( PDF ) Desenvolvimento de método para determinação de resíduos de pesticidas em alface (lactuca sativa l.) produzida em sistema convencional

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE SERGIPE

PRÓ-REITORIA DE PÓS-GRADUAÇÃO E PESQUISA

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM QUÍMICA

DESENVOLVIMENTO DE MÉTODO PARA DETERMINAÇÃO DE RESÍDUOS

DE PESTICIDAS EM ALFACE (Lactuca sativa L.) PRODUZIDA EM SISTEMA

CONVENCIONAL

ROGÉRIO LUIZ DA SILVA

SÃO CRISTÓVÃO/SE

2010

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DESENVOLVIMENTO DE MÉTODO PARA DETERMINAÇÃO DE RESÍDUOS

DE PESTICIDAS EM ALFACE (Lactuca sativa L.) PRODUZIDA EM SISTEMA

CONVENCIONAL

ROGÉRIO LUIZ DA SILVA

ORIENTADOR: Prof. Dr. Sandro Navickiene

SÃO CRISTÓVÃO/SE

2010

Dissertação apresentada ao

Núcleo de Pós-Graduação em

Química da Universidade Federal

de Sergipe como requisito para a

obtenção do título de Mestre em

Química.

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FICHA CATALOGRÁFICA ELABORADA PELA BIBLIOTECA CENTRAL

UNIVERSIDADE FEDERAL DE SERGIPE

S586d

Silva, Rogério Luiz da

Desenvolvimento de método para determinação de

resíduos de pesticidas em alface (lactuca sativa)

produzida em sistema convencional / Rogério Luiz da

Silva. – São Cristóvão, 2010.

83 f. : il.

Dissertação (Mestrado em Química) – Programa de

Pós-Graduação em Química, Pró-Reitoria de Pós-

Graduação e Pesquisa, Universidade Federal de

Sergipe, 2010.

Orientador: Prof. Dr. Sandro Navickiene

1. Pesticidas. 2. Alface. 3. Lactuca sativa. 4. Toxidade.

I. Título.

CDU 543.393/.54

Este trabalho é dedicado especialmente aos meus pais,

Ivanete Lustosa Silveira da Silva e Reginaldo Luiz da Silva,

por toda a dedicação, carinho, atenção, inspiração

profissional e por me ensinar que a vida é uma vitória diária,

à grande educação e incentivo que me foi concedido; e a

vocês declamo meu enorme amor e carinho por serem

aqueles que considero os melhores pais que eu possa

merecer, sem dúvida alguma.

AGRADECIMENTOS

Agradeço a Deus, por sempre ter me dado a oportunidade de ser alguém

melhor e dar suporte a realização dos meus sonhos.

Ao apoio incondicional dos meus pais, principalmente no desenvolvimento da

minha vida educacional desde a pré-escola até hoje quando me torno mestre,

sei que ainda vão caminhar muito comigo, e agora no doutorado. A vocês é que

procuro me dedicar cada dia mais e nunca esquecendo a simplicidade que

fizeram questão de me ensinar.

Ao meu irmão que sempre me incentivou a ir além do que ele achava não

conseguir chegar.

A minha noiva, Ana Cristina, por me apoiar sempre e por acreditar que eu seria

capaz de superar todos os obstáculos, me apoiando e ajudando no que estava

a seu alcance, mesmo que isso as vezes proporcionasse a minha distância

temporária, mas mesmo assim compreendeu os motivos e me alavancou ao

ponto mais alto que eu poderia chegar, obrigado por tudo.

Aos meus sogros por apoiar e incentivar sempre.

Ao meu grande amigo e irmão Marcelo que desde o vestibular esteve ao meu

lado, apoiando, incentivando e acreditando que poderia chegar sempre mais

longe, com as suas palavras as vezes dura me ensinou que na vida não

devemos ter máscaras e que dar uma segunda chance as pessoas é sinônimo

de nobreza.

Agradeço à Universidade Federal de Sergipe pelo ensino gratuito e de qualidade e

ao Laboratório de Análise de Compostos Orgânicos Poluentes.

Um agradecimento especial ao meu orientador prof. Sandro Navickiene pela

oportunidade de ser seu aluno de mestrado, pela atenção, pelos puxões de orelha e

por me mostrar que ser um pesquisador não é apenas estar no laboratório e sim ter

dedicação sempre na busca dos melhores resultados, mesmo que para isso as

vezes seja necessário caminhar sozinho.

Aos professores Haroldo Silveira Dórea e Marcelo da Rosa Alexandre por sua

grata ajuda ao longo do mestrado e nas bancas de qualificação e defesa. E a

professora Djalma Andrade por sua orientação na graduação e grande

amizade.

Aos meus antigos colegas de graduação Ana Geli, Katia Cristina, Ana Cristina,

Renata e Emanuella.

Aos amigos que fiz nesse mestrado, em especial a Márcia e Claudia, que foram

companheiras de todas as horas e por estarem sempre ao meu lado, a Michel

que abriu as portas do GC na minha cabeça, a Marcell por sempre estar pronto

a ajudar e apoiar e a Elissandro e Vanessa pelas dúvidas respondidas e o apoio

dado, vocês são partes desse mestrado.

Aos amigos do LEMON, Amanda, Juliana, Tássia, Valéria e meu brother André

pela ajuda na hora sempre certa.

Aos colegas do LCP Ricardo, Débora, Tamires Cruz, Alain Gaujac, Daniela,

Adalberto, Daniele, Samia, Gisele, Renata e Fabrício pelo clima de harmonia e

alegria no laboratório.

Aos professores do Departamento de Química: Nivan, Paulo Cesar, José do

Patrocínio, Luciane, Maria de Lara, Carlos Alexandre, Simone, Catia e Ana

Paula. Enfim, agradeço a todos que de alguma maneira contribuíram para a

realização deste trabalho.

SUMÁRIO

LISTA DE FIGURAS..............................................................................................i

LISTA DE TABELAS............................................................................................iii

LISTA DE ABREVIATURAS OU SIGLAS.............................................................v

RESUMO.............................................................................................................vii

ABSTRACT..........................................................................................................ix

1. INTRODUÇÃO.................................................................................................1

2. OBJETIVOS....................................................................................................3

2.1 – Objetivo Geral...........................................................................................3

2.2 – Objetivos Específicos...............................................................................3

3. JUSTIFICATIVA................................................................................................4

4. FUNDAMENTAÇÃO TEORICA......................................................................5

4.1 – Pesticidas.................................................................................................5

4.2 – Classes químicas dos pesticidas selecionados......................................10

4.3 – Hortaliça em estudo: Alface....................................................................14

5. MÉTODO ANALÍTO......................................................................................15

5.1 – Programa de monitoramento.................................................................16

5.2 – Método de multirresíduo de pesticidas..................................................17

5.3 – Dispersão da matriz em fase sólida.......................................................18

5.3.1 – Características dos suportes-adsorvente selecionados para

dispersão da matriz em fase sólida...................................................22

5.4 – Cromatografia a gás e espectrometria de massas................................23

6 . REVISÃO DE LITERATURA.........................................................................25

7 . EXPERIMENTAL..........................................................................................28

7.1 – Material...................................................................................................28

7.2 – Solventes e sorventes............................................................................28

7.3 – Padrões de pesticidas............................................................................28

7.4 – Equipamentos.........................................................................................28

7.5 – Preparação de amostra de alface...........................................................29

7.6 – Fortificação de amostra de alface...........................................................29

7.7 – Preparação das soluções padrão dos pesticidas...................................29

7.8 – Condições cromatográficas de análise...................................................29

7.9 – Validação de Método Analítico...............................................................30

7.9.1 – Exatidão...............................................................................................31

7.9.2 – Precisão...............................................................................................32

7.9.3 – Linearidade..........................................................................................32

7.10 – Limpeza do material.............................................................................33

7.11 – Método de Extração por Sólido-Líquido...............................................33

7.12 – Método de extração por MSPD............................................................34

8. RESULTADOS E DISCUSSÃO....................................................................36

8.1 – Seleção dos princípios ativos (pesticidas)..............................................36

8.2 – Otimização das condições cromatográficas...........................................36

8.3 – Ensaios para desenvolvimento do método de extração por MSPD.......38

8.3.1 – Escolha de adsorvente e proporção matriz:adsorvente......................38

8.3.2 – Ensaios para escolha do solvente de eluição......................................42

8.4 – Efeito matriz............................................................................................45

9. VALIDAÇÃO DO MÉTODO ANALÍTICO.....................................................47

9.1– Exatidão...................................................................................................48

9.2 – Precisão..................................................................................................50

9.3 – Linearidade.............................................................................................51

9.4 – Limite de detecção (LOD).......................................................................53

9.4.1– Limites de detecção do método validado com o encontrado na

literatura................................................................................................54

9.5 – Limite de quantificação (LOQ)................................................................55

10. NOVOS MATERIAIS PARA MSPD............................................................57

11. CONSIDERAÇÕES FINAIS........................................................................59

12. PERSPECTIVAS FUTURAS......................................................................60

12. REFERÊNCIAS..........................................................................................61

LISTA DE FIGURAS

Figura 1. Principais rotas de transporte e degradação de agrotóxicos

no ambiente..........................................................................................................6

Figura 2. Alface (Lactuca sativa)........................................................................14

Figura 3. (a) alface plantada em meio convencional e (b) alface plantada

em sistema de estufa.........................................................................................15

Figura 4. Esquema da dispersão da matriz em fase sólida................................19

Figura 5: Fluxograma do processo de MSPD para extração de pesticidas

de alface.............................................................................................................35

Figura 6: Cromatograma (GC/MS, modo SIM) de uma solução padrão dos

analitos (1,0 µg mL

-1

), sendo: 1) pirimicarbe; 2) parationa metílica; 3) mala-

tiona; 4) procimidona; 5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam............................37

Figura 7: Eficiência na recuperação (n = 2) dos pesticidas em alface utilizan-

do sílica:alumina nas proporções 2:1 e 1:1 (m/m)..............................................40

Figura 8: Cromatograma silica:alumina 1:1, em acetonitrila, obtido por GC-

MS. Sendo: 1) pirimicarbe; 2) parationa metilica; 3) malationa; 4) procimi-

dona; 5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam. Para condições cromato-

gráficas ver item 7..............................................................................................41

Figura 9: Cromatograma silica:alumina 2:1, em acetonitrila, obtido por GC-

MS. Sendo: 1) pirimicarbe; 2) parationa metilica; 3) malationa; 4) procimi-

dona; 5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam. Para condições cromato-

gráficas ver item 7.8...........................................................................................41

Figura 10: Eficiência na recuperação (n = 2) dos pesticidas em alface utili-

zando silica:alumina 1:1 como suporte sólido e eluição com 20 mL dos

solventes diclorometano, mistura de solventes acetato de etila:hexano

(85:15, v/v) e 30 mL de acetonitrila...................................................................43

Figura 11: Cromatograma silica:alumina 2:1, em diclorometano, obtido por

GC-MS. Sendo: 1) pirimicarbe;2) parationa metilica; 3) malationa; 4) proci-

midona; 5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam. Para condições cromato-

gráficas ver item 7.8...........................................................................................47

Figura 12: Cromatogramas obtidos no GC-MS do branco em acetonitrila

(a), da solução padrão de comparação 0,5 µg g

-1

(b), do extrato fortificado

da matriz no nível de fortificação 0,5 µg g

-1

sendo: 1) pirimicarbe; 2) parationa metilica; 3) malationa; 4) procimidona;

5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam. Para condições cromatográficas

ver item 7.8.........................................................................................................50

Figura 13. Curvas analíticas obtidas no extrato da matriz: pirimicarbe (a), ma-

lationa (b), procimidona (c) e parationa metílica (d),..........................................52

Figura 14. Curvas analíticas obtidas no extrato da matriz: α-endossulfam

(e) e β-endossulfam (f).......................................................................................53

iii

LISTA DE TABELAS

Tabela 1. Característica dos pesticidas selecionados para estudo......................8

Tabela 2. Propriedades físico-químicas dos pesticidas selecionados

para estudo...........................................................................................................9

Tabela 3. Solubilidade dos pesticidas em solventes orgânicos..........................10

Tabela 4. Estrutura química dos pesticidas selecionados para estudo..............13

Tabela 5. Produção de alface.............................................................................15

Tabela 6. Aplicação da dispersão da matriz em fase sólida na determinação

de pesticidas em alimentos (frutas e verduras)..................................................21

Tabela 7. Tempos de retenção e fragmentos monitorados na quantificação

dos pesticidas.....................................................................................................37

Tabela 8. Testes para seleção do sistema de suporte sólido e solvente de

eluição para os pesticidas de matriz de alface por MSPD.................................44

Tabela 9. Valores de recuperação média dos pesticidas e coeficientes de

variação dos pesticidas de alface por MSPD e GC/MS....................................49

Tabela 10. Valores dos coeficientes de correlação e equações da reta para

os pesticidas preparados no extrato da matriz e analisados por MSPD e

GC/MS. Para condições cromatográficas de análise ver item 7.8.....................51

Tabela. 11. Valores dos limites de detecção do método LOD

e do instru-

mento LOD

dos pesticidas para análises realizadas por GC/MS......................54

Tabela 12. Limite de detecção dos pesticidas procimidona, malationa, α-

endossulfam e β-endossulfam em diversos trabalhos encontrado na litera-

tura e no trabalho desenvolvido..........................................................................55

Tabela 13. Valores dos limites de quantificação dos pesticidas em análises

realizadas por GC/MS........................................................................................56

Tabela 14 - Comparação da recuperação obtida com sílica:alumina (1:1,

(m/m)) e polímero (La

0.9

0.1

)

(dipic)

......................................................58

LISTA DE ABREVIATURAS OU SIGLAS

ANVISA – Agência Nacional de Vigilância Sanitária

ASE – extração acelerada com solventes (do inglês accelerated solvent

extraction)

– fase sólida à base de sílica modificada com grupos octadecil

– fase sólida à base de sílica modificada com grupos octil

CV – coeficiente de variação

DAD – detector de arranjo de fotodiodos (do inglês diode array detector)

DCM - diclorometano

DDT – diclorodifeniltricloroetano

DL – dose letal

– dose letal para 50% da população

ECD – detector de captura de elétrons (do inglês electron capture detectior)

EI – modo de ionização por impacto de elétrons ou ionização por elétrons

ENDAGRO - Empresa de Desenvolvimento Agropecuário de Sergipe

EU – União Européia (do inglês European Union)

EUA – Estados Unidos da América

FAO – Organização das Nações Unidas de Agricultura e Alimentos (do inglês

Food and Agriculture Organization of the United Nations)

FID – detector por ionização em chama (do inglês flame ionization detectior)

GC – cromatografia gasosa (do inglês gas chromatography)

HPLC – cromatografia líquida de alta eficiência (do inglês high performance

liquid chromatography)

HS – headspace

IBAMA – Instituto Brasileiro do Meio Ambiente e dos Recursos Naturais

IC – intervalo de confiança

IDA – índice diário aceitável.

INMETRO – Instituto Nacional de Metrologia, Normalização e Qualidade

Industrial

IT – aprisionamento de íons (do inglês ion-trap)

IUPAC – União Internacional de Química Pura e Aplicada (do inglês

International Union of Pure and Applied Chemistry)

LC – cromatografia líquida (do inglês liquid chromatography)

LLE – extração líquido-líquido (do inglês liquid – liquid extraction)

LMR – limite máximo de resíduos

LOD – limite de detecção (do inglês

Limit of Detection)

LOQ – limite de quantificação ( do inglês Limit of Quantification

MAE – extração assistida por microondas (do inglês microwave extraction)

MS – espectrometria de massas (do inglês mass spectrometry)

MS-MS – espectrometria de massas sequencial (do inglês tandem mass

spectrometry)

MSPD – dispersão da matriz em fase sólida (do inglês matrix solid-phase

dispersion)

NCI – ionização química no modo negativo (do inglês negative chemical

ionization)

NPD – detector de nitrogênio e fósforo (do inglês nitrogen and phosphorus

detector)

PCI – ionização química no modo positivo (do inglês positive chemical

ionization)

PID - detector de fotoionização (do inglês photoionizahion detector)

PLE – extração com líquido pressurizado (do inglês pressurized liquid

extraction)

r – coeficiente de correlação

RP – fase reversa (do inglês reversed phase)

RSD – desvio padrão relativo (do inglês relative standard deviation)

s – estimativa do desvio padrão absoluto

SFC – cromatografia por fluido supercrítico (do inglês supercritical fluid

chromatography)

SFE – extração por fluido supercrítico (do inglês supercritical fluid extraction)

SIM – monitoramento de íons selecionados (do inglês selected ion monitoring)

vii

SPE – extração em fase sólida (do inglês solid phase extraction)

SPME – microextração em fase sólida (do inglês solid phase microextraction)

THF – tetrahidrofurano

TOF – tempo de vôo (do inglês time-of-fly)

USA – do inglês United States of America

USEPA – Agência Americana de Proteção Ambiental (do inglês United States

Environmental Protechion Agency)

UV – ultravioleta

viii

RESUMO

A alface (Lactuca sativa L) é a hortaliça folhosa de grande importância

econômica, sendo consumida principalmente na forma in natura. Visando

assegurar maior produtividade, pesticidas de diferentes classes químicas têm

sido empregados nas etapas de produção de alface.

Embora estes pesticidas

tragam benefícios no aumento da produção agrícola, sua toxicidade deve ser

considerada, e para isso torna-se necessário dispor de métodos analíticos

eficientes para verificar a presença de resíduos de pesticidas na produção. A

literatura apresenta poucos métodos para determinar pesticidas em alface. Em

vista disto, este trabalho teve como objetivo o desenvolvimento de método

baseado nas técnicas de dispersão da matriz em fase sólida e cromatografia a

gás acoplada à espectrometria de massas (GC/MS) para determinar resíduos

dos pesticidas malationa, parationa metílica, pirimicarbe, procimidona, α-

endossulfam e β-endossulfam em alface. O método por dispersão da matriz em

fase sólida foi desenvolvido, testando-se diferentes tipos e quantidades de

sorventes, alumina, Florisil, sílica

e solventes orgânicos (20 e 30 mL) como

ciclohexano, diclorometano, acetato de etila, n-hexano e acetonitrila em

diferentes proporções (1:1, 7:3, 8:2, 9:1, 85:15, v/v). As melhores recuperações

para os pesticidas malationa, parationa metílica, pirimicarbe, procimidona, α-

endossulfam e β-endossulfam em análises por GC/MS foram obtidas por meio

do sistema sílica/alumina, utilizando um volume de 30mL do solvente

acetonitrila com valores médios de recuperação variando de 50 a 120% e

coeficientes de variação na faixa de 0,6 a 8,0% para os níveis de concentração

de 0,1; 0,25; 0,5; 1,0; 1,5 e 2,0 µg g

-1

. Os limites de detecção ficaram na faixa

de 0,01 e 0,03 µg g

-1

. E os limites de quantificação foram de 0,08 e 0,11 µg g

-1

respectivamente.

Palavras-chave: pesticidas; GC/MS; alface;MSPD

ABSTRACT

Lettuce (Lactuca sativa) has a great, being mainly consumed in natura. In order

to ensure greater productivity, pesticides from different chemical classes have

been used to improve its production. Although these pesticides bring benefits,

increasing agricultural production, their toxicity should be considered. As for this

reasor it is necessary to have effective analytical methods to verify the presence

of pesticide residues in lettuce. The literature presents Few methods are present

in the liberahone for determining pesticides in lettuce. Thus, this paper aims to

develop a new method based on MSPD and GC-MS. Techiniques to determine

residues of malathion, parathion methyl, pirimicarb, procymidone , α-endosulfan

and β-endosulfan in lettuce. The method dispersion matrix solid phase was

developed and tested for different types and amounts of sorbents, alumina,

Florisil, silica, and organic solvents (20 and 30 mL) and cyclohexane,

dichloromethane, ethyl acetate, n-hexane and acetonitrile at different ratios (1:1,

7:3, 8:2, 9:1, 85:15, v/v). The best recoveries for the pesticides malathion,

parathion methyl, pirimicarb, procymidone, α-endosulfan and β-endosulfan

were obtained through the system silica / alumina, using a volume of 30 mL of

acetonitrile with average recovery ranging from 50 to 120% and coefficients of

variation varying from 0,6 to 8.0% for concentration levels of 0.1, 0.25, 0.5, 1.0,

1.5 and 2.0 µg g

-1

The limits of detection and quantification for the method were

0.08 and 0.11 µg g

-1

, respectively.

Keywords: pesticides, GC/ MS; lettuce; MSPD

INTRODUÇÃO

A alface (Lactuca sativa L.) da família Asteraceae, em geral

apresentam folhas macias, grandes, de sabor suave e refrescante, que

crescem em volta do caule pequeno (em roseta), podendo ser lisas ou

crespas, formando ou não uma cabeça e podem apresentar diversas

tonalidades de verde e roxo-bronzeado. Seu sistema radicular é delicado,

muito ramificado e superficial. A floração ocorre no verão, estimulada pelos

dias longos. Os frutos da alface são do tipo aquênio e se apresentam

pontiagudos, de formato oval, elíptico ou espatulado com estrias

longitudinais na superfície e comprimento variável de 2 a 5 mm (PILAU,

2002).

As alfaces com 96% de água apresentam elevado teor de vitaminas,

minerais e água e prestam-se a inúmeros pratos culinários, sendo

consumida na forma in natura em saladas e sucos, ou na forma cozida em

sopas e refogados. Cada 100 gramas de alface contêm apenas 15 kcal o

que a torna um alimento importante em dietas de restrição calórica. As

alfaces são muito perecíveis e estragam-se rapidamente se mal

conservadas, ou manipuladas inadequadamente (LOPES, 2002).

O consumo de hortaliças como a alface tem crescido junto com o

aumento da população mundial, esse crescimento tem causado grandes

preocupações, pois como a alface é muito perecível a torna mais suscetível

ao ataque de pragas. Consequentemente, pesticidas de diferentes grupos

químicos têm sido empregados em alguma etapa da produção agrícola, quer

seja no tratamento prévio das sementes, durante o cultivo ou após a colheita

(FENOLL, et al., 2007

(a)

Embora o uso de pesticidas traga benefícios no aumento da produção

agrícola, sua toxicidade deve ser considerada, e para isso torna-se

necessário controlar a qualidade dos produtos hortícolas, para evitar

possíveis riscos para os consumidores (FENOLL, et al., 2007

(b)

O termo pesticida abrange qualquer substância que é utilizado para

prevenir, destruir, atrair, repelir ou controlar pragas, incluindo espécies não

desejadas de plantas ou animais durante a produção, estocagem,

transporte, distribuição e processamento de alimentos, produtos agrícolas e

ração animal ou produtos administrados a animais para o controle de

ectoparasitas (BLUME E REICHERT, 2002).

Os pesticidas malationa, parationa metílica, pirimicarbe, procimidona,

α-endossulfam e β-endossulfam podem ser aplicados nos solos, por meio de

água de irrigação ou diretamente sobre a cultura. Em qualquer desses

casos, eles serão absorvidos pelas raízes e pelas folhas e translocados para

todas as partes das plantas, podendo chegar pela cadeia alimentar ao

homem (BARBOSA, 2004).

Esses pesticidas são comumente utilizados nas culturas de hortaliças,

incluindo a alface, sendo que desses só os pesticidas pirimicarbe,

procimidona e malationa é que são regulamentados pela ANVISA para

utilização em alface.

Em 2008, a ANVISA, realizou análises em 17 alimentos, encontrando

resíduos de agrotóxicos em 15% das 1.773 amostras. O produto com mais

irregularidades foi o pimentão com 64% e entre as hortaliças folhosas a

alface com 19,8% (BASSETTE E BOTELHO, 2009).

A alface foi a matriz escolhida para o estudo de determinação de

resíduos de pesticidas por se tratar da hortaliça consumida in natura mais

popular do Brasil, segundo a ANVISA. Diante do risco potencial de resíduos

de pesticidas na alface, há necessidade de monitoramento constante dos

níveis de concentração dessas substâncias.

O método de dispersão da matriz em fase sólida (MSPD) é uma

técnica de extração eficiente uma vez que permite efetuar etapas de

rompimento da estrutura sólida original da matriz, homogeneização, extração

e purificação da amostra de maneira simultânea, o que possibilita a posterior

análise do extrato pré-concentrado utilizando uma quantidade pequena de

solventes orgânicos e pouca quantidade de amostra (KRISTENSON, er al.,

2006). O extrato final pode ser analisado por técnicas cromatográficas ou

eletroforese capilar para quantificação dos analitos (LIANG, et al., 2004).

É importante ressaltar que a literatura descreve poucos métodos para

determinação de pesticidas em matriz de alface e nenhum desses métodos

utiliza a técnica de dispersão da matriz em fase sólida. O presente trabalho

propõe desenvolver uma metodologia analítica simples para determinação

dos pesticidas malationa, parationa metílica, pirimicarbe, procimidona,

α-

endossulfam e β-endossulfam em alface, utilizando as técnicas de dispersão

da matriz em fase sólida e cromatografia à gás acoplada a espectrometria de

massas.

2. OBJETIVOS

2.1 – Objetivo Geral

Desenvolver uma metodologia analítica para determinar resíduos de

pesticidas em alface, utilizando as técnicas de dispersão da matriz em fase

sólida e cromatografia à gás acoplada a espectrometria de massas.

2.2 – Objetivos Específicos



Selecionar pesticidas que são utilizados em alface.



Obter as condições cromatográficas de análise dos pesticidas

selecionados por GC-MS.



Desenvolver um procedimento para extrair resíduos dos pesticidas

selecionados utilizando a técnica de dispersão da matriz em fase

sólida.



Validar o método desenvolvido.



Aplicar o método desenvolvido em amostras de alface produzidas na

cidade de Itabaiana, Sergipe.

3. JUSTIFICATIVA

O monitoramento da quantidade de pesticidas presentes em culturas

agrícolas é de grande importância, pois permite avaliar a qualidade destes

produtos, proporcionando a verificação de tendências no aumento do uso. É

necessário, portanto o desenvolvimento de métodos analíticos que sejam

confiáveis, de baixo custo, com curto tempo de análise e que seja de fácil

difusão e aplicação em outros laboratórios (ANVISA

(b)

, 2009).

A técnica de dispersão da matriz em fase sólida é uma técnica

simples e fácil de ser aplicada, pois apresenta boas vantagens diante de

outros métodos de extração como a extração líquido-líquido (LLE) e extração

em fase sólida (SPE), porque permite redução significativa da quantidade de

amostra e do consumo de solvente necessário para uma análise

multirresíduo, além de reduzir o risco de formação de emulsões, sendo

aplicada para matrizes sólidas ou semi-sólidas (LANÇAS, 2004).

A cromatografia gasosa (GC) é um dos métodos de análise mais

empregados na análise de pesticidas em amostras complexas, devido a

eficiência na separação e quantificação das espécies de interesse presente

nos extratos, utilizando detectores por captura de elétrons (ECD), adequado

para análise de compostos halogenados, ionização de chama (FID) ou

espectrômetro de massas (MS), sendo este último muito utilizado para

confirmação dos pesticidas, pois fornece informações estruturais baseado na

fragmentação dos compostos (COLLINS, et al., 2006).

O uso de pesticida é comum nas culturas da alface, segundo a

ANVISA usado em 70% das plantações. Consequentemente, faz-se

necessário dispor de um método analítico para determinar resíduos de

pesticidas na alface, a fim de garantir que o consumo desta hortaliça não

resulte em problemas de intoxicação para os consumidores deste produto

(LÓPEZ, et al., 2007).

4. FUNDAMENTAÇÃO TEÓRICA

4.1 – Pesticidas

No que se refere às áreas agricultáveis, um grande desafio para a

humanidade é a produção de alimentos para uma população em plena

expansão. Os setores rurais estão disputando espaço com a expansão das

áreas de urbanização e industrialização. Nesse contexto, na busca de uma

maior produtividade agrícola por hectare, o emprego de pesticidas tem

apresentado papel preponderante. Atualmente a exploração comercial e

econômica de qualquer cultura agrícola faz uso de pesticidas, exceto a

agricultura orgânica (GRISOLIA, 2002).

Os pesticidas têm várias classificações: quanto à ação, à forma de

atuação e à origem. Quanto à forma de atuação os agrotóxicos podem ser

sistêmicos ou não sistêmicos. Os não sistêmicos têm ação de contato (via

dérmica), penetração, ingestão (via oral) e fumegante (via respiratória). Os

agrotóxicos sistêmicos surgiram como um aperfeiçoamento na seletividade

do combate à praga, com a intenção de não matar os insetos não nocivos. É

transportado pela seiva do vegetal em quantidade letal para o inseto, sem

prejudicar a planta (CARVALHO, 2009).

A utilização de produtos químicos para controlar pragas, doenças e

ervas daninhas possibilita ao ser humano aumentar a produção de alimentos

em quantidade e qualidade. Estes produtos denominados pesticidas,

praguicidas, agroquímicos foram por muito tempo utilizado de forma

indiscriminada, até surgirem as informações sobre os impactos ambientais

causados pelo seu uso inadequado (BARBOSA, 2004).

Portanto, os agrotóxicos, além de minimizar a ação danosa das

pragas, doenças e plantas daninhas em culturas agrícolas, também podem

oferecer riscos à saúde humana e ao meio ambiente. O uso dos agrotóxicos,

favorece os riscos de contaminação de diversos compartimentos ambientais,

como a contaminação de solos agrícolas, de águas superficiais e

subterrâneas e de alimentos, podendo, em episódios mais graves,

inviabilizar o consumo destes. Isso pode gerar consequentemente, efeitos

nocivos em organismos terrestres e aquáticos, como intoxicação pelo

consumo de água e de alimentos contaminados, além da intoxicação

ocupacional de trabalhadores e produtores rurais. Na Figura 1 são

apresentados esquematicamente os principais processos que atuam na

movimentação e na degradação de agrotóxicos na natureza, ilustrando os

meios mais prováveis onde esses compostos podem ser encontrados

(GEBLER, 2004).

Figura 1. Principais rotas de transporte e degradação de agrotóxicos no

ambiente. Adaptada de Gebler, 2004.

Com isso, o monitoramento de agrotóxicos no meio ambiente é uma

ferramenta de suma importância para a caracterização e o gerenciamento

dos riscos ambientais decorrentes do uso desses produtos em condições

reais. Além disso, conforme preconizado pelo Decreto Federal Brasileiro no.

4.074 de 2002, o monitoramento desses compostos também pode fazer

parte da avaliação em processo de registro de novos produtos, ou ainda, da

reavaliação de produtos em uso (PRCCSAJ, 2009).

Neste sentido o monitoramento dos resíduos de pesticidas no meio

ambiente, principalmente nas culturas agrícolas, é de fundamental

importância, para assegurar a qualidade dos alimentos que chegam até o

consumidor.

No Brasil, o controle de resíduos de agrotóxicos em alimentos

começou a se desenvolver isoladamente a partir da década de 1970, com o

primeiro laboratório de análise de resíduos, trabalhando na determinação de

organoclorados em leite, estendendo suas atividades também para análise

de pesticidas em carne bovina, devido às exigências nas exportações

(BARBOSA, 2004).

No entanto, somente nos últimos anos com os avanços científicos

(desenvolvimento de novas técnicas tanto de extração como de análise), e

uma política responsável (leis mais específicas e o monitoramento de

agências regulamentadoras como a ANVISA), é que se tem uma nova

avaliação da qualidade dos alimentos consumidos em relação à presença de

agrotóxicos (ANVISA, 2009).

Em 2001, a Agência Nacional de Vigilância Sanitária do Ministério da

Saúde (ANVISA) implantou um programa de análise de resíduos de

agrotóxicos em alimentos (PARA) com a participação de vários estados

brasileiros e laboratórios de análise de resíduos de agrotóxicos. A criação

deste programa tem como objetivo o monitoramento dos principais

pesticidas encontrados em frutas, verduras, hortaliças entre outros

alimentos.

A Tabela 1 mostra a classificação dos pesticidas utilizados na cultura

de alface quanto ao seu modo de ação, forma de atuação e classe

toxicológica.

Tabela 1. Característica dos pesticidas selecionados para estudo.

Pesticidas

Modo

ação

Forma

atuação

Classe

toxicológica

Classe química

(fórmula)

Aplicação

Massa

molar

g mol

-1

Pirimicarbe inseticida sistêmico II altamente

tóxico

carbamato

foliar 240

Parationa-

metílica

acaricida

inseticida

sistêmico I

extremamente

tóxico

organofosforado

foliar 263

Malationa inseticida

acaricida

não

sistêmico

III mediamente

tóxico

organofosforado

foliar 284

Procimidona fungicida sistêmico II altamente

tóxico

dicarboximida

foliar 288

α-

endossulfam

acaricida

formicida

inseticida

sistêmico I

extremamente

tóxico

organoclorado

foliar/solo 339

β-

endossulfam

acaricida

formicida

inseticida

sistêmico I

extremamente

tóxico

organoclorado

foliar/solo 406

FONTE: ANVISA, 2009.

O comportamento de um pesticida pode ser estimado pelas suas

características físico-químicas e pelos seus metabólitos ou produtos de

degradação. A Tabela 2 mostra algumas propriedades físico-químicas dos

pesticidas selecionados para o estudo.

Tabela 2. Propriedades físico-químicas dos pesticidas selecionados para

estudo.

Pesticidas

Ponto de

Ebulição (ºC)

ressão de

vapor (Pa),

20-25°C

*Log K

Tempo de

meia vida (t

1/2

(dias)

Solubilidade

em água a

20-25°C (g/L)

Pirimicarbe 164,7-167,7 0,9 x 10

1,7 21 3,0

Parationa-

metílica

35-36 0,2x10

3,0 18,5 0, 055

Malationa 156-157 5,3 x 10

2,7 7,0 1,4 x 10

Procimidona 100 18,0 x 10

3,1 3,0 4,5 x 10

α-endossulfam 109,2 0,8x10

4,7 50 3,2x10

β-endossulfam

213,3 0,8x10

4,7 50 3,2x10

FONTE: BARCELÓ, 1997.

*Coeficiente de partição octanol: água.

A Tabela 3 relaciona a solubilidade dos pesticidas estudados em

alguns solventes orgânicos.

Tabela 3. Solubilidade dos pesticidas em solventes orgânicos

Pesticidas

Solubilidade (g L

)

25°C

Acetato de etila

Diclorometano

Hexano

Acetonitrila

Pirimicarbe solúvel solúvel - solúvel

Parationa- metílica - > 200 10-20 solúvel

Malationa solúvel solúvel - solúvel

Procimidona - solúvel - solúvel

α-endossulfam 200 200 24 solúvel

β-endossulfam 200 200 24 solúvel

Fonte: TOMLIN, 1994.

4.2 - Classes Químicas dos Pesticidas Selecionados

Carbamatos:

Os carbamatos são compostos orgânicos derivados do ácido

carbâmico. Degradam-se relativamente rápido, são pouco absorvidos pelo

organismo humano (não se acumulam em tecidos gordurosos), além de

inibidores reversíveis da acetilcolinesterase, AchE, responsável pela

transmissão de impulsos nervosos no organismo. Vários produtos deste

grupo químico foram banidos em outros países devido aos seus efeitos

cancerígenos (BARBOSA, 2004; BADIOU, 2008). Dentre os pesticidas da

classe química dos carbamatos selecionados para estudo tem-se o

pirimicarbe (Tabela 1) que é bastante utilizado nas plantações de alface,

tomate, berinjela, batata entre outros. O limite máximo de resíduos refere-

se à soma de seus metabólitos, que são o pirimicarbe dietílico e a

metilamina (WHO, 2004).

De acordo com a Organização Mundial da

Saúde, o pirimicarbe, como ingrediente ativo e grau técnico, é

considerado altamente tóxico. Para mamíferos não é carcinogênico e não

apresenta efeitos reprodutivos adversos (WHO, 2004).

Dicarboximida:

Dentre os pesticidas da classe química dos dicarboximida selecionado

para estudo tem-se a procimidona

(Tabela 1), que é um fungicida que tem

aplicação foliar nas culturas de alface, batata, cebola, citros, feijão e frutas

em geral (ANVISA, 2009).

Organoclorados:

Estes compostos são produzidos sinteticamente pela ação de cloro

elementar sobre hidrocarbonetos derivados do petróleo. A ligação carbono-

cloro caracteriza-se por ser difícil de romper. Desta forma, uma vez que os

organoclorados tenham entrado no ambiente, eles degradam-se muito

lentamente, tendendo, portanto, a se acumular. Além disso, a maioria dos

compostos organoclorados é hidrofóbica: eles não dissolvem facilmente em

água, mas são facilmente solúveis em meios semelhantes ao

hidrocarboneto, tais como óleos e tecidos adiposos (BAIRD, 2002). Um

organoclorado selecionado para o estudo é o endossulfam que atua como

acaricida, formicida e inseticida e tem aplicação foliar nas culturas de

algodão, cacau, café, cana-de-açúcar e soja (ANVISA, 2009). Em Sergipe

ele também aplicado nas culturas de hortaliças (EMDAGRO, 2009).

Organofosforados:

Na década de 1940, os organofosforados foram introduzidos no

mercado de pesticidas, constituindo uma classe importante de inseticidas,

acaricidas, nematicidas e fungicidas, sendo atualmente os mais utilizados na

agricultura. Devido a sua alta eficácia no controle de ampla variedade de

pragas, estes compostos são os preferidos na lavoura, possibilitando

encontrar resíduos e subprodutos em níveis nocivos ao consumo humano

(SILVA, 2008).

Embora estes compostos sejam degradados em água, existe a

possibilidade de restarem resíduos e subprodutos em níveis relativamente

nocivos ao consumo humano, além da possibilidade de contaminação aguda

em altas concentrações (NETO, 2005).

Em relação aos agrotóxicos clorados, os organofosforados são mais

tóxicos (em termos de toxidade aguda), porém proporcionam menos dano ao

meio ambiente por não serem bioacumulados (WESSELING, 2005).

Eles podem ser absorvidos por diversas rotas, incluindo inalação,

ingestão e absorção dérmica. Atuam inibindo a ação da enzima

acetilcolinesterase na transmissão dos impulsos nervosos. Estes compostos

são conhecidos por induzirem ou agravarem certos problemas de saúde em

seres humanos (FILHO, 2005; EPA, 2006; SILVA, 2008). Como pode ser

verificado no trabalho realizado por RUSSO (2002), que em sua pesquisa

tanto com pacientes saudáveis, quanto os que estavam afetados por câncer,

encontrou organofosforados nos rins, fígado e tecido adiposo nos mesmos,

os quais foram quantificados em níveis de ng nos tecidos.

Os pesticidas organofosforados por serem hidrossolúveis, não se

acumulam no tecido adiposo e consequentemente, são degradados mais

rapidamente em tecidos vivos. Possuem a vantagem de serem eliminados

mais rapidamente em mamíferos, quando comparados com os pesticidas

organoclorados (DÓREA

(b)

, 2004).

Dentre esta classe destacam-se a malationa e a parationa

metílica (Tabela 4), estudados no presente trabalho. E dentre os pesticidas

organofosforados, os selecionados para estudo no presente trabalho foram a

malationa e a parationa metílica. A malationa é utilizado nas culturas de

arroz, cacau, citros, pêssego, tomate e hortaliças; decompõe-se facilmente

em meio alcalino ou ácido produzindo compostos isoméricos e similares que

apresentam ação direta no sistema nervoso central (LARINI, 1999). A

parationa metílica é comumente utilizada como inseticida nas culturas de

algodão, alho, arroz, batata, cebola, feijão, milho e soja (ANVISA, 2009).

A Tabela 4 relaciona as estruturas químicas e os nomes IUPAC dos

pesticidas selecionados para estudo.

Tabela 4. Estrutura química dos pesticidas selecionados para estudo.

Pesticidas

Estrutura química

Malationa

(O,O-dimetil-ditiofosfato de dietil-

mercaptosuccinato)

Parationa

metílica

(Tiofosfato de dimetil

paranitrofenila)

Pirimicarbe

(4-dimetil carbamato de 2-

dimetilamino-5,6 dimetil pirimidina)

Procimidona

(N-(3,5-diclofenil)-1,2-

dimetilciclopropano-1,2

dicarboximida))

ndossulfam

(Sulfito de 1,2,3,4,7,7- hexacloro-

biciclo-(2,2,1)-2-hepteno,5,6-bis-

oximetileno)

ndossulfam

(Sulfito de 1,2,3,4,7,7- hexacloro-

biciclo-(2,2,1)-2-hepteno,5,6-bis-

oximetileno)

Fonte: ANVISA, 2009.

4.3 - Hortaliça em estudo: Alface.

A alface (Lactuca sativa L.) é uma hortaliça folhosa, no qual se prende

as folhas, lisas ou crespas, fechando ou não a cabeça conforme a variedade.

É a hortaliça folhosa de maior importância econômica, sendo consumida in

natura na forma de salada. (PILAU, 2002; LOPES, 2002).

A alface apresenta sabor agradável e refrescante sendo

considerada de grande importância nutricional devido a sua presença regular

na dieta, principalmente dos consumidores das regiões sudeste e sul do

Brasil (BLISKA, 1998). Além de constituir uma excelente fonte de vitamina A

(MEDEIROS, 1999) também apresenta a vantagem de ser de baixo valor

energético (apenas 16 Kcal em cada 100 g), razão pela qual é

frequentemente indicada na dieta alimentar de convalescentes e idosos

(PILAU, 2002).

A alface também tem propriedades medicinais como: laxante, diurético,

depurativa e calmante, entre outras. O talo da alface contém a lactucina, que

possui propriedades hipnóticas e soníferas, podendo assim a alface ser

considerado sedativo natural do sistema central (PLANTAS MEDICINAIS,

2009). A Figura 3 mostra a alface plantada em meio convencional com o uso

de pesticidas e em estufa sem o uso de pesticidas. Sendo que no caso da

alface a aplicação dos pesticidas é feita de forma foliar.

Figura 2

. Alface (Lactuca sativa L.)

(a) (b)

A Tabela 5 apresenta dos dados referente a produção de alface no Brasil

segundo a ANVISA.

Tabela 5. Produção de alface

Produção

Brasil - 2006

Hortaliça

Condição do produtor

Proprietário

Assentamento

sem titulação

definida

Arrendatário

Parceiro

Ocupante

Produtor

sem área

Alface

(toneladas)

354.820 7.297 110.973 25.534 21.395 5.584

5 - MÉTODO ANALÍTICO

Pesticidas de diferentes classes químicas que são aplicados na

agricultura e na pecuária aumentaram verticalmente no Brasil, Em 2007

gastou-se US$ 87,83 por hectare, 10% a mais que no ano de 2006 (ANVISA,

2009), tornando necessário o monitoramento de eventuais resíduos no meio

ambiente e nos alimentos (SANCHEZ, 2003), bem como a avaliação de risco

pela ingestão de alimentos (CALDAS, 2000). A tendência das empresas

Figura 3

(a) alface plantada em meio convencional e (b) alface plantada em

sistema de estufa

fabricantes de defensivos agrícolas é pesquisar e sintetizar moléculas de

maior complexidade e caráter polar com alta eficiência de ação pesticida (O

Estado de São Paulo, 2009). Por outro lado, se faz necessário o

desenvolvimento de métodos analíticos de alta rastreabilidade para maior

número de princípios ativos, com alta sensibilidade de quantificação e

confirmação. Para tanto, têm sido desenvolvidos métodos analíticos para

quantificar os resíduos de pesticidas, possibilitando mensurar e avaliar os

riscos de contaminação humana.

O avanço do conhecimento científico,

aliado ao desenvolvimento tecnológico na área laboratorial, têm permitido a

verificação da qualidade e segurança alimentar em relação à presença de

agrotóxicos em níveis não prejudiciais ao ser humano (MARTINS, 2005).

5.1 - Programa de monitoramento

Em programas de monitoramento de resíduos de pesticidas em

alimentos (PARA) normalmente são adotados métodos mutirresíduos. Os

resultados permitem verificar as aplicações das boas práticas agrícolas, o

uso abusivo da formulação de agrotóxicos, com respeito às doses mínimas

do intervalo de carência e ao uso inadequado de agrotóxicos não

autorizados por órgãos competentes. Os dados produzidos pelos programas

permitem também avaliar e mensurar o potencial risco à saúde da população

humana com relação ao consumo de alimentos. Através dos dados de

programa de monitoramento é possível conhecer o cenário internacional e

nacional de pesticidas do ponto de vista das tendências de resíduos nos

alimentos e dos aspectos importantes para o planejamento de estratégias de

controle, de monitoramento e laboratoriais para se atingir os objetivos de

forma eficiente e obter resultados satisfatórios (ANVISA

(b)

, 2009).

No Brasil, o monitoramento nacional denominado Programa de Análise

de Resíduos de Agrotóxicos em Alimentos foi realizado em 4.001 amostras

de frutas (banana, laranja, maçã, mamão, morango) e de vegetais (alface,

batata, cenoura e tomate) no período de 2001 a 2004. Estas amostras foram

coletadas em supermercados de grandes cidades em 13 estados brasileiros.

O critério da amostragem foi baseado em dados de consumo anual per

capita em kg, alimentos fornecidos pela cesta básica, os sistemas de cultivo

e de manejo de pragas das diferentes culturas e a disponibilidade destes

alimentos no comércio, nos diferentes estados inseridos no programa. As

análises foram realizadas pelo método multirresíduo para 91 princípios

ativos, exceto para os ditiocarbamatos, para os quais foi adotado uma

metodologia analítica específica.

De acordo com os resultados verificaram-se que das 4.001 amostras

analisadas de julho de 2001 a dezembro de 2004, foram detectados

resíduos em 3.271 amostras, sendo que 2.340 (71,5%) foram regulares

(dentro do limite máximo de resíduo) e 931 (28,5%) das amostras foram

irregulares. Vale salientar também que dentre as amostras detectadas

positivas, muitas amostras apresentaram resíduos múltiplos. Das 931

amostras irregulares, 776 (83,4%) amostras eram de uso irregular, não

autorizado pela ANVISA, e 155 (16,6%) estavam em níveis acima de limite

máximo de resíduo (LMR). Estes dados permitem concluir que, na realidade

brasileira, o maior problema com relação aos níveis de agrotóxicos no

alimento in natura, não está na forma de aplicação do produto em alimento,

mas no uso indiscriminado de agrotóxicos não autorizados para

determinadas culturas. Dentre os alimentos in natura analisados, as culturas

de alface, cenoura, laranja e tomate apresentaram os maiores índices de

irregularidades (ANVISA

(b)

, 2009).

5.2 Método multirresíduo de pesticidas

Métodos multirresíduos para determinação de resíduos de pesticidas são

normalmente adotados em laboratórios pela praticidade de determinação de

um grande número de princípios ativos de diversas classes, após uma

simples extração, facilitando a demanda rápida e eficiente do monitoramento

(HEMANDEZ, 2006). A preparação da amostra é uma etapa crítica de um

método multirresíduo, com a possibilidade da diversidade de substâncias que

podem ser extraídas (ORTELLI, 2004).

5.3 - Dispersão da Matriz em Fase Sólida (MSPD)

Em 1989, o norte americano Steven Barker e colaboradores

desenvolveram uma técnica de extração, uma modificação da extração em

fase sólida (solid phase extraction - SPE) com o objetivo de extrair analitos

de amostras sólidas e semi-sólidas, já que a SPE é usualmente empregada

com o propósito de isolar um ou mais analitos presentes em uma matriz

"líquida" ou extrato de uma matriz sólida (LANÇAS, 2004). Por outro lado, a

MSPD surgiu como uma alternativa aos métodos clássicos de preparação de

amostra (extração sólido-líquido, por exemplo), porque tem como vantagens

a redução significativa da quantidade de amostra e do consumo de solvente

necessários para uma análise multirresíduo, além de reduzir o risco de

formação de emulsão (BARKER, 2000). A dispersão da matriz em fase

sólida consiste na homogeneização de uma pequena quantidade de amostra

(0,1 a 5 g) com um material adsorvente. Esta mistura é transferida para uma

coluna ou cartucho. Os analitos são extraídos com solventes orgânicos que

são percolados pela coluna. O mecanismo de MSPD inclui a

homogeneização da amostra, rompimento celular, extração, fracionamento e

purificação em um simples processo (BARKER, 2007). Um esquema da

MSPD pode ser visto na Figura 4.

Figura 4. Esquema da dispersão da matriz em fase sólida.

A MSPD envolve a dispersão da amostra sobre um suporte sólido

seguida de eluição com um solvente apropriado (BLASCO, 2002). E tem

como objetivo dividir a amostra em partículas menores, de forma a se obter

a exposição de maior área superficial da mesma durante o processo de

extração (BARKER, 2000).

O adsorvente serve como um abrasivo, rompendo a estrutura original da

amostra, formando um novo grau de interação dos analitos com o suporte

sólido facilitando no isolamento e no processo de extração. O adsorvente

exerce um papel fundamental no processo de extração. No entanto é difícil

se obter um adsorvente que seja eficiente na extração de um conjunto de

substâncias pertencentes a funções químicas diferentes e que apresentem

os mesmos tipos de interação com estes adsorventes (LANÇAS, 2004).

Os fatores que afetam a dispersão da matriz em fase sólida são: a

natureza do suporte sólido como tamanho do poro, a natureza da fase ligada

ao suporte (fase reversa, fase normal, e com ou sem pré condicionamento

da fase), a natureza da amostra (conteúdo de água, açúcar), modificações

na matriz (ajustes de pH), e a natureza e a ordem dos solventes de eluição

(BARKER, 2000).

Muitas vezes a depender da natureza e complexidade da amostra, o

extrato obtido após o processo de MSPD encontra-se suficientemente limpo

para a análise num equipamento adequado como GC ou HPLC, entretanto

muitas vezes torna-se necessário acrescentar uma etapa adicional no

processo de extração atuando na remoção de substâncias interferentes da

matriz, pelo uso de coluna auxiliar ou conectando-se uma segunda coluna,

no próprio processo de MSPD (BARKER, 2007).

Diversos trabalhos foram realizados utilizando esta técnica para

determinação de pesticidas em alimentos (Tabela 6), mas nenhum deles

investigou a aplicação de MSPD para determinação de malationa, parationa

metílica, pirimicarbe, procimidona, α-endossulfam e β-endossulfam em

alface.

Tabela 6. Aplicação da dispersão da matriz em fase sólida na determinação de pesticidas em alimentos (frutas (morango,

uva e maçã) e verduras (alface, pimentão e couve)).

Analitos

Método de extração

MSPD

Anál

ise

Referência

pesticidas (organoclorados,organofosfarados, carbamatos, piretróides, e triazinas)

terra de diatomácea GC/MS HU, 2004.

ometoato, dimetoato, carbendazim, propoxur, tiabendazol,carbaril, pirimicarbe, azinfós

metílico, metidationa e iprodiona

terra de diatomácea LC/MS PERRET, 2002.

Acrinatrina, carbosulfano, ciproconazol, α-cialotrina,cresoxim- metílico, pirifenox,

piriproxifem, propanil e tebufenpirade

C18 e agitação com acetato de

etila

LC-ESI-MS/MS SOLER, 2004

Isômeros de endossulfam e sulfato de endossulfam

ultra-som com Florisil e alumina

GC/MS e GC-

ECD

ALBERO, 2003

Captana, carboxina, fludioxonil, flutolanil, folpete, primetanil, quintozeno e tebuconazol

C18 GC-NPD e GC-

ECD

NAVARRO,

2002

Diazinona e etiona

C18, ciano, fenil e amino

GC-NPD HUSSAIN, 2003

Monocrotofós, parationa metílica, cipermetrina e deltametrina

sílica gel e clean up com alumina

GC/MS DÓREA, 2004

Dieldrin, endrin, heptacloro, hexaclorobenzeno, endossulfam, p,p’-DDD, o,p’-DDE, o,p’-

DDT, p,p’-DDT, dicofol, metoxicloro, mirex, clorotalonil, parationa metílica, fenitrotiona,

folpete, malationa, diazinona, cis e trans permetrina

C18 e clean up com SPE com

sílica

GC-ECD CARDOSO,

2004

Diazinona, parationa metílica, fenitrotiona, malationa, cloropirifós, fentoato, metidationa,

profenofós e etiona

Florisil com eluição por US

GC-NPD ALBERO, 2004

Bromopropilato, clorpirifós metílico, cipermetrina, deltametrina, fenarimol, fenvalerato,

imazanil, lindano,permetrina, fentoato, procimidona, propiconazol e

vinclozolina

C18 e carbono grafitizado

GC-ECD e MS TORRES, 1997

Clorfenvinfós, clorpirifós, fenarimol, iprodiona,procimidona, propiconazol, tetradifona,

triadimefon e vinclozolin

alumina, sílica e Florisil GC/MS VIANA, 1996

266 pesticidas, entre eles: deltametrina, diclorana, fentiona,folpete, iprodiona, malationa,

trifluralina, procimidona e captana

terra de diatomácea GC/MS CHU, 2005

Bitertanol, carbendazina, fentiona, imidaclopridona, metiocarbe, piriproxifem e triclorfon

C8 GC/MS e LC/MS BLASCO, 2002

Malationa, parationa metílica e β-endossulfam

alumina GC-NPD DÓREA, 2004

Diazinona, parationa metílica, fenitrotiona, malationa,

fentiona, clorpirifós etílico, bromofós metílico, metidationa,

azinfós metílico e permetrina.

C8, C18 e sílica GC/MS KRISTENSON,

2006.

5.3.1 - Características dos suportes-adsorvente selecionados para MSPD

O preparo da amostra tem como principal objetivo isolar o(s)

componente(s) de interesse de outros compostos presentes na matriz, os

quais poderão interferir posteriormente na determinação analítica. Muitas

vezes esta etapa é também denominada de extração, mas em muitos casos,

não é necessária uma etapa de extração para que o analito possa ser

avaliado por uma técnica instrumental. Após o isolamento dos compostos de

interesse da matriz, pode ser necessária uma etapa completar de limpeza

(clean up) da amostra particularmente em se tratando de amostras complexas

(LANÇAS, 2008).

A escolha do suporte-adsorvente recai na polaridade do analito e na

natureza da matriz. Os suportes sólidos podem ser constituídos de um só

material (Florisil, sílica ou alumina etc.) ou podem ser suportes recobertos

por uma fase quimicamente ligada (C8, C18, amino, ciano, entre outras)

Neste último caso, é adicionada uma nova dimensão ao processo: a fase

quimicamente ligada age como um solvente ou detergente que dissolve e

dispersa os componentes da amostra na fase ligada, além de promover a

dispersão na superfície do suporte sólido. Espera-se que os componentes

da amostra se distribuam pela superfície e na fase ligada, de acordo com

suas polaridades relativas (BARKER, 2007).

Para aplicações que requerem uma fase lipofílica quimicamente ligada,

geralmente o suporte-adsorvente faz uso de materiais como C

e C

. O tipo

de ligante (C

e C

), a quantidade e a porcentagem também afetarão os

resultados, portanto, devem-se examinar as fases disponíveis para cada

aplicação. O isolamento de analitos mais polares é realizado com suportes

sólidos polares e o de analitos menos polares com suportes menos polares

(DÓREA, 2004).

Os suportes sólidos frequentemente utilizados em processo de extração

são:

Sílica (SiO

)

-OH: É um polímero inorgânico usado diretamente como

sorvente e para preparação de uma importante família de sorventes

conhecidos como sílicas ligadas fisicamente. É o sorvente mais utilizado para

propósitos gerais. Possui superfície ligeiramente ácida que facilita a retenção

dos compostos básicos. Facilmente absorve água pela formação de ligação

de hidrogênio com grupos silanóis (LANÇAS, 2004).

Alumina (Al

)

: Depois da sílica, é o adsorvente mais utilizado.

Possui caráter anfótero Tem característica alcalina, embora possa também

ser preparada para apresentar características neutra ou ácida. É geralmente

empregada na separação de compostos lipofílicos e, pelo fato de poder ser

preparada com características ácida, neutra ou alcalina, é bastante útil na

separação de substâncias que apresentam variações dessas características

(COLLINS, 2006).

Florisil [Mg.Al(SiO

)

] : É o sorvente mais polar e deve ser utilizado

com reservas quando se analisa compostos polares, uma vez que poderá

provocar adsorção irreversível em sua superfície e o analito de interesse não

ser removido com os eluentes comumente empregados nesta técnica. É

muito utilizado na extração de pesticidas (LANÇAS, 2004).

Octadecilsilano (C

): Possui caráter apolar. A característica lipofílica

do C

facilita o rompimento, dispersão e retenção de espécies lipofílicas

(KRISTENSON, 2006).

5.4 - Cromatografia a gás e espectrometria de massas

A cromatografia a gás é um método físico de separação dos

componentes de uma mistura através de uma fase gasosa móvel sobre uma

fase estacionária. Ela é utilizada para separação de compostos voláteis, isto

é, os analitos a serem separados devem apresentar uma razoável pressão de

vapor à temperatura de separação. (NETO, 2003).

Na cromatografia a gás, o constituinte gasoso é transportado pela

coluna por uma fase móvel gasosa, chamada gás de arraste (sendo que a

escolha do gás de arraste depende do detector e da eficiência e velocidade

de separação desejada). (HARRIS, 2001). Os gases mais usados como fases

móveis são nitrogênio, hélio, hidrogênio e argônio. O gás de arraste não deve

interagir com o recheio da coluna, deve ser barato, disponível e compatível

com o detector usado (COLLINS, 2006).

A técnica de cromatografia a gás acoplada à espectrometria de massas

(GC/MS) é usada na análise de várias espécies químicas presentes no

sistemas diversos permitindo assim uma ampla caracterização e quantificação

de diversas classes de compostos. (CARVALHO, 2009).

Um espectrômetro de massas é um equipamento utilizado para análise

qualitativa e quantitativa, o qual é basicamente constituído por três unidades

fundamentais: uma fonte de íons, um analisador e um sistema de detecção. A

fonte de íons tem a finalidade de gerar íons a serem analisados na fase

gasosa a partir das amostras de interesse (BUSTILLOS, 2003). O analisador

de massas emprega combinações entre campos elétrico e magnético para

separar íons gerados na fonte de ionização de acordo com as suas razões

massa/carga (m/z). O detector tem a finalidade de quantificar os íons

provenientes do analisador de massas.

Na espectrometria de massas, as moléculas gasosas são ionizadas

(geralmente para formarem cátions), aceleradas por um campo elétrico, e

analisadas de acordo com sua massa. O processo de ionização geralmente

confere energia suficiente para quebrar a molécula numa variedade de

fragmentos. Um espectro de massas é um gráfico que mostra a abundância

relativa de cada fragmento que atinge o detector no espectrômetro de

massas. (HARRIS, 2001).

6. REVISÃO DE LITERATURA

Esta revisão de literatura apresenta trabalhos que abordam métodos de

determinação de pesticidas em culturas hortícolas e vegetais por técnicas

cromatográficas de análise.

LÓPEZ et al, 2007, desenvolveram um método para determinação

simultânea de diferentes classes de pesticidas em diferentes variedades de

alface, utilizando cromatografia a gás com detector nitrogênio-fósforo (NPD).

Nesse método não foi necessária etapa de limpeza para extração dos

pesticidas nas matrizes estudadas. Foi utilizado 10 g da amostra e

homogeneizada em 200 mL de acetato por 2 min no homogeneizador

Polytron PT2000. Em seguida adicionou-se mais 20 mL de acetato de etila:

ciclohexano (1:1, v/v) e centrifugada por 10 min. O extrato foi filtrado e a fase

orgânica foi concentrada até a secura por evaporação rotativa e redissolvido

em 5 mL de acetato de etila:ciclohexano(1:1, v/v) e analisado por GC-NPD e

GC-MS. As recuperações ficaram na faixa de 63,9 a 118,6%. Os limites de

detecção (LOD) foi de 3 mg g

-1

e o desvio padrão relativo foi inferior a 9,5%.

HETHERTON et al, 2004, desenvolveram um método multirresíduo de

pesticidas e seus metabólitos em frutas e vegetais. A amostra foi

homogeneizada com 10 mL de acetonitrila e em seguida centrifugada, sendo

os pesticidas analisados pela técnica de cromatografia líquida acoplada a

espectrometria de massas. A recuperação nos níveis de fortificação (0,01 e

0,10 mg Kg

-1

) variou de 77 para 124 % e o desvio padrão foi inferior a 20%.

PATEL et al, 2003, desenvolveram um método para análise de resíduos de

pesticidas em alface por cromatografia a gás acoplada a um espectrômetro

de massas (GC-MS). Nesse método elimina a necessidade de uma etapa de

limpeza. As amostras foram extraídas com uma mistura de acetato de etila,

e NaHCO

. O limite de detecção ficou na faixa de 0,0025-0,5 µg mL

-1

(equivalente a 0,005-1,0 µg/kg). A média das recuperações ficou entre 73 a

118% e o desvio padrão relativo (RSD) ≤13%.

GONZÁLEZ, 2008, desenvolveu um método para determinação de

resíduos de pesticidas em vegetais folhosos, entre eles a alface. Por extração

em fase sólida (SPE), usando como solvente de eluição acetonitrila: tolueno

(3:1, v/v). O eluato foi evaporado e redissolvido com 0,5 mL de acetona. O

extrato foi analisado por cromatografia a gás acoplado a espectrômetro de

massas. As recuperações variaram entre 80 e 110%. O limite de detecção foi

de 0,010

µg/Kg. Os resíduos de pesticidas foram encontrados em 84% das

amostras.

GONZÁLEZ, 2008, determinou a ocorrência de resíduos de pesticidas em

produtos hortícolas por cromatografia a gás e extração em fase sólida,

usando como solventes de eluição acetona, acetonitrila e tolueno. Os limites

de detecção variaram de 0,002 a 0,010 µg/kg, enquanto os limites de

quantificação variaram de 0,006 a 0,020 µg/kg para os pesticidas estudados.

FERRER et al, 2009, desenvolveram um método para identificação e

quantificação de três pesticidas clorados comumente utilizados na cultura

hortícola por cromatografia líquida e espectrômetro de massas. A extração

das amostras teve como solvente de eluição acetato de etila. O resíduo foi

redissolvido em 15 mL de metanol. Em seguida os extratos contendo 1 g de

amostra foi filtrada antes da fortificação do analito, o que evitou a etapa de

limpeza da matriz. E após fortificação com uma solução de pesticidas foram

analisados por cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC). O coeficiente

de variação ficou entre 2-3%. Os limites de detecção variaram de 0,002 a

0,01 µg/kg. A seletividade e sensibilidade adequadas da técnica permitiram a

aplicação do método na identificação e quantificação de pesticidas em

matrizes vegetais.

ABHILASH et al, 2007, desenvolveram um método por MSPD para

determinação de resíduos de pesticidas lindano e isômeros do

hexaclorociclohexano em vegetais, frutas e planta medicinais por GC-ECD.

Foi adicionado a etapa de limpeza para extração dos pesticidas nas matrizes

estudadas. Foi utilizado 500 mg de Florisil como adsorvente para

homogeneização de 5,0 g da amostra. Na tentativa de eliminar a umidade da

matriz foi utilizado ainda 1,0 g de sulfato de magnésio anidro mais 500 mg de

cloreto de sódio que foram transferidos para uma coluna contendo 2,0 g de

alumina neutra, como adsorvente auxiliar, e 500 mg de sulfato de sódio

anidro. Para a etapa de eluição foi feito otimização do sistema de solventes,

sendo utilizado 1 mL de n-hexano:acetato de etila (70:30, v/v). As

recuperações ficaram na faixa de 93 a 103%. Os limites de detecção (LOD)

para os

α, β, γ e δ-HCH foram de 3 a 6 ng/g. Como os resultados se

mostraram satisfatórios, a metodologia foi aplicada para análises de

monitoramento do pesticida lindano e isômeros do hexaclorociclohexano em

matrizes alimentícias.

FENOLL et al, 2007, desenvolveram um método para determinação

simultânea de diferentes classes de pesticidas em diferentes variedades de

alface, que após fortificadas, foram homogeneizada com os solventes:

acetona e mistura de acetato de etila e ciclohexano e centrifugada por 10 min.

A análise dos resíduos de pesticidas foi realizada por cromatografia à gás

com detector nitrogênio-fósforo (NPD) e análise confirmatória dos pesticidas

foi realizada por cromatografia à gás acoplado a um espectrômetro de

massas. A recuperação em dois níveis de fortificação ( 0,05 e 0,20 mg g

-1

)

variou de 63,9 para 118,6 % e o desvio padrão foi inferior a 9,5%.

FENOLL et al, 2007, desenvolveram um método para determinação

simultânea de pesticidas em diferentes variedades de alface, que após

fortificadas, foram homogeneizada com os solventes: acetona e mistura de

acetato de etila e ciclohexano e centrifugada por 10 min. A análise dos

resíduos de pesticidas foi realizada por cromatografia à gás com detector por

captura de elétrons (ECD) e análise confirmatória dos pesticidas foi realizada

por cromatografia à gás acoplado a um espectrômetro de massas. A

recuperação em dois níveis de fortificação (0,1 e 3,8 mg g

-1

) variou de 66,4

para 119,2 % e o desvio padrão foi inferior a 7,7%.

7. EXPERIMENTAL

7.1

–

Material

Béquer (50mL), bastão de vidro, proveta (10 a 50mL), balão

volumétrico (1, 5, 10mL), balão de fundo redondo, vidro de relógio, frasco de

vidro com tampa rosqueável; colher de aço inoxidável, espátula, pinça,

seringa de polietileno (20mL), lã de vidro, micropipeta (Boeco Pipette 0,5-10,

10-100 e 100-1000µL).

7.2 – Solventes e Sorventes

Diclorometano, acetona, acetato de etila, n-hexano (Tedia

Company, USA) e acetonitrila (Mallinckrodt Chemicals, USA) todos grau

HPLC; sílica gel 60 – 200 Mesh (J. T. Baker, USA), alumina neutra 70 – 290

Mesh (Macherey – Nagel, Alemanha), Florisil 60 – 100 Mesh (Sigma, USA),

sulfato de sódio anidro (Merck, Alemanha), grau p.a. e carvão ativado (Synth

P.A).

7.3 – Padrões Certificados de Pesticidas

- malationa (AccuStandard, USA. Pureza de 99,1 %)

- parationa metílica (Dr. Ehrenstorfer GmbH, Alemanha. Pureza

de 98,1%)

- pirimicarbe (Chem Service,USA. Pureza de 98,0%)

- procimidona (AccuStandard, USA. Pureza de 99,1 %)

- α-endossulfam (Dr. Ehrenstorfer GmbH, Alemanha. Pureza

100%)

- β-endossulfam (Dr. Ehrenstorfer GmbH, Alemanha. Pureza de

99,4%).

7.4 – Equipamentos

• Evaporador-rotatório (Fisatom 802D)

• Balança analítica (Sartorius BL 2105)

• Cromatógrafo a gás (CG) 2010 acoplado ao espectrômetro

de massas (MS) modelo QP2010 plus da marca Shimadzu

(Kyoto, Japão) com injetor split/splitless e/ou auto injetor

AOC-20i

• Sistema para SPE vacuum manifold (Varian, Walnut Creck,

CA, EUA)

7.5 – Aquisição de Amostra de Alface

A alface (Lactuca sativa), cultivada no município de Itabaiana/SE, foi

adquirida na feira livre do conjunto Sol Nascente em Aracaju/Sergipe. A

alface foi armazenada numa caixa térmica previamente limpa, sob

refrigeração.

7.6

–

Fortificação da Amostra de Alface

Para a fortificação da amostra foi pesado 4 g de alface e em seguida

foi contaminada com 500 µL de uma solução mista dos pesticidas

pirimicarbe, parationa metílica, malationa, procimidona, α-endossulfam e β-

endossulfam nas concentrações 0,1; 0,25; 0,5; 1,0; 1,5 e 2,0 µg mL

-1

acetonitrila. Em seguida a amostra de alface fortificada foi deixada em

repouso por 30 min para eveporação do solvente.

7.7 - Preparação das Soluções Padrão dos Pesticidas

As soluções estoque dos padrões certificados de malationa (500 µg

-1

), parationa metílica (568 µg mL

-1

), pirimicarbe (400 µg mL

-1

), procimidona

(400 µg mL

-1

), α-endossulfam (400 µg mL

-1

) e β-endossulfam (300 µg mL

-1

)

foram preparadas em acetonitrila. A partir destas foi preparada 5 mL da

solução intermediária dos analitos, da qual foram preparadas soluções de

trabalho nas concentrações de 0,05; 0,1; 0,25; 0,5; 1,0; 1,5; 2,0; 5,0 e 10 µg

-1

para obtenção das curvas analiticas e a realização do estudo de

recuperação.

7.8 – Condições Cromatográficas para o GC/MS

Cromatógrafo a gás da Shimadzu modelo 2010 acoplado ao

espectrômetro de massas modelo QP2010 plus da marca Shimadzu (Kyoto,

Japão); coluna DB5MS - 5% de fenil e 95 % polidimetilsiloxano (30 m x 0,25

mm x 0,25 µm) J & W Scientific (USA). O gás de arraste foi o He (99,999%)

à pressão de 6 kg/cm

; injetor split/splitless (250 ºC); modo splitless; volume

injetado 1µL; programação de temperatura: temperatura inicial: 60 ºC (1

min); taxa de aquecimento de 10 ºC/min até 290 ºC (3 min); O espectrômetro

de massas foi operado com monitoramento de íons selecionados (SIM), no

modo de ionização por elétrons a 70 eV (280ºC); fluxo na coluna: 1,6

mL/min.; tempo total da corrida de 27 min.

7.9 – Validação de Método Analítico

Um método analítico deve gerar informações que sejam

confiáveis e interpretáveis sobre a amostra, devendo ser submetido a uma

avaliação que é chamada validação, processo bem definido e documentado

certificado pelos chamados parâmetros de desenvolvimento analítico ou

figuras de mérito. A validação é um conjunto de ensaios que se destinam a

verificar se um determinado método analítico é apto a produzir resultados

confiáveis e que estejam adequados aos objetivos a que se propõe. Dados

analíticos que não sejam confiáveis podem conduzir a decisões desastrosas

e a prejuízos irreparáveis. É através da validação que se tem conhecimento

das limitações e da confiabilidade das medidas obtidas na análise por meio

da metodologia desenvolvida (GAUJAC, 2006; RIBANI, 2004).

Segundo a NBR ISO 9000, validação é uma comprovação, através do

fornecimento de evidência objetiva, de que os requisitos para uma aplicação

ou uso específicos pretendidos foram atendidos. Para LANÇAS (2004),

validação é ato ou efeito de validar, dar validade, tornar valido, tornar

legitimo ou legal. Visa a diminuir ou controlar os fatores que levam a

imprecisão ou inexatidão de um dado gerado. Para RIBANI (2004), a

validação de métodos assegura a credibilidade do método durante seu uso

rotineiro, sendo algumas vezes mencionado como o processo que fornece

uma evidência documentada de que o método realiza aquilo para qual tem o

objetivo de assim o fazer.

Embora não haja um consenso sobre quais parâmetros devem ser

incluidos em um processo de validação de um método analítico, pelo menos

os seguintes normalmente fazem parte da maioria dos processos de

validação: exatidão, precisão, linearidade, sensibilidade, especificidade,

seletividade, robustez, limite de detecção e limite de quantificação (LANÇAS,

2004)

7.9.1 – Exatidão

A exatidão expressa a concordância entre o valor encontrado e

o valor verdadeiro. É geralmente determinada por intermédio do uso de uma

amostra certificada cuja concentração do analito de interesse é conhecida.

Os processos mais utilizados para avaliar a exatidão de um método são

materiais de referência, comparação de métodos, adição de padrão e

ensaios de recuperação. Este último constitui o procedimento mais utilizado

e reflete a medida de eficiência do processo de isolamento do analito de

interesse, presente ou adicionada na porção analítica da matriz (RIBANI,

2004; LANÇAS, 2004). A recuperação é determinada pela relação:

Recuperação (%) = [valor obtido / valor adicionado] x 100

A eficiência do método varia em função da concentração da

substância, ou seja, a dispersão dos resultados aumenta com a diminuição

da concentração e a recuperação pode diferir substancialmente entre

valores altos e baixos. Na maioria dos procedimentos analíticos de

validação, recuperações dentro da faixa de 70-120%, com precisão de até ±

20% são aceitas. Entretanto, para matrizes complexas tal como a alface,

estes valores podem ser de 50-120% de recuperação, com precisão de até ±

15% (RIBANI, 2004).

7.9.2 – Precisão

A precisão de um método é a expressão da concordância entre

vários resultados analíticos obtidos para uma mesma amostra, amostras

semelhantes ou padrões sob condições definidas e pode ser determinada

em condições de repetibilidade (representa a concordância entre os

resultados de medições sucessivas de um mesmo método, efetuadas sob as

mesmas condições de medição, chamadas de repetitividade: mesmo

procedimento; mesmo analista; mesmo instrumento usado sob as mesmas

condições; mesmo local; repetições em um curto intervalo de tempo) ou

reprodutibilidade (medidas efetuadas da mesma amostra e método em

diferentes laboratórios, operadores e equipamentos). Usualmente, é

expressa em termos de estimativa do desvio padrão absoluta (s) ou desvio

padrão relativo (RSD, do inglês relative standard deviation), também

conhecido como coeficiente de variação (CV) (INMETRO, 2003; RIBANI,

2004; LANÇAS, 2004) e seus valores aceitáveis para análise de traços ou

impurezas chega até 20%.

RSD = S/X x 100

Onde:

S = estimativa do desvio padrão da recuperação

X = média aritmética dos valores de recuperação

7.9.3 – Linearidade

A linearidade de um método analítico pode ser definido como sendo a

habilidade deste método em gerar resultados diretamente proporcionais à

concentração do analito, em uma determinada faixa de concentração

(RIBANI, 2004). Para a maioria das técnicas cromatográficas, observa-se

uma relação linear de primeira ordem entre a resposta instrumental medida

(eixo y) (variável dependente) e a concentração do analito (eixo x) (variável

independente). Essa relação produz uma equação de regressão linear y =

ax + b, que relaciona as duas variáveis x e y, e gera coeficiente de

regressão a (inclinação da curva) e b (interseção da curva analítica com o

eixo y, quando x=0) (INMETRO, 2003). Essa equação é valida para um

intervalo determinado de concentração do analito, independente da técnica

instrumental utilizada.

Também é possível calcular o coeficiente de correção (r), que pode ser

utilizado para estimar a qualidade da curva analítica uma vez que

demonstra uma menor variação dos dados obtidos quanto mais próximo de

1 for o valor r (RIBANI, 2004). Valores de r iguais ou superiores a 0,99 e

0,90, são recomendados, respectivamente, pela ANVISA e pelo INMETRO.

Já os valores de determinação (r

) são tidos como satisfatórios a partir de

0,98 (ANVISA, 2009; INMETRO, 2003). A faixa linear de um método de

ensaio no qual for demonstrado ser possível a determinação com a

precisão, exatidão e linearidade exigida, sob as condições específicas do

ensaio. A faixa linear é definida como sendo a faixa de concentração na

qual a sensibilidade pode ser considerada constante, é normalmente

expressa nas mesmas unidades do resultado obtido pelo método analítico

(INMETRO, 2003).

7.10 – Limpeza do Material

O material utilizado no preparo das soluções e no processo de

extração foi enxaguado em água corrente (3x), deixado de molho em

solução de Extran 2% por 24 horas, novo enxague com água corrente (3x),

lavado com água destilada e, em seguida, com hexano e acetona, seco em

estufa ou a temperatura ambiente para então ser guardados com as

extremidades cobertas com papel filme ou laminado.

7.11 – Método de Extração por Sólido-Líquido

A alface foi pesada (4,0 g) em vidro de relógio em seguida foi

transferida para uma seringa de polietileno contendo a lã de vidro (base de

sustentação), e, sequencialmente silica gel e alumina nas proporções de 1: e

2:1 (m/m) e 1,0 g Na

anidro. A eluição foi efetuada com 30 mL do

solvente diclorometano e das misturas de solventes Acetato de etila:hexano

e acetato de etila:diclorometano em diversas proporções nos teste para essa

técnica, na sequência o extrato foi concentrado em evaporador rotatório (80

rpm; 50°C) até 2 mL. Em seguida, sob fluxo de N

até 1,0 mL. Uma alíquota

de 1,0 µL foi analisado por GC-MS.

7.12 – Método de Extração por MSPD

A alface foi pesada (4,0 g) em cápsula de porcelana foi adicionado o

adsorvente (0,5 g de sílica) e foi homogeneizado por aproximadamente 3

min até a obtenção de uma massa uniforme, que em seguida foi transferida

para uma seringa de polietileno contendo a lã de vidro (base de

sustentação), e, sequencialmente, 1 g de silica gel, 1 g de alumina, 0,1 g de

carvão ativado e 0,5 g Na

anidro. A eluição foi efetuada com 30 mL de

acetonitrila, na sequência o extrato foi concentrado em evaporador rotatório

(80 rpm; 50°C) até 2 mL. Em seguida, sob fluxo de N

até 1,0 mL. Uma

alíquota de 1,0 µL foi analisado por GC-MS.

A Figura 5 sintetiza as etapas do procedimento de extração.

Figura 5. Fluxograma do processo de MSPD para extração de

pesticidas de alface.

8. RESULTADOS E DISCUSSÃO

8.1 Seleção dos princípios ativos

Foram selecionados pesticidas que são aplicados nas culturas hortícolas

da cidade de Itabaiana no estado de Sergipe. Os princípios ativos malationa,

parationa metílica, pirimicarbe, procimidona,

α-endossulfam e β-endossulfam

têm seu uso controlado pela Empresa de Desenvolvimento Agropecuário de

Sergipe (EMDAGRO) para o controle de ação de pragas nas culturas

hortícolas.

8.2 Otimização das Condições Cromatográficas por GC/MS

Primeiramente foram realizadas análises das soluções padrão

individuais dos pesticidas selecionados por CG/MS (modo SCAN) para

obtenção dos tempos de retenção dos pesticidas, utilizando uma solução

de 1,5 µg mL

-1

. Posteriormente foram feitas injeções das soluções padrão

dos pesticidas, selecionando seus íons mais significativos (modo SIM,

Selected Ion Monitoring) no modo ionização por elétrons a 70 eV.

Foram testadas programações de temperatura, a fim de obter uma

separação eficiente e uma resolução adequada de análise. O fluxo da fase

móvel foi mantido em 1,6 mL/min. A seleção dos fragmentos monitorados e

os tempos de retenção dos pesticidas estão relacionados na Tabela 7.

Tabela 7. Tempos de retenção e fragmentos monitorados na quantificação

dos pesticidas.

Pesticidas Tempo de

retenção (min)

Fragmentos

monitorados (m/z)

Pirimicarbe 16,6 72, 166, 238

Parationa metílica 17,3 109, 125, 246

Malationa 18,1 93, 127, 173

Procimidona 19,3 96, 124, 283

α-endossulfam 19,9 195, 207, 241

β-endossulfam 21,3 159, 195, 241

A resposta do detector é mostrada na Figura 6 pelo cromatograma da

solução padrão dos analitos em concentração 1,0 µg mL

-1

obtido no GC-MS,

operando no modo SIM.

Figura 6

. Cromatograma (GC/MS, modo SIM) de uma solução padrão dos analitos

(1,0 µg mL

-1

), sendo: 1) pirimicarbe; 2) parationa metilica; 3) malationa; 4)

procimidona; 5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam. Para condições cromatográficas

de análise ver item 7.8.

Tempo (min.)

Resposta do detector

8.3 -

Ensaios para Desenvolvimento do

Método de Extração por

MSPD

Para o desenvolvimento de métodos multirresíduo de análise de

pesticidas, é necessário explorar as características físico-químicas dos

analitos visando a alta seletividade e sensibilidade na detecção e

quantificação, melhores desempenho na extração e pré-concentração, maior

rapidez no procedimento analítico e menor custo econômico e ambiental da

análise, pois na maioria das vezes os compostos possuem características

distintas, no que se refere a polaridade, volatidade ou ainda nas

propriedades de detecção (BEZERRA, 2009).

A eficiência da extração para desenvolvimento do método foi

analisada em termos de valores percentuais dos analitos em ensaios de

recuperação (nível de fortificação de 0,1; 0,25; 0,5; 1,0; 1,5 e 2,0 µg g

-1

Tabela 9). A eficiência foi calculada comparando as áreas dos picos de cada

composto extraído nos ensaios de recuperação com aquelas obtidas da

solução padrão preparada no extrato da matriz, a qual foi preparada pela

diluição de 500 µL da solução padrão dos pesticidas 2,0 µg mL

-1

em 500 µL

do extrato da amostra testemunha da matriz, de forma a minimizar os erros

por excesso ou redução gerados pelo efeito matriz, bastante acentuado em

matrizes complexas como a alface. Esse efeito é atribuido a uma elevada

transferência de compostos da matriz para o extrato durante a extração dos

analitos de interesse, os quais podem co-eluir junto ou muito próximos ao

tempo de retenção dos pesticidas bem como diminuir ou aumentar a área do

mesmo (MENKISSOGLU-SPIROUDI, 2004).

8.3.1 - Escolha do adsorvente e proporção matriz:adsorvente

Os ensaios iniciais para escolha do adsorvente apropriado e da

proporção adequada adsorvente:amostra foram realizados de maneira

qualitativa com sílica, alumina e Florisil como suportes sólidos e eluição com

20 e 30 mL dos seguintes solventes: acetato de etila (mediamente polar),

hexano (apolar), acetonitrila (polar), e diclorometano (mediamente polar).

A sílica e o Florisil são sorventes com características polares. Florisil é

o sorvente mais polar, frequentemente utilizado em análise de resíduos de

pesticidas e sua utilização é preferida para limpeza de pesticidas apolares

em matrizes altamente gordurosas devido a sua facilidade em reter lipídios

(DOPICO-GARCIA, 2007). A sílica possui superfície ligeiramente ácida que

facilita a retenção de compostos básicos, e propriedades mais polares que o

Florisil interagindo com mais facilidade com pesticidas mais polares (SABIN,

2007). A alumina neutra por ser um sorvente tipicamente anfótero consegue

interagir de forma favorável com os pesticidas de classes químicas variadas

facilitando o processo de extração (LANÇAS, 2004).

Nos ensaios realizados as recuperações atingiram valores

diferenciados. Foram elaborados dois grupos testes: grupo 1 composto pelo

sorvente silica e o grupo 2 pela mistura silica:Florisil na proporção 1:1 (m/m)

e silica:alumina na proporção 2:1 (m/m) (Tabela 7). Quando sílica e Florisil

foram utilizados, o eluente apolar e com menor força eluotrópica em sílica

(diclorometano:acetato de etila 1:1 (v/v)) não foi eficiente para extração dos

compostos, obtendo-se recuperações inadequadas para a parationa metilica,

273%.

Valores elevados de recuperação para parationa metílica (354%) e β-

endossulfam (203%) quando silica:Florisil 1:1 (m/m) foi testado, deve-se

provavelmente aos pesticidas terem interagido mais com o Florisil. Além

disso, a utilização do mesmo facilitou também a extração de outros

constituintes da alface por sua maior capacidade de interação química com

grupos polares do vegetal como a clorofila (ABHILASH, 2007), resultando

em efeito matriz, dado os elevados valores de recuperação nos ensaios

quando se fez uso deste suporte sólido.

Segundo PINHO, 2009, elevados valores de recuperação e baixa

precisão são observados em análises de agrotóxicos de caráter polar em

amostras complexas como vegetais. Para Gonzalez-Rodriguez, 2008, os

problemas gerados pelos componentes endógenos da matriz nas respostas

do detector não dependem apenas das características dos compostos, mas

também das próprias condições cromatográficas, particularmente no injetor,

na coluna cromatográfica e no detector do CG.

Este trabalho foi iniciado com a técnica de extração sólido-líquido com

a eluição dos pesticidas em diversos solventes. O resultado das extrações

com a mistura diclorometano:acetato de etila 7:3 (v/v) permitiu obter

recuperações com valores entre 8 e 194%, quando a mistura sílica:alumina

2:1 (m/m) foi utilizada como suporte sólido, e 23-322% com a silica. Este

último sistema arrastou tanto os analitos de interesse como os compostos

interferentes, responsáveis pela recuperação elevada da parationa metílica

(322%) no ensaio com a sílica.

Como os resultados não foram satisfatórios, pois as recuperações

ficaram fora da faixa aceitável, que, segundo Ribani (2004), é entre 50 e

120%, optou-se pela técnica de extração por dispersão da matriz em fase

sólida. Nos ensaios iniciais foram testados os sistema sílica:alumina 2:1

(m/m), e adição de 0,5 g de silica homogeinizada na amostra fortificada e 30

mL de acetonitrila. Este sistema permitiu obter valores de recuperação entre

50 e 160%. A Figura 7 tem-se a comparação dos sistemas silica:alumina 1:1

(m/m) e silica:alumina 2:1 (m/m).

100

150

200

pirimicarbe parationa

metílica

malationa procimidona α-endossulfam β-endossulfam

silica:alumi

na 2:1

silica:alumi

na 1:1

Apesar de se ter observado uma melhora significativa nas

recuperações obtidas quando se usou a técnica MSPD, tendo como solvente

de eluição a acetonitrila, havia ainda o efeito matriz, observado nos valores

de recuperação para parationa metilica e malationa, 160%. Com o objetivo

de reduzir o efeito matriz nas recuperações foi adicionado 0,1 g de carvão

Figura 7

Eficiência na recuperação (n = 2) dos pesticidas em alface utilizando

sílica:alumina nas proporções 2:1 e 1:1 (m/m).

Recuperação (%)

ativado, para tentar a remoção de impurezas traços (LIMA, 2006).

Observaram-se então cromatogramas mais definidos e recuperações entre

60 e 120%. Figuras 8 e 9.

Desta forma, os valores encontrados, quando se usou silica:alumina

1:1 (m/m) e acetonitrila 30 mL e adição de 0,1 g de carvão ativado, podem

ser considerados dentro do limite, que segundo RIBANI 2004 é entre 50 e

120%.

Figura 8.

Cromatograma silica:alumina 1:1, em acetonitrila (0,25 µg mL

), obtido por

GC-MS da solução mista de pesticidas. Sendo: 1) pirimicarbe; 2) parationa metilica; 3)

malationa; 4) procimidona; 5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam. Para condições

cromatográficas ver item 7.8

Figura 9

Cromatograma silica:alumina 1:1, em acetonitrila (0,25 µg mL

), obtido por

GC-MS da solução fortificada. Sendo: 1) pirimicarbe; 2) parationa metilica; 3)

malationa; 4) procimidona; 5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam. Para condições

cromatográficas ver item 7.8

Resposta do detector

Tempo (min.)

8.3.2 - Ensaios para seleção do solvente de eluição

Um solvente ou mistura de solventes apropriado deve permitir a

eluição dos analitos livres dos componentes da matriz bem como melhorar

as recuperações. Para isso, a seleção do solvente leva em consideração as

polaridades dos analitos (VALSAMAKI, 2006). Para os compostos mais

polares a recuperação aumenta com o aumento da polaridade do solvente.

Esta tendência foi observada em ensaios mantendo a proporção matriz e

adsorvente para os ensaios utilizando solventes com características polares

a mediamente polares, como diclorometano e a mistura

diclorometano:acetato de etila nas proporções (1:1, 7:3 e 9:1 v/v), já que os

analitos em estudo também são polares a mediamente polares. Os valores

médios de recuperação obtidos nesses ensaios foram maiores comparados

aos ensaios com acetato de etila:n-hexano em diferentes proporções

(Tabela 8).

A acetonitrila, considerada um dos melhores solventes extratores para

análise de agrotóxicos, pois geralmente apresenta compatibilidade com o

analito, com o preparo da amostra, na análise por cromatografia gasosa e

pode ser empregada para analisar agrotóxicos de diferentes polaridades

(MASTOVSKÁ, 2004), eluiu com maior eficiência os pesticidas em interesse

nos ensaios com sílica: alumina 1:1 (m/m) comparado ao diclorometano e a

mistura acetato de etila:hexano nas proporções (1:1; 7:3; 8:2; 9:1 e 85:15,

v/v). Os valores médios de recuperação que oscilaram entre 60 e 120%,

evidenciando uma melhor eficiência da extração com acetonitrila nestes

ensaios, como é mostrado na Figura 10.

100

150

200

250

300

350

pirimicarbe parationa malationa procimidona α-endossulfam β-endossulfam

diclorom

etano

acetato:

hexano

acetonitr

ila

Recuperação (%)

Figura 10

Eficiência na recuperação (n = 2) dos pesticidas em alface utilizando

silica:alumina 1:1 como suporte sólido e eluição com diclorometano, acetato de

etila:hexano (85:15, v/v) e de acetonitrila.

Tabela 8. Testes para seleção do sistema de suporte sólido e solvente de eluição para os pesticidas de matriz de alface

por MSPD na concentração de 0,25 µg g

-1



MSPD Recuperação (%)



teste

Suporte sólido

Solvente (v/v)

(volume, 30 mL)

malationa parationa

metílica

pirimicarbe procimidona α-endossulfam β-endossulfam

sílica

acetato:hexano (1:1)

407

_ _ 58 172

sílica

acetato: hexano (8:2)

396

_ _ 64 178

sílica

acetato: hexano (7:3)

303

_ _ 64 178

1 silica acetato: hexano (85:15)

322

_ _

36 120

sílica

acetato: hexano (9:1)

727

_ _ 51 13

sílica

diclorometano: acetato (8:2)

358

_ _ 66

226

sílica

diclorometano

128

_ _ 64 218

sílica

diclorometano: acetato (9:1)

_ _ 36 132

sílica

diclorometano: acetato (1:1)

273

_ _ 59 180

1g silica + 1g Florisil diclorometano: acetato (1:1)

354

_ _

58 203

2g silica + 1g alumina diclorometano: acetato (1:1)

548

_ _

104 350

2g silica + 1g alumina diclorometano: acetato (7:3)

115

_ _

59 194

2g silica + 1g alumina diclorometano: acetato (9:1)

149

_ _

60 204

1g silica + 1g alumina acetonitrila

160

140

96 60

50 45

1g silica + 1g alumina

e 0,1 g carvão

ativado

acetonitrila

103

100

120 80

65 60

8.4 Efeito Matriz

As taxas de recuperação em métodos de análise multirresíduo em

alimentos para os compostos de interesse nem sempre são satisfatórios, por

apresentarem porcentagens de extração acima de 100% e ainda elevados

desvios nas análises. Estes resultados estão relacionados com o efeito

matriz que ocorre durante a análise cromatográfica (MENKISSOGLU-

SPIROUDI, 2004; HAJSLOVÁ, 2003).

O efeito matriz, a interferência dos componentes da matriz na

quantificação dos pesticidas na análise cromatográfica, ocorre porque a

curva analítica utilizada para quantificar os pesticidas contém uma variedade

de compostos pertencentes à matriz que são co-extraidos. Estes compostos

interferem durante a análise cromatográfica, pois influenciam na quantidade

de pesticidas que é transferida para a coluna. (GONZALES, 2008).

O efeito matriz pode ocorrer em diversas partes do sistema

cromatográfico como: injetor, coluna ou detector. O liner do injetor (tubo de

vidro) é o principal responsável pelo efeito matriz, pois sítios ativos deste

material podem absorver ou induzir a degradação térmica de alguns analitos.

Quando as soluções padrão são preparadas no solvente puro e analisadas

por cromatografia, mais sítios ativos do liner estão disponíveis para interagir

com os pesticidas. Entretanto, quando se analisa os extratos, os pesticidas

estão na presença de componentes da matriz, ocorrendo assim uma

competição pelos sítios ativos. Dependo das características do analito e da

amostra, os componentes da matriz podem ser adsorvidos no liner e mais

pesticidas podem ser introduzidos na coluna cromatográfica, originando uma

resposta mais para o pesticida quando comparado com a resposta deste em

solvente puro (HAJSLOVÁ & ZROSTILIKOVA, 2003), proporcionando,

assim, erroneamente uma alta concentração dos pesticidas.

Normalmente, para corrigir esses erros nas taxas de recuperação, a

curva analítica pode ser preparada substituindo o solvente puro por extrato

da matriz isenta de pesticidas, durante a diluição das soluções padrão nas

diversas concentrações (RIBANI, 2004). Muitos pesticidas têm se mostrado

estáveis quando preparados em extrato da matriz. Têm-se observado a

degradação de organofosforados apenas quando se eleva a temperatura de

armazenamento dos padrões, caso contrário, quando os padrões

preparados no extrato da matriz são armazenados em baixa temperatura,

estes são tão estáveis quanto os padrões preparados em solvente puro

(KOCOUREK, 1998).

A intensidade do efeito matriz pode variar de uma amostra para outra,

ou de acordo com a concentração do analito na matriz. HAJSLOVÁ (1998)

verificou que quanto menor a concentração do analito na amostra, maior

será o efeito matriz. Um fato interessante foi observado por SCHENCK &

LEHOTAY (2000) em que o pesticida terbufós não apresentou nenhum efeito

matriz quando analisado em concentrações mais altas 5 e 10 µg mL

-1

Entretanto, para concentrações mais baixas na ordem de 0,1 µg mL

-1

apresentou significativo efeito de matriz.

As propriedades físico-químicas dos pesticidas e dos interferentes,

como polaridade, volatilidade, estabilidade em altas temperaturas, etc.

também são fatores relevantes no estudo de efeito de matriz

(MENKISSOGLU-SPIROUDZ & FOTOPOULOU, 2004). Pesticidas que

contém grupos amida e/ou ligações P=O, de uma forma geral, compostos

mais polares, são largamente afetados pela matriz. Ou mesmo compostos

de elevada massa molar como os piretróides tendem a apresentar também

aumento da resposta (SANCHEZ-BRUNETE, 2005).

O efeito matriz foi verificado no desenvolvimento deste trabalho, pois

além das elevadas recuperações obtidas nos testes, para o desenvolvimento

do método (ver item 8.6 e Tabela 8), obtiveram-se cromatogramas com um

número elevado de sinais co-eluídos com os analitos estudados, Figura 11.

Para eliminar esse efeito matriz foram testados solventes com

características de média a alta polaridade, já discutidos no item 8.6. Além

disso, foi substituído o solvente puro por extratos da matriz isenta de

pesticidas durante a preparação das soluções padrão nas diversas

concentrações de trabalho, pois segundo SCHENCK, 2000, na injeção de

uma solução padrão preparada em solvente puro, apenas os agrotóxicos da

solução são expostos aos sítios ativos do liner. Ao passo que na injeção de

um extrato, ocorre uma competição entre os agrotóxicos de interesse e os

co-extratores presentes na amostra pelos sítios do liner. Assim, uma

quantidade maior de analito alcança a coluna e consequentemente o

detector. E também foi adicionado carvão ativado que teve a função de

remoção de impurezas traços da matriz. Com isso foi otimizado o método de

dispersão da matriz em fase sólida para determinar os pesticidas

pirimicarbe, parationa metílica, malationa, procimidona, α-endossulfam e β-

endossulfam em matriz de alface.

9. VALIDAÇÃO DO MÉTODO ANALÍTICO

Em análise de resíduos de pesticidas, a validação do método de

ensaio ocorre, usualmente, por meio de ensaios de recuperações

intralaboratorial, ou seja, no próprio laboratório onde se deseja validar o

Figura 11

Cromatograma silica:alumina 2:1, em diclorometano, obtido por GC-MS

(modo SCAN). sendo: 1) pirimicarbe; 2) parationa metilica; 3) malationa; 4)

procimidona; 5) α-endossulfam e 6) β-endossulfam. Para condições cromatográficas

ver item 7.8.

Resposta do detector

Tempo (min.)

método. Sendo assim, os parâmetros contemplados neste trabalho para a

validação do método analítico desenvolvido foram: exatidão (em termos de

recuperação), precisão (em termos do coeficiente de variação), linearidade

(em termos de coeficiente de correlação da curva analítica para uma dada

faixa de concentração), sensibilidade (em termos de limite de detecção e

limite de quantificação).

9.1 Exatidão

A avaliação da exatidão do método desenvolvido foi realizada por

meio de ensaios de fortificação de amostras testemunhas de alface em seis

níveis de concentração, quais sejam: 0,1; 0,25; 0,5; 1,0; 1,5 e 2,0 µg g

-1

uma série de três replicatas para cada nível e sete replicatas para o nível

0,25 µg g

-1

O método desenvolvido apresentou valores satisfatórios de

recuperação em todos os níveis de concentração estudados. A exceção foi

α-endossulfam que na concentração de 0,1 µg g

-1

não foi detectado. Os

valores de coeficiente de variação mais baixos são estabelecidos na

concentração de 0,1 e 0,5 µg g

-1

, dado a boa precisão em ensaios

realizados nesta concentração, dentro da faixa de recuperação obtida nos

resultados mostrados na Tabela 9.

Tabela 9. Valores de recuperação média dos pesticidas e coeficientes de

variação dos pesticidas de alface por MSPD e GC/MS.

Pesticidas

LMR

(

µg g

-1

)

Nível de

fortificação

(

µg g

-1

)

Recuperação

média (%)

(%)

pirimicarbe 1,0 0,1

0,25

0,5

1,0

1,5

2,0

103

102

0,7

3,0

4,6

2,1

1,5

5,2

parationa

metílica

- 0,1

0,25

0,5

1,0

1,5

2,0

100

0,6

2,9

3,1

0,7

2,1

5,7

malationa 8,0 0,1

0,25

0,5

1,0

1,5

2,0

120

111

2,2

2,4

5,8

4,3

0,6

5,1

procimidona 5,0 0,1

0,25

0,5

1,0

1,5

2,0

106

1,6

6,9

2,5

3,2

4,0

4,8

α-

endossulfam

- 0,1

0,25

0,5

1,0

1,5

2,0

112

7,6

0,9

1,6

2,0

4,4

β-

endossulfam

- 0,1

0,25

0,5

1,0

1,5

2,0

2,6

8,0

0,9

6,5

0,7

6,2

* ANVISA, 2009

+ n = 7

9.2 Precisão

Os coeficientes de variação para cálculos de recuperação no presente

estudo variaram de 0,6 a 8,0% para análises realizadas em GC/MS ( Tabela

9). A Figura 12 apresenta os cromatogramas do branco dos reagentes, do

extrato fortificado da matriz e da solução de comparação em solvente

acetonitrila e no extrato de alface (Lactuca sativa L.) fortificado com solução

padrão de pesticidas pirimicarbe, parationa metílica, malationa, procimidona,

α-endossulfam e β-endossulfam no nível de concentração de 0,5 µg mL

-1

(a)

(b)

(c)

Figura 12

Cromatogramas obtidos no GC-MS da amostra em acetonitrila (branco)

(a), da solução padrão de comparação 0,5 µg g

-1

em acetonitrila (b), do extrato

fortificado da matriz no nível de fortificação 0,5 µg g

-1

(c), sendo: 1) pirimicarbe; 2)

parationa metilica; 3) malationa; 4) procimidona; 5) α-endossulfam e 6) β-

endossulfam. Para condições cromatográficas ver item 7.8.

Resposta do detector Resposta do detector

Resposta do detector

9.3 Linearidade

A faixa linear de cada analito foi determinada a partir de um conjunto

de medições experimentais, usando o método matemático da regressão

linear, obtendo-se o coeficiente de correlação r. Os valores das faixas de

trabalho para todos os pesticidas foram de 0,05 a 2µg/mL por GC/MS e

preparados no extrato da alface. A Tabela 10 apresenta os valores dos

coeficientes de correlação e as equações de regressão linear de cada

pesticida estudado por GC/MS). As Figuras 13 e 14 demonstram as curvas

analíticas para pirimicarbe, malationa, procimidona, parationa metílica,

α-

endossulfam e β-endossulfam.

Tabela 10. Valores dos coeficientes de correlação e equações da reta para

os pesticidas preparados no extrato da matriz e analisados por MSPD e

GC/MS.

Pesticidas

Linearidade

(µg/mL)

Coeficiente

de correlação r

Equação

da reta

pirimicarbe 0,05-2,0 0,998 y = 358133x - 28769

parationa 0,05-2,0 0,998 y = 37171x + 29014

malationa 0,05-2,0 0,998 y = 43058x + 60837

procimidona 0,25-2,0 0,996 y = 78064x + 102088

α-endossulfam 0,25-2,0 0,998 y = 26865x - 2794,6

β-endossulfam 0,25-2,0 0,999 y = 18350x + 1096,8

(a)

(b)

(c)

(d)

Figura 13. Curvas analíticas obtidas no extrato da matriz: pirimicarbe (a),

malationa (b), procimidona (c) e parationa metílica (d)

(e)

(f)

Figura 14. Curvas analíticas obtidas no extrato da matriz: α-endossulfam (e)

e β-endossulfam (f).

9.4 Limite de Detecção (LOD)

A detectabilidade de um método analítico pode ser definido

considerando-se o limite de detecção (LOD) e o limite de quantificação

(LOQ) apresentado por este.

O LOD representa a menor concentração do analito que pode ser

detectada, mas não quantificada, em certo nível de confiança, utilizando-se

de um determinado método analítico (INMETRO, 2003)

Para determinação de resíduos, a forma mais empregada para cálculo

do limite de detecção é através da relação três vezes sinal/ruído, sendo o

resultado expresso como a concentração do analito na amostra (LANÇAS,

2004). O limite de detecção de cada um dos pesticidas estudados foi

calculado através do desvio padrão (n=7 replicatas) no menor nível de

concentração da solução de fortificação de cada analito. O cálculo do limite

de detecção foi feito através da relação mostrada abaixo.

LOD = t

95%

.s/S

Onde:

95%

= coeficiente de Student para 95% de confiança

s = desvio padrão

S = coeficiente angular da curva analítica

A Tabela 11 apresenta os valores dos limites de detecção para os

pesticidas analisados por GC/MS.

Tabela 11. Valores dos limites de detecção do método LOD dos pesticidas

obtidos por GC/MS.

Pesticida LMR*

(mg/Kg)

LOD

(mg/Kg)

pirimicarbe

1,0 0,01

parationa

- 0,02

malationa

8,0 0,01

procimidona

5,0 0,01

α-endossulfam

- 0,01

β-endossulfam

- 0,03

* ANVISA, 2009

9.4.1 Limites de detecção do método validado com o encontrado na

literatura

De acordo com os dados das tabelas 12 pode se verificar que o

método proposto obteve melhores valores de limites de detecção se

comparado a outros trabalhos encontrados na literatura para os pesticidas

procimidona, malationa, α-endossulfam e β-endossulfam em amostra de

alface, mostrando que o método é viável para análise destes pesticidas em

amostra de alface.

Tabela 12. Limite de detecção dos pesticidas procimidona, malationa,

α-

endossulfam e β-endossulfam em diversos trabalhos encontrado na

literatura e no trabalho desenvolvido

Concentração 0,2 µg/g sendo

Procimidona Malationa α-

endossulfam

β-

endossulfam

Referência

LOD

0,01 0,01 0,01 0,03 TRABALHO*

DESENVOLVIDO

0,03 - - - GONZÁLEZ* -

RODRIGUES,

2008

- - 0,58 1,26 BARRIADA*-

PEREIRA, 2010

0,02 - - - TORRES, 1997*

0,7 3,1 - - FENOLL, 2007**

*GC/MS

**GC/ECD

9.5 Limite de Quantificação (LOQ)

O limite de quantificação de um método (LOQ) expressa a menor

concentração do analito que pode ser quantificada, ao empregar-se um

determinado procedimento experimental (LANÇAS, 2004). Os limites de

quantificação foram calculados levando em consideração sete replicatas de

fortificação na alface em análises por GC/MS, sendo que o mesmo é

estabelecido como dez vezes a estimativa do desvio padrão (INMETRO,

2003). Os limites de quantificação de cada pesticida foram calculados com

base na equação mostrada abaixo:

LOQ = 10 x s/S

Onde:

s = desvio padrão

S = coeficiente angular da curva analítica

Na Tabela 13 estão apresentados os valores dos limites de

quantificação método LOQ para os pesticidas analisados por GC/MS.

Tabela 13. Valores dos limites de quantificação do método LOQ

dos

pesticidas em análises realizadas por GC/MS.

Pesticida LMR*

(mg/Kg)

LOQ

(mg/Kg)

pirimicarbe

1,0 0,04

parationa

- 0,02

malationa

8,0 0,04

procimidona

5,0 0,04

α-endossulfam

- 0,04

β-endossulfam

- 0,11

*ANVISA, 2009

10. NOVOS MATERIAIS PARA MSPD

O tipo de adsorvente e a polaridade do solvente de eluição, são

conhecidos como fatores chave na extração por dispersão da matriz em fase

sólida, uma vez que determina tanto a eficiência da extração como a pureza

do extrato final (LEHOTAY,2000).

Neste trabalho, além de sorventes convencionais também foi testado

um novo material, o polímero “polímero (La

0.9

0.1

)

(dipic)

” como fase

para extração por MSPD dos pesticidas pirimicarbe, parationa metílica,

malationa, procimidona, α-endossulfam e β-endossulfam em amostras de

alface. Os resultados mostraram que o polímero “polímero

(La

0.9

0.1

)

(dipic)

” pode ser aplicado com sucesso para análise dos

pesticidas em estudo, pois o polímero forneceu melhores valores de

recuperação entre 93 e 109% para análise de procimidona, α-endossulfam e

β-endossulfam em comparação aos adsorventes convencionais como

sílica:alumina (1:1, (m/m)) com valores de recuperação entre 61 e 95%,

Tabela 14. Este polímero pode ser útil para análise de resíduos de pesticidas

em amostras de alface, pois requer pequena quantidade 0,5 g, mostrando

ser viável economicamente. As etapas de síntese e caracterização desse

material foram realizadas de acordo com dados previamente reportados na

literatura (BROUCA-CABARRECQ, 2002) com algumas modificações pelo

laboratório de Compostos Inorgânicos e Orgânicos com Propriedades

Especiais do DQI/UFS sob a coordenação da prof

Maria Eliane de

Mesquita. Os centros de lantânio foram dopados com európio numa

proporção 0,9:0,1 o que não alterou a estrutura do material original.

Tabela 14. Comparação da eficiência de recuperação dos pesticidas de

alface, utilizando sílica:alumina (1:1, (m/m)) e polímero

“(La

0.9

0.1

)

(dipic)

”.

Recuperação (%)

Pesticidas Nível de

fortificação

(µg g

-1

)

sílica:alumina

(1:1, (m/m))

Polímero

(La

0.9

0.1

)

(dipic)

pirimicarbe

1,0

98 100

parationa metílica

95 109

malationa 93 102

procimidona 71 107

α-endossulfam 61 93

β-endossulfam 68 104

11. CONSIDERAÇÕES FINAIS

Os resultados obtidos neste trabalho permitem concluir que o

procedimento analítico de extração por MSPD desenvolvido para a

determinação simultânea de seis pesticidas (malationa, parationa metílica,

pirimicarbe, procimidona,

α-endossulfam e β-endossulfam) em amostras de

alface (Lactuca sativa), empregando GC-MS, mostrou-se eficiente, rápido,

preciso e exato e requer pouca quantidade de amostra, adsorvente e volume

de solventes. As condições cromatográficas adotadas permitiram a obtenção

de bons resultados de resolução dos compostos em análise.

O método de extração desenvolvido envolve a homogeneização da

amostra de alface (4,0 g) nos seguintes suportes sólidos: sílica (1,0 g) e

alumina (1g), e carvão ativado (0,1g), sem a etapa de purificação e eluição

com 30 mL de acetonitrila.

Na etapa de validação do procedimento proposto para extração dos

pesticidas em análise no GC-MS, foram avaliados as figuras de mérito

exatidão e precisão, onde foram obtidos valores médios de recuperação em

seis níveis de fortificação estando na faixa entre 50 e 120%, dentro da faixa

aceitável descrita na literatura para análise de resíduos de pesticidas em

amostras complexas (50-120%) e concordância entre os valores com RSD

menores que 8,0%. Os limites de detecção e quantificação do método não

excederam 0,08 e 0,11 µg g

-1

, respectivamente.

O limite de detecção do método foi comparado com outros métodos

encontrado na literatura onde se encontrou valores que variaram entre 0,02

e 1,26, e no trabalho desenvolvido esses valores foi entre 0,01 e 0,03 para

os pesticidas malationa, procimidona, α-endossulfam e β-endossulfam.

Neste trabalho também foi testado outro material para MSPD o polímero

(La

0.9

0.1

)

(dipic)

, obtendo valores de recuperação entre 93 e 109%,

melhores até do que os encontrado com sorvente convencionais como o

sistema sílica:alumina para os pesticidas procimidona, α-endossulfam e β-

endossulfam.

12. PERSPECTIVAS FUTURAS

Estudar a inclusão de outros princípios ativos e outras amostras

hortícolas, como couve e repolho, no método MSPD-GC-MS;

Aplicar a metodologia desenvolvida em amostras de alface produzidas

na cidade de Itabaiana, Sergipe.

13. REFERÊNCIAS

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