porto Alegre (Brasil) com 10.000 pacientes que apresentavam sinais e sintomas

sugestivos de EIM, no período entre 1982 a 1995, que revelaram 647 casos de EIM

(6,5%), valor similar ao registrado por Wannmacher et al. (1982).

A maioria dos sinais e sintomas que acompanham os EIM são comuns a

outras doenças mais freqüentes, fazendo com que o diagnóstico correto possa ser

retardado ou até mesmo ignorado. Uma relação de sinais e sintomas apresentados

pelos pacientes com EIM nos primeiros meses de vida (Tabela 1) ilustra como estes

podem ser facilmente confundidos com situações mais comuns na prática clínica

(Giugliani, 1988).

Tabela 1. Dados clínicos que, na ausência de uma causa definida, sugerem EIM.

Coma, hipotonia, irritabilidade, convulsões, acidose, distúrbio hidro-eletrolítico,

hipoglicemia, sepsis, icterícia, vômitos ou diarréia em recém-nascidos.

Retardo no desenvolvimento neuromotor e/ou deficiência mental

Regressão neurológica, com perda de habilidades anteriormente adquiridas.

Hepato e/ou esplenomegalia, icterícia colestástica e diarréia crônica.

Deficiência de crescimento e/ou alterações ósteo-articulares

Episódios recorrentes de hipoglicemia, acidose metabólica, desequilíbrio

hidroeletrolítico.

Relato de irmão falecido precocemente sem diagnóstico definido

Consangüinidade entre os pais

Fonte: Giugliani, R., Erros inatos do metabolismo: uma visão panorâmica. Pediatria Moderna,

vol. 23(01) – 1988.

Revisão Bibliográfica

Em 1980, Chalmers e colaboradores observaram uma prevalência maior de

acidemias orgânicas do que aminoacidopatias. De fato, em função dos progressivos

avanços no diagnósticos dos EIM, evidenciou-se que as acidúrias

orgânicas são os EIM mais freqüentes na população (Goodmam e Frermam, 2001).

As acidemias ou acidúrias orgânicas são caracterizadas bioquimicamente

pelo acúmulo de um ou mais ácidos orgânicos nos tecidos dos pacientes afetados e

são causados pela grave deficiência ou ausência na atividade de uma enzima

(Chalmers et al., 1980). Os ácidos orgânicos compreendem metabólitos de,

virtualmente, todas as vias do metabolismo intermediário (Figura 1), assim como de

compostos exógenos (Hoffmann, 1996).

Figura 1. Participação dos ácidos orgânicos no metabolismo intermediário.

O diagnóstico das acidemias orgânicas é realizado através da identificação de

ácidos orgânicos na urina. Uma vez que a maioria das acidemias orgânicas

apresentam, nesse material, um padrão anormal e característico de excreção de

ácidos orgânicos. Entretanto, é importante a análise de ácidos orgânicos no plasma

para a investigação de algumas doenças, como os distúrbios da oxidação dos

ácidos graxos, ou no liquor, para as acidemias orgânicas cerebrais, como por

exemplo, a acidemia láctica cerebral e a deficiência da glutaril CoA desidrogenase

(Buchanan e Thoene, 1991).

Revisão Bibliográfica

2.2. Acidemia Metilmalônica

A acidemia metilmalônica é um erro inato do metabolismo autossômico

recessivo, causado por inibição ou pouca atividade da enzima L-metilmalonil-CoA

mutase (EC.5.5.99.2), uma enzima dependente de vitamina B

, responsável pela

conversão de L-metilmalonil-CoA a succinil-CoA (Figura 2), resultando em acúmulo

de ácido metilmalônico (MMA), e de outros metabólitos secundários como

propionato, metilcitrato, β-OH-propionato e cetonas de cadeia longas (Fenton et al.,

2001).

Figura 2. Metabolismo do metilmalonil-CoA. Adaptado de Devlin, 1998.

Revisão Bibliográfica

Os sinais e sintomas da doença variam em gravidade, de acordo com a idade

que se instala o distúrbio metabólico. Quando o quadro se instala precocemente (até

21 dias) o paciente geralmente vai a óbito (Fernandes et al., 1990).

O diagnóstico laboratorial da acidemia metilmalônica é realizado através do

teste da p-nitroanilina, um resultado positivo indica a possibilidade de acidemia

metilmalônica, sendo que o resultado final deve ser confirmado através da

cromatografia gasosa preferivelmente acoplada à espectrometria de massa

(Carakushanski, 1998).

O quadro laboratorial é caracterizado principalmente por acidose metabólica,

hipercetonemia, hiperamonemia, hipoglicemia, hiperglicinemia, neutropenia e

trombocitopenia (Fenton & Rosemberg, 1995). Os pacientes que sobrevivem (menos

de 15 %) apresentam convulsões, retardo mental e psicomotor, além de alterações

comportamentais e neuropsiquiátricas, tais como déficit de atenção, quadros de

agressividade e comportamento autista (Hoffmann et al., 1993). O tônus muscular

apresenta-se geralmente comprometido, e a hipotonia se acentua após crises de

descompensação metabólica (Fernandes et al., 1990).

Os pacientes podem apresentar alterações morfológicas no sistema nervoso

central como edema da substância branca nas primeiras semanas, podendo evoluir

para um aumento no volume ventricular, desmielização e degeneração dos núcleos

da base (Brismar & Ozand, 1994).

Em crianças e adultos normais a excreção diária de MMA é menor que 0,04

mmol, enquanto que crianças com acidemia metilmalônica podem excretar 2,1 a 49

mmol deste metabólito em um período de 24 horas. As concentrações plasmáticas

de MMA , que são quase indetectávies em indivíduos normais, podem estar entre

0,22 a 2,9 mmol em pacientes (Fenton et al., 2001). O nível de MMA no sangue e no

Revisão Bibliográfica

fluído cerebroespinhal pode atingir 2,5 a 5 mM durante as crises de

descompensação metabólica, e estes níveis podem aumentar ainda mais nas

células neuronais (Hoffmann et al., 1993).

Tem-se demonstrado que o acúmulo de MMA inibe competitivamente a SDH

e a β-OH-butirato desidrogenase cerebral in vitro (Dutra et al., 1993). Wajner et al.,

em 1992, observaram que este ácido reduz a produção de CO

e aumenta a

produção de lactato pelo cérebro. O aumento de lactato pode contribuir para o dano

cerebral, uma vez que, o acúmulo de ácido lático e o aumento na pCO

tecidual

podem provocar acidose grave, levando o pH para valores próximos a 6,0 (Siesjö et

al., 1981). A diminuição do pH intracelular é capaz de inibir a recaptação de

glutamato pela glia, mesmo havendo níveis normais de ATP e, com isso, contribuir

para o dano neuronal excitotóxico (Swanson et al., 1995).

Pacientes com acidemia metilmalônica ou propiônica, em acidose,

apresentam uma redução de até 70% da atividade da enzima citocromo oxidase

(Hayasaka et al., 1982). Em função destes dados tem sido postulado que o MMA

possa causar interferência no metabolismo aeróbico celular, levando provavelmente

a uma diminuição na produção de ATP.

A inibição da SDH e conseqüente redução de ATP levam a despolarização

parcial por falência de ATPases (Figura 3) que mantém o gradiente de íons através

das membranas celulares, principalmente da Na

, K

-ATPase (Nathanson et al.,

1995). A despolarização da membrana leva à saída do Mg

, que bloqueia o canal

do receptor glutamatérgico subtipo N-metil-D-aspartato (NMDA) de maneira

voltagem dependente, e permite a entrada de íons, particularmente Na

e Ca

para

meio intracelular (Macdonald & Schoepp, 1993).

Revisão Bibliográfica

Figura 3 - Prováveis alterações induzidas pela presença de MMA: inibição da SDH neuronal e glial

ocasionando diminuição na produção de ATP e conseqüente falência das ATPases, causando

despolarização neuronal e alterações nos gradientes iônicos. A despolarização provoca liberação de

glutamato armazenado em vesículas sinápticas, e o desaparecimento do gradiente iônico leva a

inibição e reversão dos transportadores responsáveis pela recaptação do glutamato a nível neuronal

e glial aumentando a concentração de glutamato no compartimento extracelular, que liga-se ao

receptor NMDA. A falência energética atinge também a pós-sinapse, causando despolarização e

saída do Mg

que impedia o fluxo de Ca

e Na

através do canal NMDA, além de inibição da Ca

ATPases do retículo endoplasmático, levando a um aumento na concentração intracelular de Ca

que ativa proteases, fosfolipases, endonucleases, proteínas quinases e formação de radicais livres,

provavelmente envolvidos na propagação do foco de despolarização, na gênese da convulsão e

talvez no dano celular

Revisão Bibliográfica

O aumento na concentração celular de Ca

leva à ativação de enzimas

dependentes deste íon envolvidas no fenômeno de neurotoxicidade, incluindo

calpaína (Brorson et al., 1995), fosfolipase C (Umemura et al., 1992), proteína

quinase C (Rothman, 1992; Pavlakovic et al., 1995), calcineurina (Armstrong, 1989;

Snyder & Sabatini, 1995) e a óxido nítrico sintetase, que produz NO

•

(Snyder e

Bredt, 1992). O NO

•

parece interagir com radicais superóxido e formar peroxinitrito,

que pode difundir-se para o meio intra ou extracelular e então promover a oxidação

de lipídios, proteínas e DNA (Beckman et al., 1990; Almeida et al., 1998).

Além destes mecanismos de lesão celular envolvendo a despolarização da

membrana pós-sináptica, a diminuição dos níveis de ATP leva ao aumento na

liberação de glutamato através de mecanismos dependente de cálcio e pela inibição

e/ou reversão de mecanismos de recaptação deste aminoácido excitatório na pré-

sinápse (Madl & Burgesser, 1993). Ativando assim, os receptores glutamatérgicos

subtipo NMDA e AMPA/Kainato.

Vários inibidores metabólicos são capazes de induzir lesão celular por

mecanismos glutamatérgico, particularmente via ativação do receptor subtipo NMDA.

Entre eles pode-se citar a rotenona, cianeto, oxiaminoacetato, 3-nitropropionato e

malonato; estes últimos inibidores da SDH, como o MMA (McDonald & Shoepp,

1993; Brouillet et al., 1994; Zeevalk et al.,1995; Behrens et al., 1995; Pavlakovic et

al., 1995).

Na acidemia metilmalônica pode-se destacar a ação do ácido metilmalônico

na inibição da atividade da creatina quinase total e mitocondrial em córtex cerebral

de ratos com 30 dias de idade e a prevenção deste efeito pela glutationa reduzida

(Schuck et al., 2004). A glutationa também preveni totalmente a ação inibitória do

MMA sobre a atividade da Na

, K

-ATPase em membrana plasmáticas sinápticas de

Revisão Bibliográfica

córtex cerebral de ratos tratados aguda e cronicamente, o que permite a conclusão

de que grupos tiol ou outra demanda oxidativa pode ser responsável pelos efeitos

desencadeados pelo MMA (Wyse et al., 2000).

A administração de MMA intraestriatal causa convulsões e rotações

contralaterais em ratos adultos, que são inibidas por MK-801 e atenuadas por

sucinato, sugerindo o envolvimento de receptores NMDA, e provavelmente da

inibição da SDH nas convulsões induzidas por MMA (Mello et al., 1996). Estas

convulsões são atenuadas pela administração de antioxidantes como a vitamina C e

a vitamina E (Fighera et al., 1999, 2003). Também foi demonstrado que o MMA

induz a formação de substâncias reativas ao ácido tiobarbitúrico in vitro e reduz a

capacidade antioxidante total do sistema nervoso, confirmando que a presença de

MMA induz a formação de radicais livres (Fontella et al., 2000), além de alterar a

atividade da Na

, K

-ATPases em estriado e córtex cerebral de ratos (Mafaltti et al.,

2000).

O dano celular oxidativo, que ocorre pela formação de radicais livres, parece

estar relacionado à patogênese de diferentes doenças neurodegenerativas, incluindo

esclerose lateral amiotrófica (Plaitakis & Constantakakis, 1993), mal de Parkinson

(Jenner, 1994; McNaught et al., 1995), doença de Alzheimer (Jenner, 1994; Harris et

al., 1995), Coréia de Huntington (Jenner, 1994; Lipton & Rosemberg, 1994; Ludolph

et al., 1993; Burns, 1995), bem como em um considerável número de EIM, incluindo

as acidemias orgânicas glutárica, propiônica e metilmalônica (Fighera et al., 1999,

Wajner et al., 2004, Cechini et al., 2003).

Entre as evidências que mostram o envolvimento de espécies reativas em

doenças neurodegenerativas estão o aumento dos parâmetros do estresse oxidativo

no cérebro, incluindo níveis aumentados de ácido malondialdeído (MDA), 4-

Revisão Bibliográfica

hidroxinonenal (HME) e a oxidação protéica de grupos carbonil e 3-nitrotirosina,

assim como concentrações reduzidas de antioxidantes não enzimáticos GSH e

ascorbato, e das enzimas antioxidantes CAT e Glutationa peroxidase (GSH-PX)

(Jenner e Olanow, 1996; Perry et al., 1982).

2.2.1. Tratamento da acidemia metilmalônica

O tratamento dos pacientes portadores de acidemia metilmalônica inclui

medidas terapêuticas como: a) remoção de toxinas através de transfusões de

sangue ou hemodiálises; b) restrição protéica (dieta isenta de aminoácidos valina,

isoleucina, leucina, metionina e treonina); c) terapia com vitamina B

, nas acidemias

metilmalônicas por deficiência de cofator (Orgier de Baurny e Saudubray, 2002); d)

administração de L-carnitina, propiciando a excreção urinária de propionil-carnitina, e

redução da toxicidade do propionato (Burns et al. 1996); e) administração de

metronidazol para reduzir os níveis de propionato (Leonard et al., 2001); f)

administração de ascorbato para diminuir os efeitos da deficiência de glutationa

(Treacy et al., 1996).

Recentemente, estudos utilizando células neuronais em cultura,

demonstraram que o uso de drogas que ativam os canais de K

, como o diazóxido,

é capaz de proteger tecidos isquêmicos, prevenir lesões celulares e teciduais

provocadas por ácido metilmalônico (Kowaltowsk et al., 2006).

Revisão Bibliográfica

2.3. Sucinato Desidrogenase

2.3.1. Estrutura

A sucinato desidrogenase (SDH) está localizada na menbrana mitocondrial

interna, e sua estrutura é composta por quatro sub-unidades SDH A, B, C e D

(Figura 4), sendo as sub-unidades A e B, hidrofílicas enquanto que as sub-unidades

C e D são hidrofóbicas. A sub-unidade A, uma proteína de 70 kDa e 621

aminoácidos, é onde a flavoproteína (FAD) esta ancorada e onde se localiza o sítio

de ligação do substrato, o sucinato. Também é o local de ligação do oxalacetato, um

impportante inibidor e regulador da atividade da SDH (Yankovskaya et al., 2003;

Cechini et al., 2003). A sub-unidade B, tem 27 Kda e 280 amminoácidos, contém

três “clusters” de ferro-enxofre: [2Fe-2S], [4Fe-4S], e [3Fe-4S]. Já as sub-unidades C

e D são proteínas ancoradas na membrana com 15 e 13 Kda, respectivamente, e

contém uma porção protéica heme b que se liga a ubiquinona (Yankovskaya et al.,

2003; Cechini et al., 2003; Brièri et al, 2005).

Estudos têm mostrado que o potencial redox do FAD/FADH

está

significativamente aumentado quando o FAD/FADH

liga-se a flavoproteína,

sugerindo que o alto potencial redox do FAD/FADH

é um pré-requisito importante

para oxidação do sucinato (Efimov et al., 2001).

Revisão Bibliográfica

Figura 4. Estrutura da SDH de E. coli, sub-unidades SDH A, B, C e D, são mostradas em cor

púrpura, laranja, verde e azul, respectivamente. O FAD é mostrado em ouro e o OAA em verde.

Heme b em magenta e a ubiquinona em amarelo. Os átomos de Fe e S, pertencente aos “clusters”

de Fe-S, em vermelho e amarelo, respectivamente. Ao lado, em parênteses as distâncias entre os

centros redox.

Fonte: Yankovskaya et al. Architecture of succinate dehydrogenase and reactive oxigen species

generation. Science, v. 299, p. 700-704, 2003.

Revisão Bibliográfica

Uma vez que ocorre a oxidação do sucinato e a transferência de elétrons para

a sub-unidade A, estes passam seqüencialmente pelos “clusters” de ferro-enxofre, e

têm-se sugerido, que para que ocorra a redução até a ubiquinona é necessário que

o “cluster” [3Fe-4S] encontre-se intacto. Os elétrons podem passar para a porção

protéica heme b, e então, serem entregues a ubiquinona, ou ainda, passarem

diretamente dos “clusters” de ferro-enxofre para a ubiquinona. Esta possui potencial

redox mais alto do que o heme b (Tabela 2), e tem a preferência pelos elétrons.

Portanto, o heme b não é essencial para redução da ubiquinona, sendo sua

importância fisiológica discutível (Cechini et al., 2003).

Tabela 2. Potencial de redução dos centros redox da

SQR da E. coli

Centro redox Potencial redox (mV)

FAD - 79

[2Fe-2S] + 10

[4Fe-4S] - 175

[3Fe-4S] + 65

Heme b + 36

Ubiquinona + 90

Fonte: Cecchini G. Function and Structure of Complex II of the

Respiratory Chain. Ann. Rev. Biochem, 72:77-109, 2003.

As mutações dos genes da SDH podem se manifestar numa variedade de

fenótipos clínicos, entre eles atrofia óptica, formação de tumores, miopatia e

encefalopatia (Rustin e Rötig, 2002). Mutações da SDH A tem sido associados à

síndrome de Leigh (Bourgeron et al., 1995). Mutação causada pela substituição da

porção ARG544 por um resíduo de triptofano, implica em uma baixa atividade da

SDH. Mutações nas sub-unidades SDH B, SDH C e SDH D causam um fenótipo

clínico diferente que as mutações da SDH A (Baysal et al., 2001). Mutações na

proteína ferro-enxofre e no citocromo b estão associados à síndrome do

Revisão Bibliográfica

paraganglioma familiar e ao feocromocitoma (Baysal et al., 2001; Rustin e Rötig,

2002). O feocromocitoma é causado pela mutação na sub-unidade SDH B, onde

ocorre a substituição da porção PRO197 por arginina (Astuti et al., 2001). Mutações

na sub-unidade SDH C, leva ao paraganglioma, uma condição hereditária

autossômica dominante. Tendo sido sugerido também que mutações na sub-

unidade SDH C causam hipersensibilidade para o oxigênio e desenvolvem

envelhecimento celular prematuro, tendo sido sugerido que essa desordem pode

ser a causa do estresse oxidativo produzido pela inibição do complexo II (Senoo-

Matsuda et al., 2001; Ishii et al., 1998).

Mutações da SDH D estão relacionadas com um grande número de doenças

do complexo II. Por exemplo, as mutações na porção His102Leu que contribuem

para o paraganglioma hereditário, baixando o potencial redox do heme b para 100

mV, deixando a enzima menos estável. Outros exemplos são as mutações nas

porções Arg70, Pro81, Asp92, Leu95, na segunda hélice transmembrana, que

rompem o heme, afetando o potencial redox do heme b e a estabilidade do

complexo enzimático (Maklashima et al., 2001).

Revisão Bibliográfica

2.3.2. Atividade da SDH

A SDH, EC. 1.3.99.1, é uma enzima participante do ciclo do ácido cítrico e

desempenha importante função nos mecanismos de transporte de elétrons e

produção de energia. Nas células aeróbicas a SDH catalisa a oxidação do sucinato a

fumarato (Figura 5) transferindo elétrons para ubiquinona (complexo II).

Figura 5. Interconversão de succinato à fumarato

A atividade e inibição da SDH têm sido objeto de estudo de muitos autores

há vários anos. Gutman e Silman (1975) demonstraram que a atividade da SDH

depende de um equilíbrio entre quatro formas estáveis da enzima: forma ligada ao

Oxalacetato (OAA), oxidada ou reduzida, ambas não ativas; e forma livre de OAA,

oxidada ou reduzida, estas ativas. A concentração da forma ativa da enzima

depende do balanço do potencial redox e da concentração da forma livre de OAA,

que atua como um regulador da atividade da SDH.

Várias outras moléculas interferem na atividade do complexo II da cadeia

respiratória. Entre as moléculas ativadoras da SDH podemos destacar: a) o

sucinato, substrato da SDH; b) componentes fisiológicos ligados a CoQH2, ATP e

ITP; c) certos ânions, como o Br

(Kearney et al., 1974). Entre os inibidores

competitivos citamos: D- e L-malato (Gutman et al., 1975; Kearney et al., 1974);

Revisão Bibliográfica

malonato (Fleck et al., 2004) e metilmalonato (Brusque et al., 2002), e o inibidor

irreversível 3-NPA.

Além das condições do ensaio, a técnica usada contribui ou não para

demonstrar a atividade da SDH, ou inibição, por determinados componentes. Uma

técnica muito usada é a da redução do diclorofenol-indofenol (DCIP), em que na

maioria das vezes contém no meio de incubação fenazina metasulfato (PMS), que

tem como papel facilitar a captação dos elétrons pelo DCIP, e conseqüentemente

sua redução. Outra técnica é a que utiliza sais de tetrazólio, 2-[4-iodofenil]-3-[4-

nitrofenil]-5-feniltetrazólio (INT), como aceptor final de elétrons, que uma vez

reduzido produz cor (Green e Narahara, 1980). Esta técnica, por ter a vantagem de

não usar intermediários como a PMS foi a técnica de escolha para este estudo.

Em recente estudo, usando tecidos de ratos jovens, Petenuzzo e

colaboradores (2006) demonstraram que a atividade da SDH e sua inibição por

MMA sofrem variações em função do tecido estudado, bem como da concentração

de substrato (sucinato) no meio. A SDH apresentou maior atividade no rim e no

coração quando comparado ao estriado, hipocampo e fígado. A a inibição da SDH

por MMA na concentração de 2,5 mM, ocorreu apenas no estriado e no

hipocampo, e somente em baixas concentrações de sucinato (0,5 – 1,0 mM). Tal

perfil de inibição é característico de um mecanismo inibitório competitivo. Estes

resultados estão de acordo com outros estudos que também mostraram que o

MMA inibe significativamente o complexo II em estruturas cerebrais (Marisco et al.,

2003; Fleck et al., 2004; Brusque et al., 2002; McLaughlin et al., 1998; Wajner et al.,

1992; Toyoshima et al., 1995; Dutra et al., 1993). Desta forma, sugere-se que o

efeito inibitório do MMA sobre o complexo II é seletivo para as estruturas cerebrais.

Revisão Bibliográfica

Em seus estudos, Kolker e colaboradores (2003), mostram que em

partículas submitocondriais de coração bovino e fibroblastos de camundongo, o

complexo II não é inibido pelo MMA, o que está parcialmente de acordo com dados

de Petenuzzo et al (2006), que também não encontrou inibição da SDH em coração

de os. Porém Kolker e colaboradores (2003) equivocaram-se ao concluir, baseados

em seus estudos, que o MMA não exerce efeito neurotóxico.

Recentemente, tem sido mostrada a influência do estresse oxidativo e a

presença conseqüente de ROS em diversas doenças neurológicas, inclusive na

acidemia metilmalônica (Wajer et al., 2004). De fato, há evidências de que espécies

reativas alteram a atividade de diversas enzimas, principalmente as possuidoras de

grupos ferro-enxofre, como a SDH (Liochev, 1996).

Em 1967, Willianson preconizou que durante o processo de fracionamento e

isolamento das frações mitocondriais ocorria a alteração na razão NAD+/NADH,

alterando o estado redox do meio tecidual. A alteração da razão NAD+/NADH,

modifica a proporção de substratos oxidantes e redutores, e conseqüentemente a

atividade de diversas enzimas.

Tem sido relatado que crianças com acidemia metilmalônica, não raramente,

apresentam episódios de febre, infecção e muitas vezes um quadro septicêmico

antes de desenvolver uma crise metabólica. Estes episódios desencadeiam a

formação de substâncias reativas, sugerindo que o estresse oxidativo pré-dispõe a

crise metabólica. A crise metabólica, por sua vez, gera a formação de mais

substâncias reativas, tornando-se um episódio cíclico de agressão celular.

3 OBJETIVOS

Objetivos

3. OBJETIVOS

3.1 Objetivo Geral

- Investigar a influência da redução do meio reacional sobre a atividade da SDH.

3.2 Objetivos Específicos

- Comprovar a inibição de SDH por MMA, em córtex cerebral de ratos;

- Verificar se a atividade da SDH é influenciada por adição de agente redutor

(160 µM β-NADH) ao meio reacional;

- Verificar se a inibição da SDH por MMA é alterada pela presença de 160 µM

β-NADH;

- Verificar se os parâmetros cinéticos da atividade da SDH sofrem alterações

na presença de β-NADH no meio reacional, através da determinação do K

máx

;

- Verificar a influência da presença de β-NADH no meio reacional sobre a

inibição da SDH por MMA, através da determinação do K

;

4 MATERIAIS E MÉTODOS

Materais e Métodos

4. MATERIAIS E MÉTODOS

4.1 Reagentes

Para a realização do presente estudo foram utilizados os seguintes reagentes:

Ácido clorídrico – Vetec

Ácido etilenodiamino tetracético – sal de potássio – Reagen

Ácido fosfórico – Synth

Ácido sucínico – Sigma

Ácido sulfúrico – Synth

Albumina bovina – Sigma

Azida sódica – Merck

Azul de Coomassie - Sigma

β-NAD+ – Sigma

β-NADH – Sigma

Cianeto de potássio – Merck

Cloreto de magnésio – Reagen

Cloreto de sódio – Ecibra

Etanol – Synth

Fosfato de potássio dibássico – Synth

Fosfato de potássio monobásico – Synth

Glicose – Merck

Hidróxido de potássio – Merck

Hidróxido de sódio – Merck

Sacarose – Vetec

Trizma base – Sigma

Violeta de p-iodonitrotetrazolio – Sigma

Materais e Métodos

4.2. Equipamentos

Agitador de tubos – marca Phoenix AP56

Agitador magnético – marca IKR – Combimag – RCT

Balança analítica – marca Gilbertini

Banho-maria – marca

Centrífuga BE 5100 – marca Bio Eng

Centrífuga refrigerada – marca Eppendorf

Cronômetros – marca Casio

Espectrofotômetro – marca Hitachi U-2001

Fita indicadora de pH – marca Merck

Freezer a – 20°C – marca Cônsul

Geladeira a 4°C – marca Cônsul

Guilhotina

Material cirúrgico (tesoura, bisturi, espátula)

pHmetro – marca Quimis

Pipetas automáticas marca Labsystems de volume variável

Purificador de água

Materais e Métodos

4.3. Preparo das soluções

4.3.1 Tampão de Homogenização

O tampão de homogeneização, contendo Trizma-HCl (10 mM), Sacarose (320

mM) e EDTA-K+ (0,5 mM), foi preparado em água ultrafiltrada tipo 1. O pH 7,4 foi

alcançado com o uso de HCl.

4.3.2 Tampão Salina-Sacarose

O tampão de salina-sacarose: glicose (20 mM), sacarose (270 mM), cloreto de

magnésio (5 mM) e cloreto de sódio (0,9%), foi solubilizado em solução tampão

fosfato de potássio (270 mM), pH final 7,2. Para seu preparo foi utilizado água tipo I.

4.3.3 Tampão Fosfato de Potássio

O meio reacional foi estabilizado com tampão fosfato de potássio (50 mM),

pH 7,4. Sendo o sal solubilizado em água tipo I.

4.3.4 Solução Azida Sódica

A azida sódica (10 mM) foi solubilizada em água do tipo I.

Materais e Métodos

4.3.5 Solução de Cianeto de Potássio

O Cianeto de potássio (1 mM) foi solubilizado em água do tipo I.

4.3.6. Solução p-iodonitrotetrazólio

O p-iodonitrotetrazólio (0,8 mM) foi solubilizado em água ultrapurificada do

tipo 1.

4.3.7 Solução MMA

O MMA (2,5 - 10 mM) foi solubilizado em água tipo I, sendo o pH 7,4

alcançado com adição de solução de KOH.

4.3.8 Solução Sucinato

O succinato de sódio (1,0 mM) foi solubilizado em água tipo I.

4.3.9 Solução β-NADH

O β-NADH (160-800 mM) foi solubilizado em tampão fosfato de potássio

(0,1 M), pH 7,4.

Materais e Métodos

4.3.10. Reagente de Coomassie

O reagente de Coomassie contém: 25 mg azul de Coomassie, 12,5 ml de

etanol, 25 ml de ácido fosfórico (85%) e água q.s.p. 250 ml.

4.4. Animais

Foram utilizados ratos Wistar, machos, com aproximadamente 3 meses de

idade, pesando entre 270-300 g fornecidos pelo Biotério Central da UFSM,

mantidos em ciclo claro-escuro de 12 horas (ciclo claro entre 7 e 19h), em

temperatura de 22

C, com alimento e água “ad libitum”.

4.5. Preparação da fração enriquecida em mitocôndrias

Os animais foram mortos por decapitação e o cérebro rapidamente dissecado

em uma placa de Petri invertida sobre gelo. O córtex foi cuidadosamente retirado e o

restante do cérebro descartado. O córtex foi homogeneizado em 10 volumes (p/v) de

tampão de homogeneização. O homogeneizado foi centrifugado a temperatura de 4

°C, a 3.000 rpm (1.000 x g) por 10 minutos e o sobrenadante obtido centrifugado a

10.000 rpm (12.000 x g) por 20 minutos. O precipitado resultante foi resssuspendido

em solução salina-sacarose, na proporção de 60% do seu volume e congelado por

24 horas para promover a liberação do conteúdo enzimático. O conteúdo de proteína

foi determinado pelo método de Bradford (1976) e ajustado para 1 mg/mL com

Materais e Métodos

solução salina-sacarose. Esta preparação foi utilizada para a determinação da

atividade da SDH.

4.6 Determinação da atividade da sucinato desidrogenase

A atividade enzimática da sucinato desidrogenase foi determinada pelo

método de Green e Narahara (1980) modificado, utilizando o cloreto de 2-[4-

iodofenil]-3-[4nitrofenil]-5-feniltetrazólio (INT) como aceptor de elétrons em um meio

de incubação contendo tampão fosfato 50 mM (pH 7,4), azida sódica (10 mM),

solução de INT 0,8 mM, sucinato de sódio 1,0 mM (pH 7,2) e ácido metilmalônico (0

- 10 mM) pH 7,4.

A reação foi iniciada com a adição de 25 µl da suspensão do enriquecido de

mitocôndrias. Após 15 minutos de incubação a 37°C, a reação foi parada pela

adição de 1,5 mL de álcool etílico. Os tubos foram agitados e colocados em banho

de gelo por 10 minutos. Após esse tempo, os tubos foram centrifugados por 10

minutos a 800 g a temperatura ambiente. A absorbância de 1 mL do sobrenadante

foi medida em espectrofotômetro a 458 nm, que corresponde à redução do INT.

Para a determinação da atividade da SDH, foi realizado a padronização da

técnica, sendo os parâmetros concentração de enzima (proteína), concentração de

substrato, tempo de ensaio e demais procedimentos utilizados, considerados ideais.

Materais e Métodos

4.7. Influência do estado redox sobre a atividade da SDH e a inibição por

MMA.

A influência do estado redox foi avaliada incubando o preparado mitocondrial

com diferentes concentrações de β-NADH (0, 160, 320, 480, 800 µM), por 20

minutos a 37 °C. Imediatamente após a incubação, alíquotas do preperado

mitocondrial pré-incubada com β-NADH foram adicionadas no meio reacional,

contento o MMA, na proporcão de 1 mM de sucinato/5 mM de MMA, iniciando a

reação.

A concentração de β-NADH foi escolhida a partir de uma curva de

concentração, onde foi determinado que a concentração de 160 µM de β-NADH não

apresentava efeito per se.

4.8. Análise estatística

Os dados foram avaliados por análise de variância de uma ou duas vias

(ANOVA), dependendo do desenho experimental utilizado. O teste de comparação

múltipla utilizado foi o teste de Tukey.

5 RESULTADOS

Resultados

5. RESULTADOS

5.1 Determinação do efeito do MMA sobre a atividade da SDH

A atividade da SDH em enriquecido mitocondrial de córtex de ratos foi

determinada na presença de MMA (0; 2,5; 5,0 e 10 mM), e 1,0 mM de sucinato. A

análise estatística mostrou que o MMA inibiu a atividade da SDH [F(3,12)=12.06,

p=0.001], de maneira dose-dependente (r=0.98). As diferenças entre as médias dos

vários grupos foram analisadas por ANOVA seguida pelo teste Tukey (Figura 6).

Fig. 6. Efeito do ácido metilmalônico sobre a atividade da sucinato desidrogenase em córtex cerebral

de ratos. Valores representam a média ± E.P. de n= 4 experimentos realizados em triplicata. A

atividade da SDH foi medida na presença e ausência de MMA. *Indica diferença significativa em

relação ao grupo controle, P = <0.05, “pos-hoc” teste de Tukey.

Resultados

5.2 Determinação da concentração de β-NADH sem efeito sobre o meio

reacional

Na Figura 7 pode-se observar o efeito da pré-incubação com β-NADH (160-

800 µM), sobre a atividade da SDH. A concentração escolhida, a qual não

apresentou efeito per se, foi de 160 µM de β-NADH [F(4,13)=5,319, p=0,009]. As

diferenças entre as médias dos vários grupos foram analisadas por ANOVA

seguidas pelo teste Tukey.

Fig. 7. Efeito da pré-incubação do β-NADH sobre a atividade da SDH em córtes cerebral de ratos.

Dados representam a media ± E.P. de n= 4 experimentos (animais) realizados em triplicata.*P < 0,05

comparado com o grupo controle incubado sem β-NADH, post-hoc teste de Tukey.

Resultados

5.3 Efeito da pré-incubação de β-NADH sobre a inibição da SDH por MMA

Após a escolha da concentração de β-NADH sem efeito per se, verificou-se o

efeito da pré–incubação com (160µM de β-NADH) sobre a inibição da SDH por

MMA. A análise estatística (ANOVA com medidas repetidas) mostrou que a pré-

incubação de 160 µM de β-NADH protegeu a SDH da inibição por 5,0 mM de MMA

[interação significativa: pré-incubação (ausência ou presença de 160µM β-NADH) x

inibidor (ausência ou presença de 5 mM de MMA) F(3,20)=9,42, p=0,028] (Figura 8).

Fig. 8. Efeito da pré-incubação com 160

µM de β-NADH sobre a atividade da SDH e sua inibição

por 5 mM de MMA. Os dados representam a média ± E.P. de n = 6, experimentos realizados em

triplicata * P < 0,05 comparando o grupo controle com os outros grupos (Controle-β-NADH e β-

NADH-MMA), ANOVA (para medidas repetidas).

Resultados

5.4. Estudo dos parâmetros cinéticos da reação entre SDH e MMA na ausência

e presença de β-NADH

5.4.1. Determinação do K

e V

máx

da SDH pré incubada ou não com β-NADH

Tendo sido observado que a pré incubação de enzima com 160 µM de β-

NADH protege a enzima da inibição pelo MMA, determinamos os parâmetros

cinéticos (K

e V

máx

) da enzima pré-incubada com e sem β-NADH.

Na determinação do K

foram utilizadas as seguintes concentrações de

sucinato: 0,05; 0,075; 0,1; 0,15; 0,2; 0,3; 0,5; 1,0 e 2,0 mM. Os resultados foram

obtidos com a média de três diferentes ensaios, todos em triplicata.

O gráfico do duplo recíproco, Lineweaver-Burke (Figura 9), foi utilizado para

estimar o K

e a V

máx

da reação. Sendo que a K

para SDH do córtex de ratos,

incubada com 160 µM de β-NADH foi de 0,216 nmol INT, diferente da K

enzima incubada sem β-NADH, K

= 0,272 INT, [T(2)=10,375; p=0,009]. A V

máx

4,72 ± 0,28 x 10

-8

mol INT/ mg proteína/minuto, foi igual em ambos os tratamentos

[T(2)=-1,0; p=0,423].

Resultados

Fig. 9. Determinação do K

e V

máx

da SDH de córtex cerebral de ratos, pré-incubada na ausência e

presença de 160 µM de β-NADH. Representação gráfica de Lineweaver-Burk. Grupo controle

(ausência de β-NADH ): K

= 0,272 nmol INT, grupo pré-incubado com β-NADH, K

= 0,216 nmol

INT. V

máx

= 4,72 ± 0,28 x 10

-8

INT/mg/min. Figura gráfica representativa de um experimento isolado.

Resultados

5.4.2. Determinação da constante de inibição (K

) do MMA para a SDH pré-

incubada com ou sem β-NADH

Para esclarecer ausência de inibição da SDH pré-incubada com β-NADH,

determinamos o K

do MMA para a SDH em ambas as situações, pré-incubada na

ausência e/ou presença de 160 µM de β-NADH. Para isso, foi realizada uma curva

de substrato (0,05; 0,075; 0,1; 0,133; 0,2 e 1 mM) na presença das seguintes

concentrações do ácido: 0, 1, 3, 6 e 10 mM. Todos os experimentos foram

realizados em triplicata.

Conforme a representação gráfica K

ap vs [MMA], para a enzima pré-

incubada com β-NADH o K

foi calculado como sendo 20,05 mM, diferentemente da

enzima pré-incubada sem β-NADH, que apresentou um K

=11,60 mM;

[T(2)=20,05;p=0,003] (Figura 10). Valores semelhantes aos valores de K

obtidos

através do cálculo pelo método gráfico de Dixon (Dixon e Webb, 1964), (Tabela 3).

Tabela 3 – Valores de k

obtidos através de diferentes gráficos

Gráfico

Ki (enzima sem NADH)

Ki (enzima com NADH)

1/V vs [MMA] - Dixon

12,20 mM 23,88 mM

ap vs [MMA]

11,60 mM 20,05 mM

Resultados

Fig. 10. Determinação do K

: análise do plot Km

vs [MMA], o intercepto do eixo do x representa -K

Para o grupo controle, enzima pré-incubada sem β-NADH, K

= 11,60 mM, enquanto que para a

enzima pré-incubada com β-NADH, K

= 20,05 mM. Figura gráfica representativa de um experimento

isolado.

Fig. 11– Determinação do K

do MMA para SDH pré imcubado na presença de β-NADH (A) e na

ausência de β-NADH (B) – Segundo método gráfico de Dixon. Figuras representativas de um

experimento isolado.

6 DISCUSSÃO

Discussão

6. DISCUSSÃO

O efeito de análogos do sucinato, como o malonato e o metilmalonato, sobre

a atividade da SDH vem sendo investigado por muitos autores há vários anos. Tem

sido mostrado que o MMA inibe competitivamente a SDH de várias estruturas

cerebrais como: hipocampo, estriado e córtex cerebral. Contudo, um grupo, de forma

isolada, descreveu que o MMA não inibe diretamente a SDH em frações

submitocondriais de coração (Kolker et al., 2003). Os mesmos autores, neste

mesmo estudo, sugeriram que o MMA não inibia a sucinato desidrogenase de

fibroblastos de camundongo, em um experimento com um “n” reduzido, que beirou a

significância estatística. A principal conclusão do estudo de Kolker et al (2003) é que

o MMA não inibe a SDH de coração bovino e, por esta razão, não seria neurotóxico.

Os dados apresentados no presente estudo reforçam os estudos prévios que

mostraram que o MMA inibe a SDH competitivamente em enriquecido mitocondrial

de córtex de ratos (Figura 6), confirmando os resultados descritos por Marisco et al.,

(2003); Fleck et al., (2004); Brusque et al., (2002); McLaughlin et al., (1998); Wajner

et al., (1992); Toyoshima et al., (1995); Dutra et al., (1993); Petenuzzo et al., (2006).

Contudo, dada a importância do veículo no qual os dados de Kolker e

colaboradores foram publicados, e a recente publicação do grupo do Dr. Moacir

Wajner (Petenuzzo et al., 2006), segundo a qual a SDH de coração é insensível ao

MMA, cabe uma discussão um pouco mais detalhada sobre a divergência de nossos

dados com os dados do grupo alemão. A partir de uma análise crítica e detalhada

dos estudos publicados por Kolker e colaboradores citamos como causa provável de

tal divergência os seguintes fatores: a) origem do tecido estudado: os resultados

obtidos nos ensaios com coração bovino e homogeneizado de músculo de rato não

podem ser aplicados a outros tecidos, e muito menos podem servir de evidência de

mecanismo neurotóxico do MMA. De fato, Pettenuzzo et al. (2006) mostraram que a

atividade da SDH, bem como sua inibição por MMA, são característicos aos

diferentes tecidos estudados (Pettenuzzo et al., 2006); b) A concentração de

substrato utilizada foi inadequada. Tratando-se de um mecanismo de inibição

competitiva, a concentração alta de sucinato (> 10 mM) prejudicou a observação da

inibição da SDH por MMA. Conforme Dutra et al (1993), concentrações baixas de

substrato (1 mM) são requeridas para mostrar que o MMA (2,5 mM) inibe a

atividade da SDH em cérebros e fígado de ratos, e esta inibição é reversível por

adição de 5 a 16 mM de substrato (Brusque et al., 2002), respectivamente; c) A

concentração de inibidor foi inadequada. Para mostrar que o MMA não inibe SDH,

em homogeneizado de músculo esquelético de ratos, Kolker e colaboradores

usaram uma concentração baixa de MMA (1 mM); d) Os métodos estatísticos

utilizados foram inadequados (teste T para amostras não-pareadas). Uma vez que o

mesmo homogeneizado de músculo esquelético de ratos foi incubado na presença e

ausência de inibidor, a medida da atividade enzimática nestas condições é

dependente entre os grupos. Portanto, deveria ter sido utilizado o teste T para

amostras pareadas. O tratamento de variáveis dependentes como independentes

diminui o poder de prova do teste estatístico, aumentando a probabilidade de ocorrer

um erro tipo II (não encontrar uma diferença estatística onde ela de fato existe).

Esses fatores foram decisivos para que o grupo alemão chegasse à

conclusão equivocada de que o MMA não inibe a SDH em fibroblastos e não exerce

efeito neurotóxico direto. Na verdade, a partir dos dados publicados por Kolker, só se

pode afirmar que em partículas submitocondriais de coração bovino o MMA não

inibe o complexo II.

Contudo, havia um dado de nosso grupo que sugeria que a inibição da SDH

por MMA em enriquecido mitocondrial de estriado de ratos era dependente da

presença de fenazina no meio de incubação (Marisco et al., 2003). De fato, na

ausência de fenazina o malonato inibia claramente a SDH, mas o MMA, em

nenhuma das concentrações testadas, foi capaz de inibir a redução do DCPIP. Este

dado (reproduzido, de certa forma pelo grupo alemão) foi interpretado como um

“artefato” de medida da atividade enzimática. Nós, por outro lado, o interpretamos

como uma suscetibilidade diferencial conferida pela fenazina ao complexo II ao

MMA, de maneira análoga aos estudos pioneiros de Gutman na década de 70, que

mostraram que a inibição da SDH por oxalacetato dependia do estado de oxidação

do grupo prostético da SDH (Gutman, 1975). De acordo com Gutman, a oxidação do

FAD deixava a enzima mais suscetível à inibição (competitiva) por oxalacetato.

Assim, nós resolvemos investigar se a modificação do estado redox da SDH poderia

modificar a sensibilidade da SDH ao inibidor competitivo metilmalonato.

Para mostrar o efeito do MMA sobre a SDH, utilizamos a técnica da redução

do 2-[4-iodofenil]-3-[4nitrofenil]-5-feniltetrazólio (INT) como aceptor final de elétrons.

Esta técnica que apresenta a vantagem de não usar intermediários como a PMS,

sendo os elétrons entregues diretamente ao reagente de cor, e se pode parar a

reação quando desejado.

Tem sido descrito que o processo de fracionamento e isolamento das frações

mitocondriais altera a razão NAD+/NADH, e conseqüentemente, o estado redox do

meio tecidual, modificando, assim, a proporção de substratos oxidantes e redutores

disponíveis as reações enzimáticas (Willianson 1967). Para determinar se a

disponibilidade maior de um agente redutor modificaria a atividade da SDH e/ou

sua inibição por MMA, reduzimos o meio enzimático pela adição de β-NADH. Desta

forma, estaríamos induzindo a redução do FAD antes da incubação com o substrato,

e poderíamos avaliar se a pré-incubação com o agente redutor modificaria a

suscetibilidade da SDH ao MMA. Contudo, havia relatos na literatura que indicavam

que o β-NADH poderia reduzir o reagente de cor (INT) diretamente (Smith and

McFeters, 1997; Uppu, 1995; Whitaker, 1968). Para afastar essa possibilidade,

realizamos uma curva de concentração de β-NADH sobre a atividade da SDH. A

concentração de 160 µM de β-NADH foi escolhida por ser a menor sem efeito per se

(figura 7), ou seja, que fosse incapaz de modificar a atividade da SDH.

Ainda, para nos certificar de que não haveria qualquer tipo de interação entre

β-NADH e o INT realizamos a determinação da V

max

e do K

(Lineweaver-Burk)

para a enzima pré-incubada na presença e na ausência de 160 µM de β-NADH

(figura 9). A enzima pré-incubada com β-NADH apresentou menor valor de K

0,216 nmol/L INT do que a enzima pré-incubada sem β-NADH, K

=0,272 nmol /L

INT, enquanto que a V

máx

foi igual para ambas as condições de pré-incubação..

A redução do valor de K

para a enzima pré-incubada com β-NADH, sugere

que o nucleotídeo reduzido aumenta a afinidade entre a enzima e o substrato. Por

outro lado, a determinação de valores idênticos de V

max

para as duas condições

comprova que o β-NADH, nesta concentração, não é capaz de promover a redução

direta do INT. Esses resultados cinéticos nos asseguram que usamos uma

concentração de β-NADH sem efeito “per se” no ensaio.

A seguir, testamos a influência do β-NADH sobre a inibição da SDH por 5

mM de MMA. Neste ensaio verificamos que pré-incubação com β-NADH não

alterou a atividade da SDH, mas preveniu a inibição induzida por MMA (figura 8).

Para esclarecer o mecanismo envolvido na diminuição da sensibilidade da

SDH à inibição por MMA na presença do nucleotídeo, determinamos a constante de

inibição (K

) do MMA para a SDH, na presença e ausência de β-NADH. O valor de

para MMA da enzima pré-incubada com β-NADH (K

= 20,05 nmol) foi maior do

que o determinado no grupo controle (K

=11,60 nmol) (figuras 10, 11A e B). O

aumento do valor determinado de K

mostra que a pré-incubaçao com β-NADH

diminui sensibilidade da SDH à inibição por MMA.

Em suma, nossos resultados sugerem que a pré-incubaçao com um agente

redutor (β-NADH) aumenta a afinidade entre a SDH e o substrato, e diminui a

sensibilidade da enzima a inibição por MMA, provavelmente por alterar a

conformação da enzima. Estes dados também sugerem que a inibição da SDH por

MMA pode ser precipitada por situações de estresse metabólico (e oxidativo), nos

quais há uma diminuição na proporção de equivalentes reduzidos em relação aos

oxidados. Estes dados, de certa forma, podem explicar a maior suscetibilidade dos

pacientes metilmalônicacidêmicos a desenvolver crises de acidose metabólica

quando lhes é infringido um estresse metabólico, como uma infecção viral, por

exemplo. Nestes casos a SDH se tornaria mais sucetível à inibição por MMA, que já

se encontra geralmente aumentado nestes pacientes, propiciando uma inibição

metabólica (ao nível do Ciclo de Krebs) e as conseqüências neurológicas que a

inibição do complexo II acarreta, como morte celular e convulsões.

7 CONCLUSÕES

Conclusões

7. CONCLUSÕES

Com base nos resultados obtidos, conclui-se que:

 A atividade da SDH , em córtex de ratos, é inibida de maneira dose-dependente

por ácido metilmalônico.

 A Atividade da SDH não é alterada pela presença de 160 µM de β-NADH.

 A redução do meio reacional, e conseqüentemente da enzima, promove a

proteção da SDH à inibição por MMA.

 A pré-incubação da enzima com β-NADH aumenta a afinidade (K

) da enzima

pelo substrato, e não altera o valor da V

max

 A pré-incubação da enzima com β-NADH, aumenta o valor de K

do MMA para

a SDH.

8 REFERÊNCIAS

Referências

8. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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